Paldies, ka apmeklējāt vietni Nature.com. Jūsu izmantotajai pārlūkprogrammas versijai ir ierobežots CSS atbalsts. Lai nodrošinātu vislabāko pieredzi, iesakām izmantot atjauninātu pārlūkprogrammu (vai atspējot saderības režīmu pārlūkprogrammā Internet Explorer). Tikmēr, lai nodrošinātu nepārtrauktu atbalstu, mēs atveidosim vietni bez stiliem un JavaScript.
Nekontrolēta asiņošana ir viens no galvenajiem nāves cēloņiem. Ātras hemostāzes sasniegšana nodrošina subjekta izdzīvošanu kā pirmo palīdzību kaujas, satiksmes negadījumu un nāves gadījumu samazināšanas operāciju laikā. Nanoporainas šķiedrām pastiprinātas kompozītmateriāla karkasa (NFRCS), kas iegūts no vienkārša hemostatiska plēvi veidojoša sastāva (HFFC) kā nepārtraukta fāze, var ierosināt un uzlabot hemostāzi. NFRCS izstrāde ir balstīta uz spāres spārna dizainu. Spāres spārna struktūra sastāv no šķērsvirziena un garenvirziena spārniem, un spārnu membrānas ir savienotas viena ar otru, lai saglabātu mikrostruktūras integritāti. HFFC vienmērīgi pārklāj šķiedras virsmu ar nanometra biezuma plēvi un savieno nejauši sadalīto kokvilnas biezumu (Ct) (dispersā fāze), veidojot nanoporainu struktūru. Nepārtrauktās un dispersās fāzes kombinācija samazina produkta izmaksas desmit reizes, salīdzinot ar komerciāli pieejamiem produktiem. Modificētus NFRCS (tamponus vai aproces) var izmantot dažādos biomedicīnas pielietojumos. In vivo pētījumos ir secināts, ka izstrādātais Cp NFRCS ierosina un uzlabo koagulācijas procesu lietošanas vietā. NFRCS var modulēt mikrovidi un iedarboties šūnu līmenī, pateicoties tā nanoporainajai struktūrai, kā rezultātā tiek panākta labāka brūču dzīšana ekscīzijas brūces modelī.
Nekontrolēta asiņošana kaujas, intraoperatīvos un ārkārtas apstākļos var radīt nopietnus draudus ievainoto dzīvībai1. Šie apstākļi vēl vairāk izraisa perifēro asinsvadu pretestības palielināšanos, kas noved pie hemorāģiskā šoka. Atbilstoši pasākumi asiņošanas kontrolei operācijas laikā un pēc tās tiek uzskatīti par potenciāli dzīvībai bīstamiem2,3. Lielu asinsvadu bojājumi izraisa milzīgu asins zudumu, kā rezultātā mirstība kaujas laikā ir ≤ 50% un operācijas laikā 31%1. Liels asins zudums izraisa ķermeņa tilpuma samazināšanos, kas samazina sirds izsviedi. Kopējās perifēro asinsvadu pretestības palielināšanās un progresējoša mikrocirkulācijas pasliktināšanās izraisa hipoksiju dzīvības uzturēšanas orgānos. Hemorāģiskais šoks var rasties, ja stāvoklis turpinās bez efektīvas iejaukšanās1,4,5. Citas komplikācijas ir hipotermijas un metaboliskās acidozes progresēšana, kā arī koagulācijas traucējumi, kas kavē koagulācijas procesu. Smags hemorāģiskais šoks ir saistīts ar lielāku nāves risku6,7,8. III pakāpes (progresējoša) šoka gadījumā asins pārliešana ir būtiska pacienta izdzīvošanai intraoperatīvās un pēcoperācijas saslimstības un mirstības laikā. Lai pārvarētu visas iepriekš minētās dzīvībai bīstamās situācijas, mēs esam izstrādājuši nanoporainu šķiedru armētu kompozītmateriālu karkasu (NFRCS), kurā, izmantojot ūdenī šķīstošu hemostatisku polimēru kombināciju, tiek izmantota minimāla polimēru koncentrācija (0,5%).
Izmantojot šķiedru stiegrojumu, var izstrādāt rentablus produktus. Nejauši izvietotās šķiedras atgādina spāres spārna struktūru, ko līdzsvaro horizontālās un vertikālās svītras uz spārniem. Spārna šķērsvirziena un gareniskās vēnas savienojas ar spārna membrānu (1. att.). NFRCS sastāv no pastiprināta Ct kā karkasa sistēmas ar labāku fizikālo un mehānisko izturību (1. attēls). Pieejamības un meistarības dēļ ķirurgi operāciju un pārsēju laikā dod priekšroku izmantot kokvilnas diegu kalibrus (Ct). Tādēļ, ņemot vērā tā daudzās priekšrocības, tostarp > 90% kristāliskās celulozes (kas veicina hemostāzes aktivitātes uzlabošanos), Ct tika izmantots kā NFRCS9,10 skeleta sistēma. Tādēļ, ņemot vērā tā daudzās priekšrocības, tostarp > 90% kristāliskās celulozes (kas veicina hemostāzes aktivitātes uzlabošanos), Ct tika izmantots kā NFRCS9,10 skeleta sistēma. Следовательно, учитывая его многочисленные преимущества, в том числе > 90% кристаллической целлютнишвевуочылозы гемостатической активности), Ct использовали в качестве скелетной системы NFRCS9,10. Tāpēc, ņemot vērā tā daudzās priekšrocības, tostarp >90% kristāliskas celulozes (kas iesaistīta paaugstinātā hemostatiskajā aktivitātē), Ct tika izmantots kā NFRCS skeleta sistēma9,10.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90% 的结晶纤维素（有助于增强止衧＀被用作NFRCS9,10 的骨架系统.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90%Tāpēc, ņemot vērā tā daudzās priekšrocības, tostarp vairāk nekā 90 % kristāliskas celulozes saturu (palīdz uzlabot hemostatisko aktivitāti), Ct tika izmantots kā NFRCS karkass9,10.Ct tika virspusēji pārklāts (tika novērota nanobiezu plēves veidošanās) un savienots ar hemostatisku plēvi veidojošu sastāvu (HFFC). HFFC darbojas kā matrigels, saturot kopā nejauši izvietotu Ct. Izstrādātā konstrukcija pārnes spriegumu dispersās fāzes ietvaros (pastiprinošās šķiedras). Izmantojot minimālu polimēru koncentrāciju, ir grūti iegūt nanoporainas struktūras ar labu mehānisko izturību. Turklāt nav viegli pielāgot dažādas veidnes dažādiem biomedicīnas pielietojumiem.
