Faleminderit që vizituat Nature.com. Versioni i shfletuesit që po përdorni ka mbështetje të kufizuar CSS. Për përvojën më të mirë, ne ju rekomandojmë të përdorni një shfletues të përditësuar (ose të çaktivizoni Modalitetin e Përputhshmërisë në Internet Explorer). Ndërkohë, për të siguruar mbështetje të vazhdueshme, ne do ta paraqesim faqen pa stile dhe JavaScript.
Gjakderdhja e pakontrolluar është një nga shkaqet kryesore të vdekjes. Arritja e hemostazës së shpejtë siguron mbijetesën e subjektit si një ndihmë e parë gjatë luftimeve, aksidenteve rrugore dhe operacioneve të reduktimit të vdekjeve. Skela kompozite e përforcuar me fibra nanopore (NFRCS) e nxjerrë nga një përbërje e thjeshtë hemostatike që formon film (HFFC) si një fazë e vazhdueshme mund të shkaktojë dhe përmirësojë hemostazën. Zhvillimi i NFRCS bazohet në projektimin e krahut të pilivesës. Struktura e krahut të pilivesës përbëhet nga krahë tërthor dhe gjatësorë, dhe membranat e krahëve janë të lidhura me njëra-tjetrën për të ruajtur integritetin e mikrostrukturës. HFFC vesh në mënyrë uniforme sipërfaqen e fibrës me një film me trashësi nanometri dhe lidh trashësinë e pambukut të shpërndarë rastësisht (Ct) (faza e shpërndarë) për të formuar një strukturë nanopore. Kombinimi i fazave të vazhdueshme dhe të shpërndara zvogëlon koston e produktit dhjetë herë krahasuar me produktet e disponueshme komercialisht. NFRCS e modifikuar (tampona ose rripa dore) mund të përdoren në një sërë aplikimesh biomjekësore. Studimet in vivo kanë arritur në përfundimin se NFRCS e zhvilluar Cp shkakton dhe përmirëson procesin e koagulimit në vendin e aplikimit. NFRCS mund të modulojë mikroambientin dhe të veprojë në nivel qelizor për shkak të strukturës së saj nanopore, duke rezultuar në shërim më të mirë të plagëve në modelin e plagës me heqje.
Gjakderdhja e pakontrolluar gjatë luftimeve, situatave intraoperative dhe emergjente mund të përbëjë një kërcënim serioz për jetën e të plagosurve1. Këto gjendje çojnë më tej në një rritje të përgjithshme të rezistencës vaskulare periferike, duke çuar në shok hemorragjik. Masat e përshtatshme për të kontrolluar gjakderdhjen gjatë dhe pas operacionit konsiderohen potencialisht kërcënuese për jetën2,3. Dëmtimi i enëve të mëdha çon në humbje masive të gjakut, duke rezultuar në një shkallë vdekshmërie prej ≤ 50% në luftime dhe 31% gjatë operacionit1. Humbja masive e gjakut çon në një ulje të vëllimit të trupit, gjë që zvogëlon prodhimin kardiak. Një rritje në rezistencën totale vaskulare periferike dhe një dëmtim progresiv i mikroqarkullimit çojnë në hipoksi në organet mbështetëse të jetës. Shoku hemorragjik mund të ndodhë nëse gjendja vazhdon pa ndërhyrje efektive1,4,5. Komplikime të tjera përfshijnë përparimin e hipotermisë dhe acidozës metabolike, si dhe një çrregullim të koagulimit që pengon procesin e koagulimit. Shoku i rëndë hemorragjik shoqërohet me një rrezik më të lartë vdekjeje6,7,8. Në shokun e gradës III (progresiv), transfuzioni i gjakut është thelbësor për mbijetesën e pacientit gjatë morbiditetit dhe vdekshmërisë intraoperative dhe postoperative. Për të kapërcyer të gjitha situatat e mësipërme kërcënuese për jetën, ne kemi zhvilluar një skelë kompozite të përforcuar me fibra nanopore (NFRCS) që përdor një përqendrim minimal polimeri (0.5%) duke përdorur një kombinim të polimereve hemostatike të tretshme në ujë.
Me përdorimin e përforcimit me fibra, mund të zhvillohen produkte me kosto efektive. Fibrat e rregulluara rastësisht i ngjajnë strukturës së krahut të një pilivese, të balancuara nga vijat horizontale dhe vertikale në krahë. Venat tërthore dhe gjatësore të krahut komunikojnë me membranën e krahut (Fig. 1). NFRCS përbëhet nga Ct i përforcuar si një sistem skeleti me forcë më të mirë fizike dhe mekanike (Figura 1). Për shkak të përballueshmërisë dhe mjeshtërisë, kirurgët preferojnë të përdorin matësa me fije pambuku (Ct) gjatë operacioneve dhe fashave. Prandaj, duke marrë parasysh përfitimet e tij të shumëfishta, duke përfshirë > 90% celulozë kristalore (ndihmon në rritjen e aktivitetit hemostatik), Ct u përdor si një sistem skeletor i NFRCS9,10. Prandaj, duke marrë parasysh përfitimet e tij të shumëfishta, duke përfshirë > 90% celulozë kristalore (ndihmon në rritjen e aktivitetit hemostatik), Ct u përdor si një sistem skeletor i NFRCS9,10. Следовательно, учитывая его многочисленные преимущества, во том числе > 90% кристаллической целлюлозы (участвует в повышении гемостатической aktivitete), Ctolьзовали во kaчесты90FletSke. Prandaj, duke pasur parasysh përfitimet e shumta, duke përfshirë >90% celulozë kristalore (e përfshirë në rritjen e aktivitetit hemostatik), Ct u përdor si sistemi skeletor NFRCS9,10.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90% 的结晶纤维素（有助于增强止血洼被用作NFRCS9,10 的骨架系统.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90%Prandaj, duke pasur parasysh përfitimet e shumta, duke përfshirë mbi 90% celulozë kristalore (ndihmon në rritjen e aktivitetit hemostatik), Ct u përdor si një skelë për NFRCS9,10.Ct u vesh sipërfaqësisht (u vu re formimi i filmit nano-të trashë) dhe u ndërlidh me një përbërje hemostatike që formon film (HFFC). HFFC vepron si një matrigel, duke mbajtur së bashku Ct të vendosur rastësisht. Dizajni i zhvilluar transmeton stresin brenda fazës së shpërndarë (fibra përforcuese). Është e vështirë të përftohen struktura nanoporoze me forcë të mirë mekanike duke përdorur përqendrime minimale polimerësh. Përveç kësaj, nuk është e lehtë të personalizohen kallëpe të ndryshme për aplikime të ndryshme biomjekësore.
