Дзякуй за наведванне сайта Nature.com. Версія браўзера, якой вы карыстаецеся, мае абмежаваную падтрымку CSS. Для найлепшага карыстання рэкамендуем выкарыстоўваць абноўлены браўзер (або адключыць рэжым сумяшчальнасці ў Internet Explorer). Тым часам, каб забяспечыць бесперапынную падтрымку, мы будзем адлюстроўваць сайт без стыляў і JavaScript.
Некантралюемы крывацёк з'яўляецца адной з галоўных прычын смерці. Дасягненне хуткага гемастазу забяспечвае выжыванне пацярпелага ў якасці першай дапамогі падчас баявых дзеянняў, дарожна-транспартных здарэнняў і аперацый па зніжэнні смяротнасці. Нанапорысты кампазітны каркас, узмоцнены валакном (NFRCS), атрыманы з простага гемастатычнага плёнкаўтваральнага складу (HFFC) у якасці бесперапыннай фазы, можа выклікаць і ўзмацніць гемастаз. Распрацоўка NFRCS заснавана на канструкцыі крыла стракозы. Структура крыла стракозы складаецца з папярочных і падоўжных крылаў, а мембраны крылаў злучаны адна з адной для падтрымання цэласнасці мікраструктуры. HFFC раўнамерна пакрывае паверхню валакна плёнкай нанаметровай таўшчыні і злучае выпадкова размеркаваную таўшчыню бавоўны (Ct) (дысперсную фазу), утвараючы нанапорыстай структуру. Спалучэнне бесперапыннай і дысперснай фаз зніжае кошт прадукту ў дзесяць разоў у параўнанні з камерцыйна даступнымі прадуктамі. Мадыфікаваныя NFRCS (тампоны або бранзалеты) могуць выкарыстоўвацца ў розных біямедыцынскіх прымяненнях. Даследаванні in vivo паказалі, што распрацаваны Cp NFRCS запускае і ўзмацняе працэс каагуляцыі ў месцы нанясення. NFRCS можа мадуляваць мікраасяроддзе і дзейнічаць на клеткавым узроўні дзякуючы сваёй нанапорыстай структуры, што прыводзіць да лепшага гаення ран у мадэлі эксцызійнай раны.
Некантралюемае крывацёк падчас баявых дзеянняў, інтрааперацыйных і надзвычайных сітуацый можа ўяўляць сур'ёзную пагрозу для жыцця параненых1. Гэтыя станы ў далейшым прыводзяць да агульнага павелічэння перыферычнага сасудзістага супраціўлення, што выклікае гемарагічны шок. Адпаведныя меры па кантролі крывацёку падчас і пасля аперацыі лічацца патэнцыйна небяспечнымі для жыцця2,3. Пашкоджанне буйных сасудаў прыводзіць да масіўнай страты крыві, што прыводзіць да смяротнасці ≤ 50% у баі і 31% падчас аперацыі1. Масіўная страта крыві прыводзіць да памяншэння аб'ёму цела, што зніжае сардэчны выкід. Павелічэнне агульнага перыферычнага сасудзістага супраціўлення і прагрэсавальнае парушэнне мікрацыркуляцыі прыводзяць да гіпаксіі ў органах жыццезабеспячэння. Гемарагічны шок можа ўзнікнуць, калі стан працягваецца без эфектыўнага ўмяшання1,4,5. Іншыя ўскладненні ўключаюць прагрэсаванне гіпатэрміі і метабалічнага ацыдозу, а таксама парушэнне згусальнасці крыві, якое перашкаджае працэсу згусальнасці крыві. Цяжкі гемарагічны шок звязаны з больш высокай рызыкай смерці6,7,8. Пры шоку III ступені (прагрэсавальным) пераліванне крыві неабходна для выжывання пацыента падчас інтрааперацыйнай і пасляаперацыйнай захворвальнасці і смяротнасці. Каб пераадолець усе вышэйпералічаныя пагражальныя жыццю сітуацыі, мы распрацавалі нанапорысты кампазітны каркас, узмоцнены валакном (NFRCS), які выкарыстоўвае мінімальную канцэнтрацыю палімера (0,5%) з выкарыстаннем камбінацыі водарастваральных гемастатычных палімераў.