Attēlā redzama NFRCS konstrukcijas diagramma, kuras pamatā ir spāres spārna struktūra (A). Šajā attēlā redzama spāres spārna struktūras salīdzinoša analoģija (spārna krustojošās un gareniskās dzīslas ir savstarpēji savienotas) un Cp NFRCS šķērsgriezuma mikrofotoattēls (B). NFRCS shematisks attēlojums.
Lai novērstu iepriekš minētos ierobežojumus, NFRC tika izstrādāti, izmantojot HFFC kā nepārtrauktu fāzi. HFFC sastāv no dažādiem plēvi veidojošiem hemostatiskiem polimēriem, tostarp hitīna (kā galvenā hemostatiskā polimēra) ar metilcelulozi (MC), hidroksipropilmetilcelulozi (HPMC 50 cp) un polivinilspirtu (PVA) (125 kDa) kā atbalsta polimēru, kas veicina trombu veidošanos. Polivinilpirolidīna K30 (PVP K30) pievienošana uzlaboja NFRCS mitruma absorbcijas spēju. Lai uzlabotu polimēru šķērssaistīšanu saistītos polimēru maisījumos, tika pievienots polietilēnglikols 400 (PEG 400). Ct tika uzklāti trīs dažādi HFFC hemostatiskie sastāvi (Cm HFFC, Ch HFFC un Cp HFFC), proti, hitīns ar MC (Cm), hitīns ar HPMC (Ch) un hitīns ar PVA (Cp). Dažādi in vitro un in vivo raksturošanas pētījumi ir apstiprinājuši NFRCS hemostatisko un brūču dzīšanas aktivitāti. NFRCS piedāvātos kompozītmateriālus var izmantot, lai pielāgotu dažādas sastatņu formas atbilstoši īpašām vajadzībām.
Turklāt NFRCS var modificēt kā pārsēju vai rullīti, lai nosegtu visu apakšējo ekstremitāšu un citu ķermeņa daļu traumas zonu. Konkrēti kaujas locekļu traumām izstrādāto NFRCS dizainu var mainīt uz pusi rokas vai visu kāju (11. papildattēls). NFRCS var izgatavot par aproci ar audu līmi, ko var izmantot, lai apturētu asiņošanu no smagām pašnāvnieciskām plaukstas locītavas traumām. Mūsu galvenais mērķis ir izstrādāt NFRCS ar pēc iespējas mazāk polimēra, ko varētu piegādāt lielai iedzīvotāju grupai (zem nabadzības sliekšņa) un ko varētu ievietot pirmās palīdzības aptieciņā. Vienkāršs, efektīvs un ekonomisks NFRCS dizains sniedz labumu vietējām kopienām un var radīt globālu ietekmi.
Hitīns (molekulmasa 80 kDa) un amarants tika iegādāti no Merck, Indija. Hidroksipropilmetilceluloze 50 Cp, polietilēnglikols 400 un metilceluloze tika iegādāti no Loba Chemie Pvt. LLC, Mumbaja. Polivinilspirts (molekulmasa 125 kDa) (87–90% hidrolizēts) tika iegādāts no National Chemicals, Gudžarata. Polivinilpirolidīns K30 tika iegādāts no Molychem, Mumbaja, sterili tamponi tika iegādāti no Ramaraju Surgery Cotton Mills Ltd., Tamilnāda, izmantojot Milli Q ūdeni (Direct-Q3 ūdens attīrīšanas sistēma, Merck, Indija) kā nesējvielu.
NFRCS tika izstrādāts, izmantojot liofilizācijas metodi11,12. Visi HFFC sastāvi (1. tabula) tika sagatavoti, izmantojot mehānisko maisītāju. Sagatavojiet 0,5 % hitīna šķīdumu, izmantojot 1 % etiķskābi ūdenī, nepārtraukti maisot ar ātrumu 800 apgr./min uz mehāniskā maisītāja. Hitīna šķīdumam pievienoja precīzu ielādētā polimēra svaru, kas norādīts 1. tabulā, un maisīja, līdz ieguva dzidru polimēra šķīdumu. Iegūtajam maisījumam pievienoja PVP K30 un PEG 400 1. tabulā norādītajos daudzumos, un maisīšanu turpināja, līdz ieguva dzidru, viskozu polimēra šķīdumu. Iegūto polimēra šķīduma vannu 60 minūtes apstrādāja ar ultraskaņu, lai no polimēra maisījuma noņemtu iesprostotos gaisa burbuļus. Kā parādīts papildu attēlā S1(b), Ct vienmērīgi tika sadalīts katrā 6 iedobju plāksnes (veidnes) iedobē, kas papildināta ar 5 ml HFFC.
Sešu iedobju plāksne tika apstrādāta ar ultraskaņu 60 minūtes, lai panāktu vienmērīgu HFFC mitrināšanu un sadalījumu Ct tīklā. Pēc tam sešu iedobju plāksne tika sasaldēta -20°C temperatūrā 8–12 stundas. Saldēšanas plāksnes tika liofilizētas 48 stundas, lai iegūtu dažādas NFRCS formulas. Tā pati procedūra tiek izmantota, lai iegūtu dažādas formas un struktūras, piemēram, tamponus vai cilindriskus tamponus, vai jebkuru citu formu dažādiem pielietojumiem.
Precīzi nosvērts hitīns (80 kDa) (3%) tiek izšķīdināts 1% etiķskābē, izmantojot magnētisko maisītāju. Iegūtajam hitīna šķīdumam pievieno 1% PEG 400 un maisa 30 minūtes. Iegūto šķīdumu ielej kvadrātveida vai taisnstūrveida traukā un sasaldē -80°C temperatūrā 12 stundas. Saldētos paraugus liofilizē 48 stundas, lai iegūtu porainu Cs13.
Izstrādātā NFRCS tika pakļauta eksperimentiem, izmantojot Furjē transformācijas infrasarkano spektroskopiju (FTIR) (Shimadzu 8400 s FTIR, Tokija, Japāna), lai apstiprinātu hitīna ķīmisko saderību ar citiem polimēriem14,15. Visu testēto paraugu FTIR spektri (spektra diapazona platums no 400 līdz 4000 cm-1) tika iegūti, veicot 32 skenējumus.