Figura tregon një diagramë të dizajnit të NFRCS bazuar në strukturën e krahut të pilivesës (A). Ky imazh tregon një analogji krahasuese të strukturës së krahut të një pilivese (venat kryqëzuese dhe gjatësore të krahut janë të ndërlidhura) dhe një fotomikrograf të prerjes tërthore të Cp NFRCS (B). Paraqitje skematike e NFRCS.
NFFC-të u zhvilluan duke përdorur HFFC si një fazë të vazhdueshme për të adresuar kufizimet e mësipërme. HFFC përbëhet nga polimere të ndryshme hemostatike që formojnë film, duke përfshirë kitosanin (si polimeri kryesor hemostatik) me metilcelulozë (MC), hidroksipropil metilcelulozë (HPMC 50 cp) dhe alkool polivinil (PVA) (125 kDa) si një polimer mbështetës që nxit formimin e trombeve. Shtimi i polivinilpirolidinës K30 (PVP K30) përmirësoi kapacitetin e thithjes së lagështisë së NFRCS-së. Polietilen glikoli 400 (PEG 400) u shtua për të përmirësuar lidhjen e polimerit në përzierjet e polimerëve të lidhur. Tre përbërje të ndryshme hemostatike të HFFC-së (Cm HFFC, Ch HFFC dhe Cp HFFC), përkatësisht kitosan me MC (Cm), kitosan me HPMC (Ch) dhe kitosan me PVA (Cp), u aplikuan në Ct. Studime të ndryshme të karakterizimit in vitro dhe in vivo kanë konfirmuar aktivitetin hemostatik dhe shërues të plagëve të NFRCS-së. Materialet kompozite të ofruara nga NFRCS mund të përdoren për të përshtatur forma të ndryshme të skelave për të përmbushur nevojat specifike.
Përveç kësaj, NFRCS mund të modifikohet si fashë ose rrotull për të mbuluar të gjithë zonën e dëmtimit të gjymtyrëve të poshtme dhe pjesëve të tjera të trupit. Në mënyrë specifike për lëndimet e gjymtyrëve në betejë, dizajni i projektuar i NFRCS mund të ndryshohet në gjysmë krahu ose këmbë të plotë (Figura plotësuese S11). NFRCS mund të shndërrohet në një rrip dore me ngjitës indesh, i cili mund të përdoret për të ndaluar gjakderdhjen nga lëndimet e rënda vetëvrasëse të kyçit të dorës. Qëllimi ynë kryesor është të zhvillojmë një NFRCS me sa më pak polimer të jetë e mundur që mund t'i ofrohet një popullsie të madhe (nën vijën e varfërisë) dhe që mund të vendoset në një çantë të ndihmës së shpejtë. I thjeshtë, efikas dhe ekonomik në dizajn, NFRCS u sjell dobi komuniteteve lokale dhe mund të ketë një ndikim global.
Kitosani (pesha molekulare 80 kDa) dhe amaranti u blenë nga Merck, Indi. Hidroksipropil metilceluloza 50 Cp, polietilen glikoli 400 dhe metilceluloza u blenë nga Loba Chemie Pvt. LLC, Mumbai. Alkooli polivinil (pesha molekulare 125 kDa) (87-90% i hidrolizuar) u ble nga National Chemicals, Gujarat. Polivinilpirolidina K30 u ble nga Molychem, Mumbai, tamponët sterilë u blenë nga Ramaraju Surgery Cotton Mills Ltd., Tamil Nadu, me ujë Milli Q (sistemi i pastrimit të ujit Direct-Q3, Merck, Indi) si bartës.
NFRCS u zhvillua duke përdorur një metodë liofilizimi11,12. Të gjitha përbërjet HFFC (Tabela 1) u përgatitën duke përdorur një përzierës mekanik. Përgatitni një tretësirë ​​0.5% të kitosanit duke përdorur 1% acid acetik në ujë duke e përzier vazhdimisht në 800 rpm në një përzierës mekanik. Pesha e saktë e polimerit të ngarkuar e treguar në Tabelën 1 u shtua në tretësirën e kitosanit dhe u përzie derisa të përftohej një tretësirë ​​e qartë polimeri. PVP K30 dhe PEG 400 u shtuan në përzierjen që rezultoi në sasitë e treguara në Tabelën 1, dhe përzierja vazhdoi derisa të përftohej një tretësirë ​​e qartë polimeri viskoze. Banja që rezultoi me tretësirë ​​polimeri u nënshtrua ultratingujve për 60 minuta për të hequr flluskat e ajrit të bllokuara nga përzierja e polimerit. Siç tregohet në Figurën Plotësuese S1(b), Ct u shpërnda në mënyrë të barabartë në secilën pus të një pllake (kallëpi) me 6 puseta të plotësuar me 5 ml HFFC.
Pllaka me gjashtë puseta u trajtua me ultratinguj për 60 minuta për të arritur lagie dhe shpërndarje uniforme të HFFC në rrjetin Ct. Pastaj, pllaka me gjashtë puseta u ngri në -20°C për 8-12 orë. Pllakat e ngrira u liofilizuan për 48 orë për të përftuar formulime të ndryshme të NFRCS. E njëjta procedurë përdoret për të prodhuar forma dhe struktura të ndryshme, të tilla si tampona ose tampona cilindrikë, ose çdo formë tjetër për aplikime të ndryshme.
Kitosani i peshuar me saktësi (80 kDa) (3%) tretet në acid acetik 1% duke përdorur një përzierës magnetik. Tretësirës që rezulton të kitosanit i shtohet 1% PEG 400 dhe përzihet për 30 minuta. Tretësira që rezulton hidhet në një enë katrore ose drejtkëndëshe dhe ngrihet në -80°C për 12 orë. Mostrat e ngrira u liofilizuan për 48 orë për të përftuar Cs13 poroz.
NFRCS-ja e zhvilluar iu nënshtrua eksperimenteve duke përdorur spektroskopinë infra të kuqe me transformim Furier (FTIR) (Shimadzu 8400 s FTIR, Tokio, Japoni) për të konfirmuar përputhshmërinë kimike të kitosanit me polimere të tjera14,15. Spektrat FTIR (gjerësia e diapazonit spektral nga 400 deri në 4000 cm-1) të të gjitha mostrave të testuara u morën duke kryer 32 skanime.