Дзякуючы выкарыстанню валакністага армавання можна распрацаваць эканамічна эфектыўныя прадукты. Выпадкова размешчаныя валокны нагадваюць структуру крыла стракозы, ураўнаважаную гарызантальнымі і вертыкальнымі палосамі на крылах. Папярочныя і падоўжныя жылкі крыла злучаюцца з мембранай крыла (мал. 1). NFRCS складаецца з узмоцненага Ct у якасці сістэмы каркаса з лепшай фізічнай і механічнай трываласцю (малюнак 1). З-за даступнасці і майстэрства вырабу хірургі аддаюць перавагу выкарыстоўваць баваўняныя ніткавыя калібры (Ct) падчас аперацый і перавязак. Такім чынам, улічваючы яго шматлікія перавагі, у тым ліку > 90% крышталічнай цэлюлозы (што спрыяе павышэнню гемастатычнай актыўнасці), Ct быў выкарыстаны ў якасці шкілетнай сістэмы NFRCS9,10. Такім чынам, улічваючы яго шматлікія перавагі, у тым ліку > 90% крышталічнай цэлюлозы (што спрыяе павышэнню гемастатычнай актыўнасці), Ct быў выкарыстаны ў якасці шкілетнай сістэмы NFRCS9,10. Такім чынам, улічваючы яго шматлікавыя перавагі, у тым ліку > 90% крышталічнай целлюлозы (удзельнічае ў павышэнні гемостатической актыўнасці), Ct выкарыстоўвалі ў якасці шкілетнай сістэмы NFRCS9,10. Такім чынам, улічваючы шматлікія перавагі, у тым ліку >90% крышталічнай цэлюлозы (якая ўдзельнічае ў павышэнні гемастатычнай актыўнасці), Ct выкарыстоўваўся ў якасці шкілетнай сістэмы NFRCS9,10.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90% 的结晶纤维素（有助于增强止血活性），Ct被用作NFRCS9,10 的骨架系统.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90%Такім чынам, улічваючы яго шматлікія перавагі, у тым ліку больш за 90% крышталічнай цэлюлозы (што дапамагае палепшыць гемастатычную актыўнасць), Ct быў выкарыстаны ў якасці каркаса для NFRCS9,10.Ct быў павярхоўна пакрыты (назіралася ўтварэнне нанатаўстойлівай плёнкі) і злучаны з гемастатычным плёнкаўтваральным складам (HFFC). HFFC дзейнічае як матрыгель, утрымліваючы разам выпадкова размешчаны Ct. Распрацаваная канструкцыя перадае напружанне ўнутры дысперснай фазы (армуючыя валокны). Цяжка атрымаць нанапорыстыя структуры з добрай механічнай трываласцю, выкарыстоўваючы мінімальныя канцэнтрацыі палімераў. Акрамя таго, няпроста наладзіць розныя формы для розных біямедыцынскіх ужыванняў.
На малюнку паказана схема канструкцыі NFRCS, заснаваная на структуры крыла стракозы (A). Гэта выява паказвае параўнальную аналогію структуры крыла стракозы (перасякальныя і падоўжныя жылкі крыла злучаныя ўзаемазлучанымі) і мікрафатаграфію папярочнага разрэзу Cp NFRCS (B). Схематычнае адлюстраванне NFRCS.