Visu preparātu asins absorbcijas ātrums (BAR) tika novērtēts, izmantojot Čena u. c. aprakstīto metodi16 ar nelielām modifikācijām. Visu sastāvu izstrādātie NFRK tika žāvēti vakuuma krāsnī 105 °C temperatūrā nakti, lai noņemtu atlikušo šķīdinātāju. 30 mg NFRCS (sākotnējais parauga svars — W0) un 30 mg Ct (pozitīvā kontrole) tika ievietoti atsevišķos traukos, kas saturēja 3,8 % nātrija citrāta maisījumu. Iepriekš noteiktos laika intervālos, t. i., 5, 10, 20, 30, 40 un 60 sekundēs, NFRCS tika izņemti un to virsmas tika notīrītas no neabsorbētajām asinīm, novietojot paraugus uz Ct uz 30 sekundēm. Katrā laika punktā tika ņemts vērā NFRCS16 absorbēto asiņu galīgais svars (W1). BAR procentuālo daudzumu aprēķina, izmantojot šādu formulu:
Asins recēšanas laiks (BCT) tika noteikts, kā ziņoja Vangs et al. 17. Laiks, kas nepieciešams pilnasinīm (žurkas asinīm, kas iepriekš sajauktas ar 3,8% nātrija citrātu) sarecēšanai NFRCS klātbūtnē, tika aprēķināts kā testa parauga BCT. Dažādās NFRCS sastāvdaļas (30 mg) tika ievietotas 10 ml flakonos ar skrūvējamu vāciņu un inkubētas 37°C temperatūrā. Flakonam pievienoja asinis (0,5 ml) un pievienoja 0,3 ml 0,2 M CaCl2, lai aktivizētu asins recēšanu. Visbeidzot, ik pēc 15 sekundēm (līdz 180°) apgrieza flakonu, līdz izveidojas stingrs receklis. Parauga BCT tiek aprēķināts pēc apgriešanas trauku skaita17,18. Pamatojoties uz BCT, turpmākiem raksturošanas pētījumiem tika izvēlēti divi optimāli NFRCS sastāvi: Cm, Ch un Cp.
Ch NFRCS un Cp NFRCS sastāvu BCT tika noteikts, izmantojot Li et al. aprakstīto metodi19. Ievietojiet 15 x 15 mm2 Ch NFRCS, Cp NFRCS un Cs (pozitīvā kontrole) atsevišķos Petri trauciņos (37 °C). Asinis, kas satur 3,8% nātrija citrāta, tika sajauktas ar 0,2 M CaCl2 tilpuma attiecībā 10:1, lai uzsāktu asins recēšanas procesu. 20 µl 0,2 M CaCl2 žurku asiņu maisījuma uzklāja uz parauga virsmas un ievietoja tukšā Petri trauciņā. Kontrole bija asinis, kas ielietas tukšos Petri trauciņos bez Ct. Fiksētos 0, 3 un 5 minūšu intervālos pārtrauciet recēšanu, pievienojot 10 ml dejonizēta (DI) ūdens paraugam, kas satur trauciņu, netraucējot recekli. Nekoagulēti eritrocīti (eritrocīti) dejonizēta ūdens klātbūtnē tiek hemolīzēti un atbrīvo hemoglobīnu. Hemoglobīns dažādos laika punktos (HA(t)) tika mērīts pie 540 nm (λmax hemoglobin), izmantojot UV-Vis spektrofotometru. Par references standartu tika ņemta hemoglobīna absolūtā absorbcija (AH(0)) 0 minūtē 20 µl asiņu 10 ml dejonizēta ūdens. Relatīvā hemoglobīna uzņemšana (RHA) koagulētām asinīm tika aprēķināta no HA(t)/HA(0) attiecības, izmantojot to pašu asiņu partiju.
Izmantojot tekstūras analizatoru (Texture Pro CT V1.3 Build 15, Brookfield, ASV), tika noteiktas NFRK adhēzijas īpašības ar bojātiem audiem. Piespiediet cilindrisku trauku ar atvērtu dibenu pie cūkas ādas iekšpuses (bez tauku slāņa). Paraugi (Ch NFRCS un Cp NFRCS) tika ievietoti cilindriskās veidnēs, izmantojot kanulu, lai radītu adhēziju pie cūkas ādas. Pēc 3 minūšu inkubācijas istabas temperatūrā (RT) (25°C) NFRCS adhēzijas stiprība tika reģistrēta ar nemainīgu ātrumu 0,5 mm/sek.
Ķirurģisko hermētiķu galvenā iezīme ir palielināt asins recēšanu, vienlaikus samazinot asins zudumu. Bezzudumu koagulācija NFRCS tika novērtēta, izmantojot iepriekš publicētu metodi ar nelielām modifikācijām19. Izveidojiet mikrocentrifūgas mēģeni (2 ml) (iekšējais diametrs 10 mm) ar 8 × 5 mm2 caurumu vienā centrifūgas mēģenes pusē (kas attēlo atvērtu brūci). NFRCS izmanto, lai aizvērtu atveri, un lenti izmanto, lai noslēgtu ārējās malas. Pievienojiet 20 µl 0,2 M CaCl2 mikrocentrifūgas mēģenē, kurā atrodas 3,8% nātrija citrāta premikss. Pēc 10 minūtēm mikrocentrifūgas mēģenes tika izņemtas no trauciņiem, un tika noteikts trauciņu masas pieaugums, pateicoties asins aizplūšanai no NFRK (n = 3). Asins zudums Ch NFRCS un Cp NFRCS tika salīdzināti ar Cs.
NFRCS mitrā integritāte tika noteikta, pamatojoties uz Mišras un Čaudharija21 aprakstīto metodi ar nelielām izmaiņām. Ievietojiet NFRCS 100 ml Erlenmeijera kolbā ar 50 ml ūdens un kratiet 60 sekundes, neveidojot augšdaļu. Paraugu vizuāla pārbaude un prioritāšu noteikšana attiecībā uz fizisko integritāti, pamatojoties uz savākšanu.
HFFC saistīšanās stiprība ar Ct tika pētīta, izmantojot iepriekš publicētas metodes ar nelielām modifikācijām. Virsmas pārklājuma integritāte tika novērtēta, pakļaujot NFRK akustiskajiem viļņiem (ārējam stimulam) miliQ ūdens (Ct) klātbūtnē. Izstrādātie NFRCS Ch NFRCS un Cp NFRCS tika ievietoti ar ūdeni piepildītā vārglāzē un apstrādāti ar ultraskaņu attiecīgi 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 un 30 minūtes. Pēc žāvēšanas procentuālā starpība starp NFRCS sākotnējo un galīgo svaru tika izmantota, lai aprēķinātu materiāla zuduma procentuālo daudzumu (HFFC). In vitro BCT vēl vairāk apstiprināja saistīšanās stiprību vai virsmas materiālu zudumu. HFFC saistīšanās efektivitāte ar Ct nodrošina asins koagulāciju un elastīgu pārklājumu uz Ct22 virsmas.