Shkalla e përthithjes në gjak (BAR) për të gjitha formulimet u vlerësua duke përdorur metodën e përshkruar nga Chen et al. 16 me modifikime të vogla. NFRK-të e zhvilluara të të gjitha përbërjeve u thanë në një furrë vakumi në 105°C gjatë natës për të hequr tretësin e mbetur. 30 mg NFRCS (pesha fillestare e mostrës – W0) dhe 30 mg Ct (kontroll pozitiv) u vendosën në enë të veçanta që përmbanin një përzierje paraprake prej 3.8% citrat natriumi. Në intervale kohore të paracaktuara, dmth. 5, 10, 20, 30, 40 dhe 60 sekonda, NFRCS-të u hoqën dhe sipërfaqet e tyre u pastruan nga gjaku i paabsorbuar duke vendosur mostrat në Ct për 30 sekonda. Pesha përfundimtare e gjakut të përthithur nga NFRCS 16 u konsiderua (W1) në çdo pikë kohore. Llogaritni përqindjen BAR duke përdorur formulën e mëposhtme:
Koha e mpiksjes së gjakut (BCT) u përcaktua siç raportohet nga Wang et al. 17. Koha e nevojshme që gjaku i plotë (gjak miu i përzier paraprakisht me 3.8% citrat natriumi) të mpikset në prani të NFRCS u llogarit si BCT e mostrës së testimit. Komponentët e ndryshëm të NFRCS (30 mg) u vendosën në shishe me kapak vidë 10 ml dhe u inkubuan në 37°C. Gjaku (0.5 ml) u shtua në shishe dhe 0.3 ml 0.2 M CaCl2 u shtua për të aktivizuar mpiksjen e gjakut. Së fundmi, përmbysni shishen çdo 15 sekonda (deri në 180°) derisa të formohet një mpiksje e fortë. BCT e mostrës vlerësohet nga numri i rrotullimeve të shisheve 17,18. Bazuar në BCT, u zgjodhën dy përbërje optimale nga NFRCS Cm, Ch dhe Cp për studime të mëtejshme karakterizimi.
BCT e përbërjeve të Ch NFRCS dhe Cp NFRCS u përcaktua duke zbatuar metodën e përshkruar nga Li et al. 19. Vendosni 15 x 15 mm2 Ch NFRCS, Cp NFRCS dhe Cs (kontroll pozitiv) në enë të veçanta Petri (37 °C). Gjaku që përmbante 3.8% citrat natriumi u përzie me 0.2 M CaCl2 në një raport vëllimi 10:1 për të filluar procesin e mpiksjes së gjakut. 20 µl përzierje gjaku miu 0.2 M CaCl2 u aplikua në sipërfaqen e mostrës dhe u vendos në një enë Petri bosh. Kontrolli ishte gjak i derdhur në enë Petri bosh pa Ct. Në intervale të caktuara prej 0, 3 dhe 5 minutash, ndaloni mpiksjen duke shtuar 10 ml ujë të deionizuar (DI) në mostrën që përmban enën pa shqetësuar mpiksjen. Eritrocitet e pakaguluara (eritrocitet) i nënshtrohen hemolizës në prani të ujit të deionizuar dhe lëshojnë hemoglobinë. Hemoglobina në pika të ndryshme kohore (HA(t)) u mat në 540 nm (λmax hemoglobinë) duke përdorur një spektrofotometër UV-Vis. Thithja absolute e hemoglobinës (AH(0)) në 0 minuta të 20 µl gjak në 10 ml ujë të deionizuar u mor si standard referimi. Marrja relative e hemoglobinës (RHA) e gjakut të koaguluar u llogarit nga raporti HA(t)/HA(0) duke përdorur të njëjtën sasi gjaku.
Duke përdorur një analizues teksture (Texture Pro CT V1.3 Build 15, Brookfield, SHBA), u përcaktuan vetitë ngjitëse të NFRK në indet e dëmtuara. Shtypni një enë cilindrike me fund të hapur kundër pjesës së brendshme të lëkurës së derrit (pa shtresën e yndyrës). Mostrat (Ch NFRCS dhe Cp NFRCS) u aplikuan nëpërmjet kanulës në kallëpe cilindrike për të krijuar ngjitje në lëkurën e derrit. Pas një inkubimi 3-minutësh në temperaturë ambienti (RT) (25° C.), forca ngjitëse e NFRCS u regjistrua me një shpejtësi konstante prej 0.5 mm/sek.
Karakteristika kryesore e sealantëve kirurgjikalë është rritja e koagulimit të gjakut duke zvogëluar humbjen e gjakut. Koagulimi pa humbje në NFRCS u vlerësua duke përdorur një metodë të publikuar më parë me modifikime të vogla 19. Bëni një tub mikrocentrifugimi (2 ml) (diametri i brendshëm 10 mm) me një vrimë 8 × 5 mm2 në njërën anë të tubit të centrifugimit (që përfaqëson një plagë të hapur). NFRCS përdoret për të mbyllur hapjen dhe shiriti ngjitës përdoret për të vulosur skajet e jashtme. Shtoni 20 µl 0.2 M CaCl2 në tubin e mikrocentrifugimit që përmban përzierjen paraprake 3.8% të citrat natriumi. Pas 10 minutash, tubat e mikrocentrifugimit u hoqën nga enët dhe rritja e masës së enëve u përcaktua për shkak të rrjedhjes së gjakut nga NFRK (n = 3). Humbja e gjakut Ch NFRCS dhe Cp NFRCS u krahasuan me Cs.
Integriteti i lagësht i NFRCS u përcaktua bazuar në metodën e përshkruar nga Mishra dhe Chaudhary21 me modifikime të vogla. Vendoseni NFRCS në një balonë Erlenmeyer 100 ml me 50 ml ujë dhe përziejeni për 60 sekonda pa formuar një majë. Inspektimi vizual dhe prioritizimi i mostrave për integritetin fizik bazuar në mbledhje.
Forca e lidhjes së HFFC me Ct u studiua duke përdorur metoda të publikuara më parë me modifikime të vogla. Integriteti i veshjes sipërfaqësore u vlerësua duke e ekspozuar NFRK ndaj valëve akustike (stimul i jashtëm) në prani të ujit milliQ (Ct). NFRCS Ch NFRCS dhe Cp NFRCS të zhvilluara u vendosën në një gotë të mbushur me ujë dhe iu nënshtruan ultratingujve përkatësisht për 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 dhe 30 minuta. Pas tharjes, diferenca në përqindje midis peshës fillestare dhe asaj përfundimtare të NFRCS u përdor për të llogaritur humbjen në përqindje të materialit (HFFC). BCT in vitro mbështeti më tej forcën e lidhjes ose humbjen e materialeve sipërfaqësore. Efikasiteti i lidhjes së HFFC me Ct siguron koagulimin e gjakut dhe një shtresë elastike në sipërfaqen e Ct22.