Для вырашэння вышэйзгаданых абмежаванняў былі распрацаваны NFRC з выкарыстаннем HFFC у якасці бесперапыннай фазы. HFFC складаецца з розных плёнкаўтваральных гемастатычных палімераў, у тым ліку хітазану (у якасці асноўнага гемастатычнага палімера) з метылцэлюлозай (MC), гідраксіпрапілметылцэлюлозай (HPMC 50 cp) і полівінілавым спіртам (PVA) (125 kDa) у якасці апорнага палімера, які спрыяе ўтварэнню тромбаў. Даданне полівінілпіролідыну K30 (PVP K30) палепшыла здольнасць NFRCS паглынаць вільгаць. Для паляпшэння зшывання палімераў у звязаных палімерных сумесях быў дададзены поліэтыленгліколь 400 (PEG 400). Тры розныя гемастатычныя кампазіцыі HFFC (Cm HFFC, Ch HFFC і Cp HFFC), а менавіта хітазан з MC (Cm), хітазан з HPMC (Ch) і хітазан з PVA (Cp), былі ўжытыя да Ct. Розныя даследаванні характарызацыі in vitro і in vivo пацвердзілі гемастатычную і ранаўтваральную актыўнасць NFRCS. Кампазітныя матэрыялы, якія прапануе NFRCS, можна выкарыстоўваць для налады розных формаў рыштаванняў у адпаведнасці з канкрэтнымі патрэбамі.
Акрамя таго, NFRCS можна мадыфікаваць у выглядзе бінта або рулона, каб пакрыць усю вобласць пашкоджання ніжніх канечнасцяў і іншых частак цела. Спецыяльна для баявых траўмаў канечнасцяў распрацаваную канструкцыю NFRCS можна змяніць на палову рукі або поўную нагу (Дадатковы малюнак S11). NFRCS можна ператварыць у бранзалет з тканінным клеем, які можна выкарыстоўваць для спынення крывацёку пры цяжкіх суіцыдальных траўмах запясця. Наша галоўная мэта — распрацаваць NFRCS з мінімальна магчымай колькасцю палімераў, які можна будзе даставіць вялікай колькасці насельніцтва (за рысай беднасці) і які можна будзе змясціць у аптэчку першай дапамогі. Простая, эфектыўная і эканамічная канструкцыя, NFRCS прыносіць карысць мясцовым супольнасцям і можа мець глабальны ўплыў.
Хітазан (малекулярная маса 80 кДа) і амарант былі набыты ў Merck, Індыя. Гідраксіпрапілметылцэлюлоза 50Cp, поліэтыленгліколь 400 і метылцэлюлоза былі набыты ў Loba Chemie Pvt. LLC, Мумбаі. Полівінілавы спірт (малекулярная маса 125 кДа) (гідралізаваны на 87-90%) быў набыты ў National Chemicals, Гуджарат. Полівінілпіролідын K30 быў набыты ў Molychem, Мумбаі, стэрыльныя тампоны былі набыты ў Ramaraju Surgery Cotton Mills Ltd., Тамілнад, з вадой Milli Q (сістэма ачысткі вады Direct-Q3, Merck, Індыя) у якасці носьбіта.
NFRCS быў распрацаваны з выкарыстаннем метаду ліяфілізацыі11,12. Усе склады HFFC (табліца 1) былі падрыхтаваны з выкарыстаннем механічнай мяшалкі. Прыгатуйце 0,5% раствор хітазану з выкарыстаннем 1% воцатнай кіслаты ў вадзе шляхам бесперапыннага памешвання пры 800 абаротаў у хвіліну на механічнай мяшалцы. Дакладная вага загружанага палімера, указаная ў табліцы 1, была дададзена да раствора хітазану і памешвана да атрымання празрыстага раствора палімера. PVP K30 і PEG 400 былі дададзены да атрыманай сумесі ў атрыманай сумесі ў колькасцях, указаных у табліцы 1, і памешванне працягвалася да атрымання празрыстага глейкага раствора палімера. Атрыманую ванну з растворам палімера апрацоўвалі ультрагукам на працягу 60 хвілін для выдалення захопленых бурбалак паветра з палімернай сумесі. Як паказана на дадатковым малюнку S1(b), Ct быў раўнамерна размеркаваны ў кожнай лунцы 6-лункавага пласціны (формы), дапоўненага 5 мл HFFC.