Izstrādātā NFRCS homogenitāti noteica, veicot BCT testu paraugiem (30 mg), kas ņemti no nejauši izvēlētām NFRCS vispārējām atrašanās vietām. Lai noteiktu NFRCS atbilstību, ievērojiet iepriekš minēto BCT procedūru. Visu piecu paraugu tuvums viens otram nodrošina vienmērīgu virsmas pārklājumu un HFFC nogulsnēšanos Ct sietā.
Nominālā asins saskares zona (NBCA) tika noteikta, kā ziņots iepriekš, ar dažām modifikācijām. Asinis koagulēja, iespīlējot 20 µl asiņu starp Ct, Ch NFRCS, Cp NFRCS un Cs divām virsmām. Pēc 1 stundas abas stenta daļas tika atdalītas un manuāli izmērīts recekļa laukums. Trīs atkārtojumu vidējā vērtība tika uzskatīta par NBCA NFRCS19.
Dinamiskās tvaiku sorbcijas (DVS) analīze tika izmantota, lai novērtētu NFRCS efektivitāti ūdens absorbēšanā no ārējās vides vai no traumas vietas, kas ir atbildīga par koagulācijas uzsākšanu. DVS novērtē vai reģistrē tvaika uzņemšanu un zudumu paraugā gravimetriski, izmantojot īpaši jutīgus svarus ar masas izšķirtspēju ±0,1 µg. Daļēju tvaika spiedienu (relatīvo mitrumu) ģenerē elektronisks masas plūsmas regulators ap paraugu, sajaucot piesātinātas un sausas nesējgāzes. Saskaņā ar Eiropas Farmakopejas vadlīnijām, pamatojoties uz paraugu mitruma uzņemšanas procentuālo daudzumu, paraugi tika iedalīti 4 kategorijās (0–0,012 % m/m – nehigroskopiski, 0,2–2 % m/m – nedaudz higroskopiski, 2–15 % – vidēji higroskopiski un > 15 % – ļoti higroskopiski)23. Saskaņā ar Eiropas Farmakopejas vadlīnijām, pamatojoties uz paraugu mitruma uzņemšanas procentuālo daudzumu, paraugi tika iedalīti 4 kategorijās (0–0,012 % m/m – nehigroskopiski, 0,2–2 % m/m – nedaudz higroskopiski, 2–15 % – vidēji higroskopiski un > 15 % – ļoti higroskopiski)23.Saskaņā ar Eiropas Farmakopejas ieteikumiem, atkarībā no paraugu mitruma absorbcijas procentuālās daļas, paraugi tika iedalīti 4 kategorijās (0–0,012% m/m – nehigroskopiski, 0,2–2% m/m – nedaudz higroskopiski, 2–15%).% умеренно гигроскопичен и > 15% очень гигроскопичен)23. % vidēji higroskopisks un > 15 % ļoti higroskopisks)23.根据欧洲药典指南，根据样品吸收水分的百分比，样品分为4 类（0-0,012% w/w-0,012%非吸湿性、0,2-2% w/w 轻微吸湿性、2-15 % 适度吸湿，> 15% 非常吸湿）23.根据 欧洲 药典 指南 ， 根据 吸收 水分 的 百分比 样品 分为 分为 分为 分为 分为-0% .为 分为. W/w- 吸湿 性 、 、 、 、 0,2-2% W/w 轻微 、 2-15% 适度 吸湿 ，> 15 %非常吸湿）22Saskaņā ar Eiropas Farmakopejas ieteikumiem paraugi tiek iedalīti 4 klasēs atkarībā no parauga absorbētā mitruma procentuālā daudzuma (0–0,012 svara % – nehigroskopiski, 0,2–2 svara % – nedaudz higroskopiski, 2–15 svara %).% умеренно гигроскопичен, > 15 % очень гигроскопичен) 23. (% vidēji higroskopisks, > 15% ļoti higroskopisks) 23.NFCS X NFCS un TsN NFCS higroskopiskā efektivitāte tika noteikta ar analizatoru DVS TA TGA Q5000 SA. Šī procesa laikā tika iegūts darbības laiks, relatīvais mitrums (RH) un reāllaika parauga svars 25°C24 temperatūrā. Mitruma saturs tiek aprēķināts, veicot precīzu NFRCS masas analīzi, izmantojot šādu vienādojumu:
MC ir NFRCS mitrums. m1 – NPL sausnas svars. m2 ir NFRCS masa reāllaikā pie dotā relatīvā mitruma.
Kopējā virsmas platība tika aprēķināta, izmantojot slāpekļa adsorbcijas eksperimentu ar šķidru slāpekli pēc paraugu iztukšošanas 25 °C temperatūrā 10 stundas (< 7 × 10–3 Torr). Kopējā virsmas platība tika aprēķināta, izmantojot slāpekļa adsorbcijas eksperimentu ar šķidru slāpekli pēc paraugu iztukšošanas 25 °C temperatūrā 10 stundas (< 7 × 10–3 Torr). Общая площадь поверхности оценивалась с помощью эксперимента по адсорбции азота жидким апополтом образцов при 25 °С в течение 10 ч (< 7 × 10–3 Торр). Kopējā virsmas platība tika aprēķināta, izmantojot slāpekļa adsorbcijas eksperimentu ar šķidru slāpekli pēc tam, kad paraugi tika iztukšoti 25°C temperatūrā 10 stundas (< 7 × 10–3 Torr).在25°C 清空样品10 小时（< 7 × 10-3 Torr）后，使用液氮的氮吸附实验估计总表验估计总表在 25°C Общая площадь поверхности оценивалась с использованием экспериментов по адсорбции азота жидкниеня посолтов образцов в течение 10 часов при 25°C (< 7 × 10-3 торр). Kopējā virsmas platība tika aprēķināta, izmantojot slāpekļa adsorbcijas eksperimentus ar šķidru slāpekli pēc tam, kad paraugi tika iztukšoti 10 stundas 25°C temperatūrā (< 7 x 10-3 torr).Kopējā virsmas platība, poru tilpums un NFRCS poru izmērs tika noteikti ar NOVA 1000e, Austrija, Quantachrome, izmantojot RS 232 programmatūru.