Homogjeniteti i NFRCS-së së zhvilluar u përcaktua nga BCT-ja e mostrave (30 mg) të marra nga vendndodhje të përgjithshme të zgjedhura rastësisht të NFRCS-së. Ndiqni procedurën BCT të përmendur më parë për të përcaktuar përputhshmërinë me NFRCS-në. Afërsia midis të pesë mostrave siguron mbulim uniform të sipërfaqes dhe depozitim të HFFC-së në rrjetën Ct.
Sipërfaqja nominale e kontaktit me gjakun (NBCA) u përcaktua siç është raportuar më parë me disa modifikime. Koaguloni gjakun duke shtrënguar 20 µl gjak midis dy sipërfaqeve të Ct, Ch NFRCS, Cp NFRCS dhe Cs. Pas 1 ore, dy pjesët e stentit u ndanë dhe sipërfaqja e mpiksjes u matë manualisht. Vlera mesatare e tre përsëritjeve u konsiderua NBCA NFRCS19.
Analiza Dinamike e Sorpcionit të Avujve (DVS) u përdor për të vlerësuar efektivitetin e NFRCS për të thithur ujin nga mjedisi i jashtëm ose nga vendi i dëmtimit përgjegjës për fillimin e koagulimit. DVS vlerëson ose regjistron thithjen dhe humbjen e avullit në një mostër gravimetrikisht duke përdorur një balancues ultra të ndjeshëm me një rezolucion mase prej ±0.1 µg. Një presion i pjesshëm i avullit (lagështia relative) gjenerohet nga një kontrollues elektronik i rrjedhës së masës rreth mostrës duke përzier gazrat bartës të ngopur dhe të thatë. Sipas udhëzimeve të Farmakopesë Evropiane, bazuar në përqindjen e thithjes së lagështisë nga mostrat, mostrat u kategorizuan në 4 kategori (0–0.012% w/w− jo-higroskopike, 0.2–2% w/w paksa higroskopike, 2–15% mesatarisht higroskopike dhe > 15% shumë higroskopike)23. Sipas udhëzimeve të Farmakopesë Evropiane, bazuar në përqindjen e thithjes së lagështisë nga mostrat, mostrat u kategorizuan në 4 kategori (0–0.012% w/w− jo-higroskopike, 0.2–2% w/w paksa higroskopike, 2–15% mesatarisht higroskopike dhe > 15% shumë higroskopike)23.Në përputhje me rekomandimet e Farmakopesë Evropiane, varësisht nga përqindja e thithjes së lagështisë nga mostrat, mostrat u ndanë në 4 kategori (0–0.012% p/p – jo-higroskopike, 0.2–2% p/p paksa higroskopike, 2– pesëmbëdhjetë %).% moderimno gigroskopik и > 15% очень гигроскопичен)23. % mesatarisht higroskopike dhe > 15% shumë higroskopike)23.根据欧洲药典指南，根据样品吸收水分的百分比，样品分为4 类（0-0,012% w/w/w非吸湿性、0,2-2% w/w 轻微吸湿性、2-15 % 适度吸湿，> 15% 非常吸湿）23。根据 欧洲 药典 指南 ， 根据 吸收 水分 的 百分比 样品 分为 分为 分为 爻0 0% 为W/w- 吸湿 性 、 、 、 、 0,2-2% W/w 轻微 、 2-15% 适度 吸湿 ，> 15 %非帀吸湿3）Në përputhje me rekomandimet e Farmakopesë Evropiane, mostrat ndahen në 4 klasa në varësi të përqindjes së lagështisë së absorbuar nga mostra (0-0.012% sipas peshës - jo-higroskopike, 0.2-2% sipas peshës paksa higroskopike, 2-15% sipas peshës).% moderimno gigroskopik, > 15 % очень гигроскопичен) 23. % mesatarisht higroskopike, > 15% shumë higroskopike) 23.Efikasiteti higroskopik i NFCS X NFCS dhe TsN NFCS u përcaktua në një analizues DVS TA TGA Q5000 SA. Gjatë këtij procesi, u morën koha e funksionimit, lagështia relative (RH) dhe pesha e mostrës në kohë reale në 25°C24. Përmbajtja e lagështisë llogaritet me anë të analizës së saktë të masës NFRCS duke përdorur ekuacionin e mëposhtëm:
MC është lagështia e NFRCS. m1 – pesha e thatë e NSAID-ve. m2 është masa e NFRCS në kohë reale në një lagështi të caktuar.
Sipërfaqja totale u vlerësua duke përdorur një eksperiment të adsorbimit të azotit me azot të lëngshëm pas zbrazjes së mostrave në 25 °C për 10 orë (< 7 × 10–3 Torr). Sipërfaqja totale u vlerësua duke përdorur një eksperiment të adsorbimit të azotit me azot të lëngshëm pas zbrazjes së mostrave në 25 °C për 10 orë (< 7 × 10–3 Torr). Vërejtje e plotë vlerësohet me ndihmën e eksperiencës për adsorbimet e azota jetkim azotom pas oporoznenija shkollimit në 25 °C në masën 10 ch (< 7 × 10-3 Tor). Sipërfaqja totale u vlerësua duke përdorur një eksperiment të adsorbimit të azotit me azot të lëngshëm pasi mostrat u zbrazën në 25°C për 10 orë (< 7 × 10–3 Torr).在25°C 清空样品10 小时（< 7 × 10-3 Torr）后，使用液氮的氮吸附实靌估计总表✨ 25°C Vlerat e përgjithshme vlerësohen me përdorimin e eksperimenteve në adsorbations azota jetkim azotom pas oporozneniya образцов në 10 orë në 25°C (< 7 × 10-3 torr). Sipërfaqja totale u vlerësua duke përdorur eksperimente të adsorbimit të azotit me azot të lëngshëm pasi mostrat u zbrazën për 10 orë në 25°C (< 7 x 10-3 torr).Sipërfaqja totale, vëllimi i poreve dhe madhësia e poreve të NFRCS u përcaktuan me një Quantachrome nga NOVA 1000e, Austri duke përdorur programin RS 232.