Шасцілункавы планшэт апрацоўвалі ультрагукам на працягу 60 хвілін для дасягнення раўнамернага змочвання і размеркавання HFFC у сетцы Ct. Затым шасцілункавы планшэт замарозілі пры тэмпературы -20°C на працягу 8-12 гадзін. Замарожаныя планшэты ліяфілізавалі на працягу 48 гадзін для атрымання розных прэпаратаў NFRCS. Такая ж працэдура выкарыстоўваецца для атрымання розных формаў і структур, такіх як тампоны або цыліндрычныя тампоны, або любой іншай формы для розных ужыванняў.
Дакладна ўзважаны хітазан (80 кДа) (3%) раствараюць у 1% воцатнай кіслаце з дапамогай магнітнай мяшалкі. Да атрыманага раствора хітазану дадаюць 1% ПЭГ-400 і змешваюць на працягу 30 хвілін. Атрыманы раствор пераліваюць у квадратны або прастакутны кантэйнер і замарожваюць пры тэмпературы -80°C на працягу 12 гадзін. Замарожаныя ўзоры ліяфілізуюць на працягу 48 гадзін для атрымання порыстага Cs13.
Распрацаваная NFRCS была падвергнута эксперыментам з выкарыстаннем інфрачырвонай спектраскапіі з пераўтварэннем Фур'е (FTIR) (Shimadzu 8400 s FTIR, Токіо, Японія) для пацверджання хімічнай сумяшчальнасці хітазану з іншымі палімерамі14,15. FTIR-спектры (шырыня спектральнага дыяпазону ад 400 да 4000 см-1) усіх правераных узораў былі атрыманы шляхам выканання 32 сканаванняў.
Хуткасць паглынання крывёй (ХПК) для ўсіх прэпаратаў ацэньвалася з выкарыстаннем метаду, апісанага Чэнем і інш. 16, з невялікімі мадыфікацыямі. Распрацаваныя НФРК усіх складаў сушылі ў вакуумнай печы пры тэмпературы 105°C на працягу ночы для выдалення рэшткаў растваральніка. 30 мг НФРКС (пачатковая вага ўзору – W0) і 30 мг Ct (станоўчы кантроль) змяшчалі ў асобныя кубкі, якія змяшчалі прэмікс 3,8% цытрату натрыю. Праз зададзеныя прамежкі часу, г.зн. 5, 10, 20, 30, 40 і 60 секунд, НФРКС выдалялі, а іх паверхні ачышчалі ад непаглынутай крыві шляхам размяшчэння ўзораў на Ct на 30 секунд. У кожны момант часу ўлічвалася канчатковая вага крыві, паглынутай НФРКС 16 (W1). Разлічыце працэнт ХПК, выкарыстоўваючы наступную формулу:
Час згусальнасці крыві (ЧЗК) вызначалі, як паведамлялі Ван і інш.17. Час, неабходны для згусання цэльнай крыві (крыві пацукоў, папярэдне змяшанай з 3,8% цытратам натрыю) у прысутнасці NFRCS, разлічвалі як ЧЗК тэставага ўзору. Розныя кампаненты NFRCS (30 мг) змяшчалі ў 10-мл флаконы з закручваемымі вечкамі і інкубавалі пры тэмпературы 37°C. У флакон дадавалі кроў (0,5 мл) і 0,3 мл 0,2 М CaCl2 для актывацыі згусальнасці крыві. Нарэшце, флакон пераварочвалі кожныя 15 секунд (да 180°), пакуль не ўтворыцца цвёрды згустак. ЧЗК узору ацэньвалі па колькасці перакульванняў17,18. На аснове ЧЗК для далейшых даследаванняў характарыстык былі адабраны два аптымальныя склады з NFRCS Cm, Ch і Cp.