Sagatavojiet 5% eritrocītus (fizioloģiskais šķīdums kā atšķaidītājs) no pilnasinīm. Pēc tam pārnesiet HFFC alikvotu (0,25 ml) uz 96 iedobju plāksni un pievienojiet 5% eritrocītu masu (0,1 ml). Inkubējiet maisījumu 37°C temperatūrā 40 minūtes. Par pozitīvu kontroli tika uzskatīts eritrocītu un seruma maisījums, bet par negatīvu kontroli - fizioloģiskā šķīduma un eritrocītu maisījums. Hemaglutinācija tika noteikta pēc Stajicka skalas. Piedāvātās skalas ir šādas: + + + + blīvi granulēti agregāti; + + + gludi apakšējie spilventiņi ar izliektām malām; + + gludi apakšējie spilventiņi ar saplēstām malām; + šauri sarkani gredzeni ap gludo spilventiņu malām; – (negatīva) atsevišķa sarkana poga 12 apakšējās iedobes centrā.
NFRCS hemosaderība tika pētīta saskaņā ar Starptautiskās standartizācijas organizācijas (ISO) metodi (ISO10993-4, 1999)26,27. Gravimetriskā metode, ko aprakstījuši Sings u.c. Tika veiktas nelielas modifikācijas, lai novērtētu trombu veidošanos NFRCS klātbūtnē vai uz tās virsmas. 500 mg Cs, Ch NFRCS un Cp NFRCS tika inkubēti fosfātu buferšķīdumā (PBS) 24 stundas 37°C temperatūrā. Pēc 24 stundām PBS tika noņemts un NFRCS tika apstrādāts ar 2 ml asinīm, kas satur 3,8% nātrija citrāta. Uz NFRCS virsmas inkubētajiem paraugiem pievienoja 0,04 ml 0,1 M CaCl2. Pēc 45 minūtēm pievienoja 5 ml destilēta ūdens, lai apturētu koagulāciju. Uz NFRK virsmas sarecējušās asinis apstrādāja ar 36-38% formaldehīda šķīdumu. Ar formaldehīdu fiksētie recekļi tika žāvēti un nosvērti. Trombozes procentuālā daļa tika aprēķināta, aprēķinot glāzes svaru bez asinīm un parauga (negatīvā kontrole) un glāzes svaru ar asinīm (pozitīvā kontrole).
Sākotnējam apstiprinājumam paraugi tika vizualizēti optiskajā mikroskopā, lai izprastu HFFC virsmas pārklājuma, savstarpēji saistītā Ct un Ct tīkla spēju veidot poras. Plānas Ch un Cp daļas no NFRCS tika apgrieztas ar skalpeļa asmeni. Iegūtā daļa tika novietota uz stikla priekšmetstikliņa, pārklāta ar pārklājuma stikliņu un malas nostiprinātas ar līmi. Sagatavotos priekšmetstikliņus apskatīja optiskajā mikroskopā, un tika uzņemtas fotogrāfijas dažādos palielinājumos.
Polimēru nogulsnēšanās Ct tīklos tika vizualizēta, izmantojot fluorescences mikroskopiju, kuras pamatā ir Rice et al.29 aprakstītā metode. Formulēšanai izmantotais HFFC sastāvs tika sajaukts ar fluorescējošu krāsvielu (amarantu), un NFRCS (Ch un Cp) tika sagatavoti saskaņā ar iepriekš minēto metodi. Formulēšanai izmantotais HFFC sastāvs tika sajaukts ar fluorescējošu krāsvielu (amarantu), un NFRCS (Ch un Cp) tika sagatavoti saskaņā ar iepriekš minēto metodi.Formulēšanai izmantotais HFFC sastāvs tika sajaukts ar fluorescējošu krāsvielu (amarantu), un NFRCS (Ch un Cp) tika iegūti saskaņā ar iepriekš minēto metodi.将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的FR峕Cs. Cp).将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的FR峕Cs. Cp).Formulā izmantotais HFFC sastāvs tika sajaukts ar fluorescējošu krāsvielu (amarants) un, kā minēts iepriekš, pievienots NFRCS (Ch un Cp).No iegūtajiem paraugiem tika izgrieztas plānas NFRK sekcijas, novietotas uz stikla stikliņiem un pārklātas ar segstikliem. Sagatavotos stikliņus varēja novērot fluorescences mikroskopā, izmantojot zaļo filtru (310–380 nm). Attēli tika uzņemti ar 4x palielinājumu, lai izprastu Ct sakarības un liekā polimēra nogulsnēšanos Ct tīklā.
NFRCS Ch un Cp virsmas topogrāfija tika noteikta, izmantojot atomspēka mikroskopu (AFM) ar īpaši asu TESP konsoli vītņošanas režīmā: 42 N/m, 320 kHz, ROC 2-5 nm, Bruker, Taivāna. Virsmas raupjums tika noteikts, izmantojot programmatūru (Scanning Probe Image Processor), pēc vidējās kvadrātiskās vērtības (RMS). Lai pārbaudītu virsmas vienmērīgumu, 3D attēlos tika atveidotas dažādas NFRCS atrašanās vietas. Dotās zonas vērtējuma standartnovirze tiek definēta kā virsmas raupjums. NFRCS31 virsmas raupjuma kvantitatīvai noteikšanai tika izmantots RMS vienādojums.
FESEM pētījumi tika veikti, izmantojot FESEM, SU8000, HI-0876-0003, Hitachi, Tokija, lai izprastu Ch NFRCS un Cp NFRCS virsmas morfoloģiju, kas uzrādīja labāku BCT nekā Cm NFRCS. FESEM pētījums tika veikts saskaņā ar Zhao et al. 32 aprakstīto metodi ar nelielām modifikācijām. 20 līdz 30 mg Ch NFRCS un Cp NFRCS tika iepriekš sajaukti ar 20 µl 3,8% nātrija citrāta, kas iepriekš sajaukts ar žurku asinīm. Ar asinīm apstrādātajiem paraugiem pievienoja 20 μl 0,2 M CaCl2, lai uzsāktu koagulāciju, un paraugus inkubēja istabas temperatūrā 10 minūtes. Turklāt liekie eritrocīti tika noņemti no NFRCS virsmas, skalojot ar fizioloģisko šķīdumu.
Turpmākie paraugi tika apstrādāti ar 0,1 % glutaraldehīda un pēc tam žāvēti karstā gaisa krāsnī 37 °C temperatūrā, lai noņemtu mitrumu. Žāvētie paraugi tika pārklāti un analizēti32. Citi analīzes laikā iegūtie attēli bija recekļa veidošanās uz atsevišķu kokvilnas šķiedru virsmas, polimēru nogulsnēšanās starp Ct, eritrocītu morfoloģija (forma), recekļa integritāte un eritrocītu morfoloģija NFRCS klātbūtnē. Neapstrādātas NFRCS zonas un ar Ch un Cp apstrādātas NFRCS zonas, kas inkubētas ar asinīm, tika skenētas, lai noteiktu elementāros jonus (nātriju, kāliju, slāpekli, kalciju, magniju, cinku, varu un selēnu)33. Salīdziniet elementāro jonu procentuālo daudzumu starp apstrādātajiem un neapstrādātajiem paraugiem, lai izprastu elementāro jonu uzkrāšanos recekļa veidošanās laikā un recekļa homogenitāti.