Përgatitni 5% RBC (tretësirë ​​fiziologjike si hollues) nga gjaku i plotë. Më pas transferoni një alikot të HFFC (0.25 ml) në një pllakë me 96 puseta dhe 5% masë të RBC (0.1 ml). Inkuboni përzierjen në 37°C për 40 minuta. Një përzierje e qelizave të kuqe të gjakut dhe serumit u konsiderua si kontroll pozitiv, dhe një përzierje e tretësirës fiziologjike dhe qelizave të kuqe të gjakut si kontroll negativ. Hemaglutinimi u përcaktua sipas shkallës Stajitzky. Shkallët e propozuara janë si më poshtë: + + + + agregate të dendura granulare; + + + jastëkë të lëmuar të poshtëm me skaje të lakuara; + + jastëkë të lëmuar të poshtëm me skaje të grisura; + unaza të ngushta të kuqe rreth skajeve të jastëkëve të lëmuar; – (negativ) buton i kuq diskret 12 në qendër të pusetës së poshtme.
Hemokompatibiliteti i NFRCS u studiua sipas metodës së Organizatës Ndërkombëtare për Standardizim (ISO) (ISO10993-4, 1999)26,27. Metoda gravimetrike e përshkruar nga Singh et al. U bënë modifikime të vogla për të vlerësuar formimin e trombit në prani të ose në sipërfaqen e NFRCS. 500 mg NFRCS Cs, Ch dhe Cp u inkubuan në tretësirë ​​fiziologjike të tamponuar me fosfat (PBS) për 24 orë në 37°C. Pas 24 orësh, PBS u hoq dhe NFRCS u trajtua me 2 ml gjak që përmbante 3.8% citrat natriumi. Në sipërfaqen e NFRCS, shtoni 0.04 ml 0.1 M CaCl2 në mostrat e inkubuara. Pas 45 minutash, u shtuan 5 ml ujë të distiluar për të ndaluar koagulimin. Gjaku i koaguluar në sipërfaqen e NFRK u trajtua me tretësirë ​​formaldehidi 36-38%. Mpiksjet e fiksuara me formaldehid u thanë dhe u peshuan. Përqindja e trombozës u vlerësua duke llogaritur peshën e gotës pa gjak dhe mostrës (kontroll negativ) dhe gotës me gjak (kontroll pozitiv).
Si konfirmim fillestar, mostrat u vizualizuan nën një mikroskop optik për të kuptuar aftësinë e veshjes sipërfaqësore HFFC, lidhjes së ndërlidhur Ct dhe rrjetit Ct për të formuar pore. Seksionet e holla të Ch dhe Cp nga NFRCS u prenë me një teh bisturie. Seksioni që rezultoi u vendos në një lamë qelqi, u mbulua me një mbulesë dhe skajet u fiksuan me ngjitës. Lamët e përgatitura u panë nën një mikroskop optik dhe fotografitë u morën në zmadhime të ndryshme.
Depozitimi i polimerit në rrjetet Ct u vizualizua duke përdorur mikroskopinë fluoreshente bazuar në metodën e përshkruar nga Rice et al.29. Përbërja HFFC e përdorur për formulimin u përzie me një ngjyrues fluoreshent (amarant), dhe NFRCS (Ch & Cp) u përgatitën sipas metodës së përmendur më parë. Përbërja HFFC e përdorur për formulimin u përzie me një ngjyrues fluoreshent (amarant), dhe NFRCS (Ch & Cp) u përgatitën sipas metodës së përmendur më parë.Përbërja HFFC e përdorur për formulim u përzie me një ngjyrues fluoreshent (amarant) dhe NFRCS (Ch dhe Cp) u përftua sipas metodës së përmendur më parë.将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的戶菜）混合，并按照前面提到的戶方Cp).将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的戶菜）混合，并按照前面提到的戶方Cp).Përbërja e HFFC-së e përdorur në formulë u përzie me një ngjyrues fluoreshent (Amaranth) dhe mori NFRCS (Ch dhe Cp), siç u përmend më parë.Seksione të holla të NFRK u prenë nga mostrat e marra, u vendosën në lamela qelqi dhe u mbuluan me mbulesa mbuluese. Vëzhgoni lamelat e përgatitura nën një mikroskop fluoreshent duke përdorur një filtër të gjelbër (310-380 nm). Imazhet u morën me zmadhim 4x për të kuptuar marrëdhëniet Ct dhe depozitimin e tepërt të polimerit në rrjetin Ct.
Topografia sipërfaqësore e NFRCS Ch dhe Cp u përcaktua duke përdorur një mikroskop force atomike (AFM) me një konzol TESP ultra të mprehtë në modalitetin e prekjes: 42 N/m, 320 kHz, ROC 2-5 nm, Bruker, Tajvan. Vrazhdësia e sipërfaqes u përcaktua nga rrënja mesatare katrore (RMS) duke përdorur softuer (Scanning Probe Image Processor). Vendndodhje të ndryshme të NFRCS u renderuan në imazhe 3D për të kontrolluar uniformitetin e sipërfaqes. Devijimi standard i rezultatit për një zonë të caktuar përcaktohet si vrazhdësi e sipërfaqes. Ekuacioni RMS u përdor për të përcaktuar sasinë e vrazhdësisë së sipërfaqes së NFRCS31.
Studimet e bazuara në FESEM u kryen duke përdorur FESEM, SU8000, HI-0876-0003, Hitachi, Tokio, për të kuptuar morfologjinë sipërfaqësore të Ch NFRCS dhe Cp NFRCS, të cilat treguan BCT më të mirë se Cm NFRCS. Studimi FESEM u krye sipas metodës së përshkruar nga Zhao et al. 32 me modifikime të vogla. NFRCS 20 deri në 30 mg Ch NFRCS dhe Cp NFRCS u përzien paraprakisht me 20 µl 3.8% citrat natriumi të përzier paraprakisht me gjak miu. 20 μl 0.2 M CaCl2 iu shtua mostrave të trajtuara me gjak për të filluar koagulimin dhe mostrat u inkubuan në temperaturë ambienti për 10 minuta. Përveç kësaj, eritrocitet e tepërta u hoqën nga sipërfaqja e NFRCS duke e shpëlarë me tretësirë ​​fiziologjike.
Mostrat pasuese u trajtuan me 0.1% glutaraldehidë dhe më pas u thanë në një furrë me ajër të nxehtë në 37°C për të hequr lagështinë. Mostrat e thara u veshën dhe u analizuan 32. Imazhe të tjera të marra gjatë analizës ishin formimi i mpiksjes në sipërfaqen e fibrave individuale të pambukut, depozitimi i polimerit midis Ct, morfologjia (forma) e eritrociteve, integriteti i mpiksjes dhe morfologjia e eritrociteve në prani të NFRCS. Zonat e patrajtuara të NFRCS dhe zonat e trajtuara me Ch dhe Cp të NFRCS të inkubuara me gjak u skanuan për jone elementare (natrium, kalium, azot, kalcium, magnez, zink, bakër dhe selen) 33. Krahasoni përqindjet e joneve elementare midis mostrave të trajtuara dhe të patrajtuara për të kuptuar akumulimin e joneve elementare gjatë formimit të mpiksjes dhe homogjenitetin e mpiksjes.