BCT кампазіцый Ch NFRCS і Cp NFRCS вызначалі з дапамогай метаду, апісанага Лі і інш. 19. Змяшчалі 15 x 15 мм2 Ch NFRCS, Cp NFRCS і Cs (станоўчы кантроль) у асобныя чашкі Петры (37 °C). Кроў, якая змяшчае 3,8% цытрату натрыю, змешвалі з 0,2 М CaCl2 у аб'ёмным суадносінах 10:1, каб пачаць працэс згусання крыві. 20 мкл сумесі крыві пацука з 0,2 М CaCl2 наносілі на паверхню ўзору і змяшчалі ў пустую чашку Петры. Кантролем служыла кроў, разлітая ў пустыя чашкі Петры без Ct. Праз фіксаваныя інтэрвалы 0, 3 і 5 хвілін спынялі згусальнасць, дадаючы 10 мл дэіянізаванай (DI) вады да ўзору, які змяшчае чашку, не парушаючы згустак. Незгусаныя эрытрацыты (эрытрацыты) падвяргаюцца гемалізу ў прысутнасці дэіянізаванай вады і вызваляюць гемаглабін. Гемаглабін у розныя моманты часу (HA(t)) вымяралі пры 540 нм (λmax гемаглабін) з дапамогай УФ-бачнага спектрафатометра. У якасці эталоннага стандарту бралі абсалютнае паглынанне гемаглабіну (AH(0)) за 0 хвілін 20 мкл крыві ў 10 мл дэіянізаванай вады. Адноснае паглынанне гемаглабіну (RHA) згуслай крыві разлічвалі па суадносінах HA(t)/HA(0) з выкарыстаннем той жа партыі крыві.
З дапамогай аналізатара тэкстуры (Texture Pro CT V1.3 Build 15, Brookfield, ЗША) былі вызначаны адгезійныя ўласцівасці NFRK да пашкоджанай тканкі. Прыцісніце цыліндрычную форму з адкрытым дном да ўнутранага боку свіной скуры (без пласта тлушчу). Узоры (Ch NFRCS і Cp NFRCS) наносілі праз канюлю ў цыліндрычныя формы для стварэння адгезіі да скуры свінні. Пасля 3-хвіліннай інкубацыі пры пакаёвай тэмпературы (RT) (25°C) трываласць адгезіі NFRCS рэгістравалася з пастаяннай хуткасцю 0,5 мм/сек.
Асноўнай асаблівасцю хірургічных герметыкаў з'яўляецца павышэнне згусальнасці крыві пры адначасовым зніжэнні страты крыві. Каагуляцыя без страт у NFRCS ацэньвалася з выкарыстаннем раней апублікаванага метаду з невялікімі мадыфікацыямі 19. Зрабіце мікрацэнтрыфужную прабірку (2 мл) (унутраны дыяметр 10 мм) з адтулінай 8 × 5 мм2 з аднаго боку цэнтрыфужнай прабіркі (што прадстаўляе адкрытую рану). NFRCS выкарыстоўваецца для закрыцця адтуліны, а стужка выкарыстоўваецца для герметызацыі знешніх краёў. Дадайце 20 мкл 0,2 М CaCl2 у мікрацэнтрыфужную прабірку, якая змяшчае 3,8% прэмікс цытрату натрыю. Праз 10 хвілін мікрацэнтрыфужныя прабіркі вымалі з чашак, і вызначалі павелічэнне масы чашак з-за адтоку крыві з NFRK (n = 3). Страты крыві Ch NFRCS і Cp NFRCS параўноўвалі з Cs.
Вільготная цэласнасць NFRCS была вызначана на аснове метаду, апісанага Мішрай і Чаўдхары21, з невялікімі мадыфікацыямі. Змясціце NFRCS у колбу Эрленмейера аб'ёмам 100 мл з 50 мл вады і памешвайце на працягу 60 секунд, не ўтвараючы верх. Візуальны агляд і прыярытэтызацыя ўзораў на фізічную цэласнасць на аснове збору.