Cp HFFC virsmas pārklājuma biezums uz Ct virsmas tika noteikts, izmantojot FESEM. Cp NFRCS šķērsgriezumi tika izgriezti no karkasa un uzklāti ar izsmidzināšanas metodi. Iegūtie izsmidzināšanas pārklājuma paraugi tika novēroti ar FESEM, un tika mērīts virsmas pārklājuma biezums [34, 35, 36].
Rentgena mikro-DT nodrošina augstas izšķirtspējas 3D nesagraujošu attēlveidošanu un ļauj pētīt NFRK iekšējo strukturālo izvietojumu. Mikro-DT izmanto rentgena staru kūli, kas iet caur paraugu, lai reģistrētu rentgenstaru lokālo lineāro vājināšanās koeficientu paraugā, kas palīdz iegūt morfoloģisku informāciju. Ct iekšējā atrašanās vieta Cp NFRCS un ar asinīm apstrādātā Cp NFRCS tika pārbaudīta ar mikro-DT, lai izprastu absorbcijas efektivitāti un asins recēšanu NFRCS klātbūtnē37,38,39. Ar asinīm apstrādāto un neapstrādāto Cp NFRCS paraugu 3D struktūras tika rekonstruētas, izmantojot mikro-DT (V|tome|x S240, Fīniksa, Vācija). Izmantojot VG STUDIO-MAX programmatūras 2.2. versiju, vairāki rentgena attēli tika uzņemti no dažādiem leņķiem (ideālā gadījumā 360° pārklājums), lai izstrādātu 3D attēlus NFRCS. Apkopotie projekcijas dati tika rekonstruēti 3D tilpuma attēlos, izmantojot atbilstošo vienkāršo 3D ScanIP Academic programmatūru.
Turklāt, lai izprastu recekļa sadalījumu, NFRCS tika pievienoti 20 µl iepriekš sajauktas citrāta asiņu un 20 µl 0,2 M CaCl2, lai uzsāktu asins recēšanu. Sagatavotos paraugus atstāj sacietēt. NFRK virsma tika apstrādāta ar 0,5% glutaraldehīdu un žāvēta karstā gaisa krāsnī 30–40 °C temperatūrā 30 minūtes. Uz NFRCS izveidojies asins receklis tika skenēts, rekonstruēts un vizualizēts asins recekļa 3D attēls.
Antibakteriālās pārbaudes tika veiktas ar Cp NFRCS (vislabāk salīdzinājumā ar Ch NFRCS), izmantojot iepriekš aprakstīto metodi ar nelielām modifikācijām. Cp NFRCS un Cp HFFC antibakteriālā aktivitāte tika noteikta, izmantojot trīs dažādus testa mikroorganismus [S.aureus (grampozitīvas baktērijas), E.coli (gramnegatīvas baktērijas) un balto Candida (C.albicans)], kas audzēja uz agara Petri trauciņos inkubatorā. Vienmērīgi inokulējiet 50 ml atšķaidītas baktēriju kultūras suspensijas ar koncentrāciju 105-106 CFU ml-1 uz agara barotnes. Ielejiet barotni Petri trauciņā un ļaujiet tai sacietēt. Agara plāksnes virsmā tika izveidotas iedobes, lai tās piepildītu ar HFFC (3 iedobes HFFC un 1 negatīvajai kontrolei). Pievienojiet 200 µl HFFC 3 iedobēm un 200 µl pH 7,4 PBS 4. iedobei. Petri trauciņa otrā pusē uz sacietējušā agara novieto 12 mm Cp NFRCS disku un samitrini ar PBS (pH 7,4). Ciprofloksacīna, ampicilīna un flukonazola tabletes tiek uzskatītas par references standartiem Staphylococcus aureus, Escherichia coli un Candida albicans. Manuāli izmēriet inhibīcijas zonu un uzņemiet inhibīcijas zonas digitālo attēlu.
Pēc iestādes ētikas apstiprinājuma pētījums tika veikts Kasturba Medicīnas izglītības un pētniecības koledžā Manipalā, Karnatakā, Indijas dienvidos. In vitro TEG eksperimentālo protokolu ir pārskatījusi un apstiprinājusi Kasturba Medicīnas koledžas Institucionālā ētikas komiteja Manipalā, Karnatakā (IEC: 674/2020). Pētījuma dalībnieki tika rekrutēti no brīvprātīgajiem asins donoriem (vecumā no 18 līdz 55 gadiem) no slimnīcas asins bankas. Turklāt no brīvprātīgajiem tika saņemta informētas piekrišanas veidlapa asins paraugu ņemšanai. Lai pētītu Cp HFFC formulējuma ietekmi uz pilnasinīm, kas iepriekš sajauktas ar nātrija citrātu, tika izmantots natīvais TEG (N-TEG). N-TEG ir plaši atzīts par savu lomu aprūpes punkta reanimācijā, kas rada problēmas ārstiem, jo ​​​​rezultāti var klīniski nozīmīgi aizkavēties (rutīnas koagulācijas testi). N-TEG analīze tika veikta, izmantojot pilnasinis. No visiem dalībniekiem tika iegūta informēta piekrišana un detalizēta medicīniskā vēsture. Pētījumā netika iekļauti dalībnieki ar hemostatiskām vai trombotiskām komplikācijām, piemēram, grūtniecību/pēcdzemdību periodu vai aknu slimībām. No pētījuma tika izslēgti arī subjekti, kuri lietoja zāles, kas ietekmē koagulācijas kaskādi. Visiem dalībniekiem saskaņā ar standarta procedūrām tika veiktas pamata laboratorijas pārbaudes (hemoglobīns, protrombīna laiks, aktivētais tromboplastīns un trombocītu skaits). N-TEG nosaka asins recekļa viskoelastību, sākotnējo recekļa struktūru, daļiņu mijiedarbību, recekļa nostiprināšanos un recekļa līzi. N-TEG analīze sniedz grafiskus un skaitliskus datus par vairāku šūnu elementu un plazmas kopējo ietekmi. N-TEG analīze tika veikta diviem dažādiem Cp HFFC tilpumiem (10 µl un 50 µl). Rezultātā 10 μl Cp HFFC tika pievienots 1 ml pilnasinīm ar citronskābi. 20 µl 0,2 M CaCl2 saturošam TEG traukam pievieno 1 ml (Cp HFFC + citrāta asinis), 340 µl jauktu asiņu. Pēc tam TEG trauciņi tika ievietoti TEG® 5000, US, lai izmērītu R, K, alfa leņķi, MA, G, CI, TPI, EPL, LY 30% asins paraugu Cp HFFC41 klātbūtnē.