Trashësia e veshjes sipërfaqësore Cp HFFC në sipërfaqen Ct u përcaktua duke përdorur FESEM. Seksionet tërthore të Cp NFRCS u prenë nga korniza dhe u veshën me spërkatje. Mostrat që rezultuan nga veshja me spërkatje u vëzhguan nga FESEM dhe trashësia e veshjes sipërfaqësore u mat 34, 35, 36.
Mikro-CT me rreze X ofron imazhe 3D jo-destruktive me rezolucion të lartë dhe ju lejon të studioni rregullimin e brendshëm strukturor të NFRK. Mikro-CT përdor një rreze X që kalon nëpër mostër për të regjistruar koeficientin lokal të dobësimit linear të rrezeve X në mostër, gjë që ndihmon në marrjen e informacionit morfologjik. Vendndodhja e brendshme e Ct në Cp NFRCS dhe Cp NFRCS të trajtuara me gjak u ekzaminua me mikro-CT për të kuptuar efikasitetin e thithjes dhe mpiksjen e gjakut në prani të NFRCS37,38,39. Strukturat 3D të mostrave Cp NFRCS të trajtuara me gjak dhe të patrajtuara u rindërtuan duke përdorur mikro-CT (V|tome|x S240, Phoenix, Gjermani). Duke përdorur versionin 2.2 të softuerit VG STUDIO-MAX, disa imazhe me rreze X u morën nga kënde të ndryshme (idealisht mbulim 360°) për të zhvilluar imazhe 3D për NFRCS. Të dhënat e mbledhura të projeksionit u rindërtuan në imazhe volumetrike 3D duke përdorur softuerin përkatës të thjeshtë 3D ScanIP Academic.
Përveç kësaj, për të kuptuar shpërndarjen e mpiksjes, në NFRCS u shtuan 20 µl gjak i citratuar paraprakisht dhe 20 µl 0.2 M CaCl2 për të filluar mpiksjen e gjakut. Mostrat e përgatitura lihen të ngurtësohen. Sipërfaqja e NFRK u trajtua me 0.5% glutaraldehid dhe u tha në një furrë me ajër të nxehtë në 30–40°C për 30 minuta. Mpiksja e gjakut e formuar në NFRCS u skanua, u rindërtua dhe u vizualizua një imazh 3D i mpiksjes së gjakut.
Analizat antibakteriale u kryen në Cp NFRCS (krahasuar më së miri me Ch NFRCS) duke përdorur metodën e përshkruar më parë me modifikime të vogla. Aktiviteti antibakterial i Cp NFRCS dhe Cp HFFC u përcaktua duke përdorur tre mikroorganizma të ndryshëm testimi [S.aureus (baktere gram-pozitive), E.coli (baktere gram-negative) dhe Candida e bardhë (C.albicans)] që rriten në agar në enët Petri në një inkubator. Inokuloni në mënyrë uniforme 50 ml të suspensionit të holluar të kulturës bakteriale në një përqendrim prej 105-106 CFU ml-1 mbi mjedisin e agarit. Derdhni mjedisin në një enë Petri dhe lëreni të ngurtësohet. Në sipërfaqen e pllakës së agarit u bënë puse për t'u mbushur me HFFC (3 puse për HFFC dhe 1 për kontroll negativ). Shtoni 200 µl HFFC në 3 puse dhe 200 µl pH 7.4 PBS në pusin e 4-t. Në anën tjetër të enës së Petrit, vendosni një disk NFRCS Cp 12 mm mbi agarin e ngurtësuar dhe lagni me PBS (pH 7.4). Tabletat e ciprofloksacinës, ampicilinës dhe flukonazolit konsiderohen standarde referimi për Staphylococcus aureus, Escherichia coli dhe Candida albicans. Matni manualisht zonën e frenimit dhe merrni një imazh dixhital të zonës së frenimit.
Pas miratimit etik institucional, studimi u krye në Kolegjin Mjekësor të Edukimit dhe Kërkimit Kasturba në Manipal, Karnataka, në Indinë jugore. Protokolli eksperimental TEG in vitro është shqyrtuar dhe miratuar nga Komiteti i Etikës Institucionale i Kolegjit Mjekësor Kasturba, Manipal, Karnataka (IEC: 674/2020). Subjektet u rekrutuan nga dhurues vullnetarë gjaku (të moshës 18 deri në 55 vjeç) nga banka e gjakut të spitalit. Përveç kësaj, nga vullnetarët u mor një formular pëlqimi i informuar për mbledhjen e mostrave të gjakut. TEG native (N-TEG) ​​​​u përdor për të studiuar efektin e formulës Cp HFFC në gjakun e plotë të parapërzier me citrat natriumi. N-TEG njihet gjerësisht për rolin e tij në ringjalljen në pikën e kujdesit, gjë që krijon probleme për mjekët për shkak të potencialit për vonesë klinikisht të rëndësishme në rezultate (testet rutinë të koagulimit). Analiza N-TEG u krye duke përdorur gjak të plotë. Pëlqimi i informuar dhe historia e detajuar mjekësore u morën nga të gjithë pjesëmarrësit. Studimi nuk përfshinte pjesëmarrës me ndërlikime hemostatike ose trombotike, të tilla si shtatzënia/pas lindjes ose sëmundja e mëlçisë. Subjektet që merrnin ilaçe që ndikojnë në kaskadën e koagulimit u përjashtuan gjithashtu nga studimi. Testet bazë laboratorike (hemoglobina, koha e protrombinës, tromboplastina e aktivizuar dhe numri i trombociteve) u kryen tek të gjithë pjesëmarrësit sipas procedurave standarde. N-TEG përcakton viskoelasticitetin e mpiksjes së gjakut, strukturën fillestare të mpiksjes, ndërveprimin e grimcave, forcimin e mpiksjes dhe lizën e mpiksjes. Analiza N-TEG ofron të dhëna grafike dhe numerike mbi efektet kolektive të disa elementëve qelizorë dhe plazmës. Analiza N-TEG u krye në dy vëllime të ndryshme të Cp HFFC (10 µl dhe 50 µl). Si rezultat, 1 ml gjak i plotë me acid citrik u shtua në 10 μl Cp HFFC. Shtoni 1 ml (Cp HFFC + gjak i citratuar), 340 µl gjak të përzier në 20 µl enë TEG që përmban 0.2 M CaCl2. Më pas, enët TEG u ngarkuan në TEG® 5000, US për të matur R, K, këndin alfa, MA, G, CI, TPI, EPL, LY 30% të mostrave të gjakut në prani të Cp HFFC41.
Protokolli i studimit in vivo u shqyrtua dhe u miratua nga Komiteti Institucional i Etikës së Kafshëve (IAEC), Shkolla e Mjekësisë Kasturba, Instituti i Arsimit të Lartë Manipal, Manipal (IAEC/KMC/69/2020). Të gjitha eksperimentet në kafshë u kryen në përputhje me rekomandimet e Komitetit për Kontrollin dhe Mbikëqyrjen e Eksperimentimit me Kafshë (CPCSEA). Të gjitha studimet in vivo NFRCS (2 × 2 cm2) u kryen në minj femra Wistar (me peshë 200 deri në 250 g). Të gjitha kafshët u aklimatizuan në një temperaturë prej 24-26°C, kafshët kishin qasje të lirë në ushqim dhe ujë standard ad libitum. Të gjitha kafshët u ndanë rastësisht në grupe të ndryshme, secili grup përbëhej nga tre kafshë. Të gjitha studimet u kryen në përputhje me Studimet e Kafshëve: Raporti i Eksperimenteve In Vivo 43. Përpara studimit, kafshët u anestezuan me anë të administrimit intraperitoneal (ip) të një përzierjeje prej 20-50 mg ketamine (për 1 kg të peshës trupore) dhe 2-10 mg ksilazinë (për 1 kg të peshës trupore). Pas studimit, vëllimi i gjakderdhjes u llogarit duke vlerësuar ndryshimin midis peshës fillestare dhe përfundimtare të mostrave, vlera mesatare e marrë nga tre testet u mor si vëllimi i gjakderdhjes së mostrës.
Modeli i amputimit të bishtit të miut u zbatua për të kuptuar potencialin e NFRCS për të moduluar gjakderdhjen në trauma, luftime ose aksidente trafiku (modeli i lëndimit). Pritini 50% të bishtit me një teh bisturie dhe vendoseni në ajër për 15 sekonda për të siguruar gjakderdhje normale. Përveç kësaj, mostrat e testimit u vendosën në bishtin e një miu duke aplikuar presion (Ct, Cs, Ch NFRCS dhe Cp NFRCS). Gjakderdhja dhe PCT u raportuan për mostrat e testimit (n = 3)17,45.
Efektiviteti i kontrollit të presionit të NFRCS në luftime u hetua në një model të arteries femorale sipërfaqësore. Arteria femorale ekspozohet, shpohet me një trokar 24G dhe rrjedh gjak brenda 15 sekondave. Pasi vërehet gjakderdhje e pakontrolluar, mostra e testimit vendoset në vendin e shpimit me presion të aplikuar. Menjëherë pas aplikimit të mostrës së testimit, koha e koagulimit u regjistrua dhe efikasiteti hemostatik u vëzhgua për 5 minutat e ardhshme. E njëjta procedurë u përsërit me Cs dhe Ct46.
Dowling et al. 47 propozuan një model dëmtimi të mëlçisë për të vlerësuar potencialin hemostatik të materialeve hemostatike në kontekstin e gjakderdhjes intraoperative. BCT u regjistrua për mostrat Ct (kontroll negativ), kuadrin Cs (kontroll pozitiv), mostrat Ch NFRCS dhe mostrat Cp NFRCS. Vena kava suprahepatike e miut u ekspozua duke kryer një laparotomi mediane. Pas kësaj, pjesa distale e lobit të majtë u pre me gërshërë. Bëni një prerje në mëlçi me një teh bisturie dhe lëreni të rrjedhë gjak për disa sekonda. Mostrat e testimit Ch NFRCS dhe Cp NFRCS të peshuara me saktësi u vendosën në sipërfaqen e dëmtuar pa asnjë presion pozitiv dhe BCT u regjistrua. Grupi i kontrollit (Ct) më pas ushtroi presion të ndjekur nga Cs 30 s47 pa e thyer dëmtimin.
Analizat e shërimit të plagëve in vivo u kryen duke përdorur një model plage me prerje për të vlerësuar vetitë e shërimit të plagëve të NFRCS-ve të zhvilluara me bazë polimeri. Modelet e plagëve me prerje u përzgjodhën dhe u kryen sipas metodave të publikuara më parë me modifikime të vogla19,32,48. Të gjitha kafshët u anestezuan siç është përshkruar më parë. Përdorni një shpues biopsie (12 mm) për të bërë një prerje të thellë rrethore në lëkurën e shpinës. Vendet e përgatitura të plagëve u mbuluan me Cs (kontroll pozitiv), Ct (duke pranuar që disqet e pambukut ndërhyjnë në shërim), Ch NFRCS dhe Cp NFRCS (grup eksperimental) dhe një kontroll negativ pa asnjë trajtim. Në çdo ditë të studimit, zona e plagës u mat në të gjithë minjtë. Përdorni një aparat fotografik dixhital për të bërë një fotografi të zonës së plagës dhe vendosni një fashë të re. Përqindja e mbylljes së plagës u mat me formulën e mëposhtme:
Bazuar në përqindjen e mbylljes së plagës në ditën e 12-të të studimit, lëkura e miut e grupit më të mirë u hoq ((Cp NFRCS) dhe grupi i kontrollit) dhe u studiua me anë të ngjyrosjes H&E dhe ngjyrosjes trikromike të Massonit. Bazuar në përqindjen e mbylljes së plagës në ditën e 12-të të studimit, lëkura e miut e grupit më të mirë u hoq ((Cp NFRCS) dhe grupi i kontrollit) dhe u studiua me anë të ngjyrosjes H&E dhe ngjyrosjes trikromike të Massonit.Bazuar në përqindjen e mbylljes së plagës në ditën e 12-të të studimit, lëkura e minjve të grupit më të mirë ((Cp NFRCS) dhe grupit të kontrollit) u hoq dhe u ekzaminua duke ngjyrosur me hematoksilinë-eozinë dhe trikromin e Massonit.根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组)的大鼠皮肤，进行H&E染色和Masson三色染色研究。根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组)的大鼠皮肤，进行H&E染色和眳组）Minjtë në grupin më të mirë ((Cp NFRCS) dhe grupet e kontrollit) u hoqën për ngjyrosje hematoksilinë-eozinë dhe ngjyrosje trikrome të Massonit bazuar në përqindjen e mbylljes së plagës në ditën e 12-të të studimit.Procedura e ngjyrosjes e zbatuar u krye sipas metodave të përshkruara më parë49,50. Shkurtimisht, pas fiksimit në formalinë 10%, mostrat u dehidratuan duke përdorur një seri alkoolesh të graduara. Përdorni një mikrotom për të marrë seksione të holla (5 µm të trasha) të indit të prerë. Seksionet e holla seriale të kontrolleve dhe Cp NFRCS u trajtuan me hematoksilinë dhe eozinë për të studiuar ndryshimet histopatologjike. Ngjyrosja trikrome e Masson u përdor për të zbuluar formimin e fibrileve të kolagjenit. Rezultatet e marra u studiuan verbërisht nga patologët.