In vivo pētījuma protokolu pārskatīja un apstiprināja Kasturbas Medicīnas skolas, Manipalas Augstākās izglītības institūta, Manipalas, Dzīvnieku ētikas komiteja (IAEC) (IAEC/KMC/69/2020). Visi dzīvnieku eksperimenti tika veikti saskaņā ar Dzīvnieku eksperimentu kontroles un uzraudzības komitejas (CPCSEA) ieteikumiem. Visi in vivo NFRCS pētījumi (2 × 2 cm2) tika veikti ar Wistar žurku mātītēm (ar svaru no 200 līdz 250 g). Visi dzīvnieki tika aklimatizēti 24–26 °C temperatūrā, dzīvniekiem bija brīva piekļuve standarta barībai un ūdenim ad libitum. Visi dzīvnieki tika nejauši sadalīti dažādās grupās, katrā grupā bija trīs dzīvnieki. Visi pētījumi tika veikti saskaņā ar Dzīvnieku pētījumi: In vivo eksperimentu ziņojums 43. Pirms pētījuma dzīvniekiem tika veikta anestēzija, intraperitoneāli (ip) ievadot 20–50 mg ketamīna (uz 1 kg ķermeņa masas) un 2–10 mg ksilazīna (uz 1 kg ķermeņa masas) maisījumu. Pēc pētījuma asiņošanas apjoms tika aprēķināts, novērtējot starpību starp paraugu sākotnējo un galīgo svaru, un par parauga asiņošanas apjomu tika ņemta vidējā vērtība, kas iegūta no trim testiem.
Žurkas astes amputācijas modelis tika ieviests, lai izprastu NFRCS potenciālu modulēt asiņošanu traumas, kaujas vai satiksmes negadījuma gadījumā (traumu modelis). Ar skalpeļa asmeni nogrieza 50% astes un 15 sekundes ievietoja gaisā, lai nodrošinātu normālu asiņošanu. Turklāt testa paraugi tika novietoti uz žurkas astes, pieliekot spiedienu (Ct, Cs, Ch NFRCS un Cp NFRCS). Testa paraugiem (n = 3) tika ziņots par asiņošanu un PCT17,45.
NFRCS spiediena kontroles efektivitāte kaujas apstākļos tika pētīta, izmantojot virspusējās augšstilba artērijas modeli. Augšstilba artērija tiek atsegta, caurdurta ar 24G trokāru un asiņota 15 sekunžu laikā. Pēc nekontrolētas asiņošanas novērošanas testa paraugs tiek novietots punkcijas vietā, pieliekot spiedienu. Tūlīt pēc testa parauga uzklāšanas tika reģistrēts asinsreces laiks un hemostāzes efektivitāte tika novērota nākamās 5 minūtes. Tā pati procedūra tika atkārtota ar Cs un Ct46.
Doulings un līdzautori47 ierosināja aknu bojājuma modeli, lai novērtētu hemostatisko materiālu hemostatisko potenciālu intraoperatīvas asiņošanas kontekstā. BCT tika reģistrēts Ct paraugiem (negatīvā kontrole), Cs karkasa paraugiem (pozitīvā kontrole), Ch NFRCS paraugiem un Cp NFRCS paraugiem. Žurkas suprahepatiskā vena cava tika atsegta, veicot mediānu laparotomiju. Pēc tam ar šķērēm tika izgriezta kreisās daivas distālā daļa. Ar skalpeļa asmeni veica iegriezumu aknās un ļāva tām dažas sekundes asiņot. Precīzi nosvērti Ch NFRCS un Cp NFRCS testa paraugi tika novietoti uz bojātās virsmas bez jebkāda pozitīva spiediena, un tika reģistrēts BCT. Kontroles grupa (Ct) pēc tam pielietoja spiedienu, kam sekoja Cs 30 s47, nepārraujot traumu.
In vivo brūču dzīšanas testi tika veikti, izmantojot ekscīzijas brūces modeli, lai novērtētu izstrādāto uz polimēriem balstīto NFRCS brūču dzīšanas īpašības. Ekscīzijas brūču modeļi tika atlasīti un veikti saskaņā ar iepriekš publicētām metodēm ar nelielām modifikācijām19,32,48. Visi dzīvnieki tika anestēti, kā aprakstīts iepriekš. Izmantojiet biopsijas perforatoru (12 mm), lai izveidotu apļveida dziļu iegriezumu muguras ādā. Sagatavotās brūču vietas tika pārsētas ar Cs (pozitīvā kontrole), Ct (ņemot vērā, ka vates plāksnītes traucē dzīšanu), Ch NFRCS un Cp NFRCS (eksperimentālā grupa) un negatīvo kontroli bez jebkādas apstrādes. Katrā pētījuma dienā visām žurkām tika mērīts brūces laukums. Izmantojot digitālo kameru, nofotografēja brūces laukumu un uzlika jaunu pārsēju. Brūces slēgšanās procentuālā daļa tika mērīta pēc šādas formulas:
Pamatojoties uz brūču slēgšanās procentuālo daļu pētījuma 12. dienā, labākās grupas žurku āda tika izgriezta ((Cp NFRCS) un kontroles grupai) un pētīta ar H&E krāsošanu un Masson trihroma krāsošanu. Pamatojoties uz brūču slēgšanās procentuālo daļu pētījuma 12. dienā, labākās grupas žurku āda tika izgriezta ((Cp NFRCS) un kontroles grupai) un pētīta ar H&E krāsošanu un Masson trihroma krāsošanu.Pamatojoties uz brūču slēgšanās procentuālo daļu pētījuma 12. dienā, labākās grupas ((Cp NFRCS) un kontroles grupas) žurku āda tika izgriezta un pārbaudīta, iekrāsojot ar hematoksilīna-eozīnu un Masona trihromu.根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组)的大鼠皮肤，进行H&E染色和Masson三色染色研究.根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组)的大鼠皮肤，进行H&E染色和眳组）Pētījuma 12. dienā žurkas labākajā grupā ((Cp NFRCS) un kontroles grupās) tika izgrieztas hematoksilīna-eozīna krāsošanai un Masona trihroma krāsošanai, pamatojoties uz brūču slēgšanās procentuālo daudzumu.Īstenotā krāsošanas procedūra tika veikta saskaņā ar iepriekš aprakstītajām metodēm49,50. Īsumā, pēc fiksācijas 10% formalīnā paraugi tika dehidrēti, izmantojot virkni graduētu spirtu. Izmantojiet mikrotomu, lai iegūtu plānas (5 µm biezas) izgriezto audu sekcijas. Kontroles un Cp NFRCS plānas sērijas sekcijas tika apstrādātas ar hematoksilīnu un eozīnu, lai pētītu histopatoloģiskās izmaiņas. Masona trihroma krāsojums tika izmantots, lai noteiktu kolagēna fibrilu veidošanos. Iegūtos rezultātus patologi pētīja akli.