Stabiliteti i mostrave Cp NFRCS u studiua në temperaturë ambienti (25°C ± 2°C/60% RH ± 5%) për 12 muaj51. Cp NFRCS (ndryshimi i ngjyrës së sipërfaqes dhe rritja mikrobike) u inspektua vizualisht dhe u testua për rezistencën ndaj konsumimit të palosjes dhe BCT sipas metodave të mësipërme të përshkruara në seksionin Materialet dhe Metodat.
Shkallueshmëria dhe riprodhueshmëria e Cp NFRCS u ekzaminua duke përgatitur Cp NFRCS me një madhësi prej 15×15 cm2. Përveç kësaj, mostrat 30 mg (n = 5) u hoqën nga fraksione të ndryshme të Cp NFRCS dhe BCT e mostrave të studiuara u vlerësua siç përshkruhet më parë në seksionin Metodat.
Ne jemi përpjekur të zhvillojmë forma dhe struktura të ndryshme duke përdorur përbërje Cp NFRCS për aplikime të ndryshme biomjekësore. Forma ose konfigurime të tilla përfshijnë tampona konike për gjakderdhje nga hunda, procedura dentare dhe tampona cilindrike për gjakderdhje vaginale.
Të gjitha grupet e të dhënave shprehen si mesatare ± devijim standard dhe u analizuan nga ANOVA duke përdorur Prism 5.03 (GraphPad, San Diego, CA, SHBA) e ndjekur nga testi i krahasimeve të shumëfishta të Bonferroni-t (*p <0.05).
Të gjitha procedurat e kryera në studimet njerëzore ishin në përputhje me standardet e Institutit dhe Këshillit Kombëtar të Kërkimit, si dhe me Deklaratën e Helsinkit të vitit 1964 dhe ndryshimet e saj të mëvonshme, ose standarde të ngjashme etike. Të gjithë pjesëmarrësit u informuan rreth karakteristikave të studimit dhe natyrës së tij vullnetare. Të dhënat e pjesëmarrësve mbeten konfidenciale pasi të mblidhen. Protokolli eksperimental TEG in vitro është shqyrtuar dhe miratuar nga Komiteti i Etikës Institucionale i Kolegjit Mjekësor Kasturba, Manipal, Karnataka (IEC: 674/2020). Vullnetarët nënshkruan pëlqimin e informuar për të mbledhur mostra gjaku.
Të gjitha procedurat e kryera në studimet me kafshë u kryen në përputhje me Fakultetin e Mjekësisë Kastuba, Instituti i Arsimit të Lartë Manipal, Manipal (IAEC/KMC/69/2020). Të gjitha eksperimentet me kafshë të hartuara u kryen në përputhje me udhëzimet e Komitetit për Kontrollin dhe Mbikëqyrjen e Eksperimentimit me Kafshë (CPCSEA). Të gjithë autorët ndjekin udhëzimet ARRIVE.
Spektrat FTIR të të gjitha NFRCS u analizuan dhe u krahasuan me spektrin e kitosanit të treguar në Figurën 2A. Majat karakteristike spektrale të kitosanit (të regjistruara) në 3437 cm-1 (shtrirje OH dhe NH, mbivendosje), 2945 dhe 2897 cm-1 (shtrirje CH), 1660 cm-1 (tendosje NH2), 1589 cm-1 (përkulje N–H ), 1157 cm-1 (shtrirje ure O-), 1067 cm-1 (shtrirje C–O, hidroksil sekondar), 993 cm-1 (shtrirje CO, Bo-OH) 52.53.54. Tabela plotësuese S1 tregon vlerat e spektrit të absorbimit FTIR NFRCS për kitosanin (raportues), kitosanin e pastër, Cm, Ch dhe Cp. Spektrat FTIR të të gjitha NFRCS (Cm, Ch dhe Cp) treguan të njëjtat breza karakteristikë të absorbimit si kitosan i pastër pa ndonjë ndryshim të rëndësishëm (Fig. 2A). Rezultatet e FTIR konfirmuan mungesën e ndërveprimeve kimike ose fizike midis polimereve të përdorura për të zhvilluar NFRCS, duke treguar se polimerët e përdorur janë inertë.
Karakterizimi in vitro i Cm NFRCS, Ch NFRCS, Cp NFRCS dhe Cs. (A) përfaqëson spektrat e kombinuara FTIR të përbërjeve të kitosanit dhe Cm NFRCS, Ch NFRCS dhe Cp NFRCS nën kompresim. (B) a) Shkalla e thithjes së NFRCS nga gjaku i plotë Cm, Ch, Cp dhe Cg (n = 3); Mostrat Ct treguan një BAR më të lartë sepse shkopi i pambukut ka një efikasitet më të lartë thithjeje; b) Gjaku pas thithjes së gjakut Ilustrim i mostrës së thithur. Paraqitje grafike e BCT të mostrës së testimit C (Cp NFRCS kishte BCT më të mirë (15 s, n = 3)). Të dhënat në C, D, E dhe G u treguan si mesatare ± SD, dhe shiritat e gabimit përfaqësojnë SD, ***p < 0.0001. Të dhënat në C, D, E dhe G u treguan si mesatare ± SD, dhe shiritat e gabimit përfaqësojnë SD, ***p < 0.0001. Данные во C, D, E dhe G parashtrohen si средneе ± standarde отклонение, një plan i gabuar i parashtresës standarde отклонение, ***p <0,0001. Të dhënat në C, D, E dhe G paraqiten si mesatare ± devijim standard, dhe shiritat e gabimit përfaqësojnë devijimin standard, ***p<0.0001. C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p <0,0001。 C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p <0,0001。 Данные во C, D, E dhe G do të thotë se çfarë domethënie është ± standarde отклонение, plani i gabuar i parashtresës standarde отклонение, ***p <0,0001. Të dhënat në C, D, E dhe G tregohen si mesatare ± devijim standard, shiritat e gabimit përfaqësojnë devijimin standard, ***p<0.0001.