Cp NFRCS paraugu stabilitāte tika pētīta istabas temperatūrā (25 °C ± 2 °C/60 % relatīvais mitrums ± 5 %) 12 mēnešus51. Cp NFRCS (virsmas krāsas maiņa un mikrobu augšana) tika vizuāli pārbaudīta un testēta attiecībā uz nodilumizturību kroku gadījumā un BCT saskaņā ar iepriekš minētajām metodēm, kas aprakstītas sadaļā Materiāli un metodes.
Cp NFRCS mērogojamība un reproducējamība tika pārbaudīta, sagatavojot Cp NFRCS ar izmēru 15 × 15 cm2. Turklāt no dažādām Cp NFRCS frakcijām tika izgriezti 30 mg paraugi (n = 5), un pētāmo paraugu BCT tika novērtēts, kā aprakstīts iepriekš sadaļā Metodes.
Mēs esam mēģinājuši izstrādāt dažādas formas un struktūras, izmantojot Cp NFRCS sastāvus dažādiem biomedicīniskiem pielietojumiem. Šādas formas vai konfigurācijas ietver koniskus tamponus deguna asiņošanas gadījumā, zobārstniecības procedūrās un cilindriskus tamponus maksts asiņošanas gadījumā.
Visi datu kopumi ir izteikti kā vidējais ± standartnovirze un tika analizēti ar ANOVA, izmantojot Prism 5.03 (GraphPad, San Diego, CA, ASV), kam sekoja Bonferroni daudzkārtējo salīdzinājumu tests (*p<0,05).
Visas cilvēku pētījumos veiktās procedūras atbilda Institūta un Nacionālās pētniecības padomes standartiem, kā arī 1964. gada Helsinku deklarācijai un tās turpmākajiem grozījumiem vai līdzīgiem ētikas standartiem. Visi dalībnieki tika informēti par pētījuma iezīmēm un tā brīvprātīgo raksturu. Dalībnieku dati pēc savākšanas paliek konfidenciāli. In vitro TEG eksperimentālo protokolu ir pārskatījusi un apstiprinājusi Kasturba Medicīnas koledžas Institucionālās ētikas komiteja Manipalā, Karnatakā (IEC: 674/2020). Brīvprātīgie parakstīja informētu piekrišanu asins paraugu ņemšanai.
Visas dzīvnieku pētījumos veiktās procedūras tika veiktas saskaņā ar Manipalas Augstākās izglītības institūta Kastubas Medicīnas fakultātes noteikumiem (IAEC/KMC/69/2020). Visi plānotie dzīvnieku eksperimenti tika veikti saskaņā ar Dzīvnieku eksperimentu kontroles un uzraudzības komitejas (CPCSEA) vadlīnijām. Visi autori ievēro ARRIVE vadlīnijas.
Visu NFRCS FTIR spektri tika analizēti un salīdzināti ar hitīna spektru, kas parādīts 2.A attēlā. Hitīna raksturīgie spektra pīķi (reģistrēti) pie 3437 cm-1 (OH un NH stiepšanās, pārklāšanās), 2945 un 2897 cm-1 (CH stiepšanās), 1660 cm-1 (NH2 deformācija), 1589 cm-1 (N–H liece), 1157 cm-1 (tilta stiepšanās O-), 1067 cm-1 (stiepšanās C–O, sekundārā hidroksilgrupa), 993 cm-1 (stiepšanās CO, Bo-OH) 52,53,54. Papildu tabulā S1 ir parādītas FTIR NFRCS absorbcijas spektra vērtības hitīnam (reportieris), tīram hitīnam, Cm, Ch un Cp. Visu NFRCS (Cm, Ch un Cp) FTIR spektri uzrādīja tādas pašas raksturīgās absorbcijas joslas kā tīram hitīnam bez būtiskām izmaiņām (2.A attēls). FTIR rezultāti apstiprināja ķīmiskas vai fizikālas mijiedarbības neesamību starp NFRCS izstrādē izmantotajiem polimēriem, kas norāda, ka izmantotie polimēri ir inerti.
Cm NFRCS, Ch NFRCS, Cp NFRCS un Cs in vitro raksturojums. (A) attēlo hitīna un Cm NFRCS, Ch NFRCS un Cp NFRCS sastāvu kombinētos FTIR spektrus kompresijas ietekmē. (B) a) NFRCS Cm, Ch, Cp un Cg uzņemšanas ātrums asinīs (n = 3); Ct paraugi uzrādīja augstāku BAR, jo vates tamponam ir augstāka absorbcijas efektivitāte; b) Asinis pēc asins absorbcijas. Absorbētā parauga ilustrācija. Testa parauga C BCT grafisks attēlojums (Cp NFRCS uzrādīja vislabāko BCT (15 s, n = 3)). C, D, E un G datos dati tika parādīti kā vidējais ± SD, un kļūdu joslas apzīmē SD, ***p < 0,0001. C, D, E un G datos dati tika parādīti kā vidējais ± SD, un kļūdu joslas apzīmē SD, ***p < 0,0001. Данные в C, D, E un G представлены как среднее ± стандартное отклонение, а планки погрешностей представлендатлста, представлендают ***p <0,0001. C, D, E un G datos dati ir attēloti kā vidējais rādītājs ± standartnovirze, un kļūdu joslas apzīmē standartnovirzi, ***p<0,0001. C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p < 0,0001. C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p < 0,0001. Данные в C, D, E un G показаны как среднее значение ± стандартное отклонение, планки погрешностей представлята отклонение, ***p <0,0001. C, D, E un G datos dati ir parādīti kā vidējais rādītājs ± standartnovirze, kļūdu joslas apzīmē standartnovirzi, ***p<0,0001.