Моц звязвання HFFC з Ct вывучалася з выкарыстаннем раней апублікаваных метадаў з невялікімі мадыфікацыямі. Цэласнасць паверхневага пакрыцця ацэньвалася шляхам уздзеяння на NFRK акустычных хваль (знешні раздражняльнік) у прысутнасці вады milliQ (Ct). Распрацаваныя NFRCS Ch NFRCS і Cp NFRCS былі змешчаны ў шклянку, напоўненую вадой, і падвергнуты ультрагукавой апрацоўцы на працягу 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 і 30 хвілін адпаведна. Пасля сушкі розніца ў працэнтах паміж пачатковай і канчатковай вагой NFRCS была выкарыстана для разліку працэнтнай страты матэрыялу (HFFC). BCT in vitro дадаткова пацвердзіла трываласць звязвання або страту паверхневых матэрыялаў. Эфектыўнасць звязвання HFFC з Ct забяспечвае згусальнасць крыві і эластычнае пакрыццё на паверхні Ct22.
Аднастайнасць распрацаванай NFRCS вызначалася метадам BCT узораў (30 мг), узятых з выпадкова выбраных агульных месцаў NFRCS. Выканайце вышэйзгаданую працэдуру BCT, каб вызначыць адпаведнасць NFRCS. Блізкасць паміж усімі пяццю ўзорамі забяспечвае раўнамернае пакрыццё паверхні і адклад HFFC у сетцы Ct.
Намінальная плошча кантакту з крывёю (NBCA) вызначалася, як паведамлялася раней, з некаторымі мадыфікацыямі. Кроў каагулявалі, заціскаючы 20 мкл крыві паміж дзвюма паверхнямі Ct, Ch NFRCS, Cp NFRCS і Cs. Праз 1 гадзіну дзве часткі стэнта раздзялялі і ўручную вымяралі плошчу згустку. Сярэдняе значэнне трох паўтораў лічылася NBCA NFRCS19.
Для ацэнкі эфектыўнасці NFRCS паглынання вады з знешняга асяроддзя або з месца пашкоджання, якое адказвае за ініцыяцыю каагуляцыі, быў выкарыстаны аналіз дынамічнай сорбцыі пары (DVS). DVS ацэньвае або рэгіструе паглынанне і страту пары ва ўзоры гравіметрычна з выкарыстаннем ультраадчувальных вагаў з дазволам па масе ±0,1 мкг. Парцыяльны ціск пары (адносная вільготнасць) генеруецца электронным кантролерам масавага расходу вакол узору шляхам змешвання насычаных і сухіх газаў-носьбітаў. Згодна з рэкамендацыямі Еўрапейскай фармакапеі, узоры былі падзелены на 4 катэгорыі ў залежнасці ад працэнта паглынання вільгаці (0–0,012% w/w — негіграскапічныя, 0,2–2% w/w слабагіграскапічныя, 2–15% умерана гіграскапічныя і > 15% вельмі гіграскапічныя)23. Згодна з рэкамендацыямі Еўрапейскай фармакапеі, узоры былі падзелены на 4 катэгорыі ў залежнасці ад працэнта паглынання вільгаці (0–0,012% w/w — негіграскапічныя, 0,2–2% w/w слабагіграскапічныя, 2–15% умерана гіграскапічныя і > 15% вельмі гіграскапічныя)23.У адпаведнасці з рэкамендацыямі Еўрапейскай фармакапеі, у залежнасці ад працэнта паглынання вільгаці ўзорамі, узоры былі падзелены на 4 катэгорыі (0–0,012% w/w – негіграскапічныя, 0,2–2% w/w слабагіграскапічныя, 2–15%).% умерана гіграскапічны і > 15% вельмі гіграскапічны)23. % умерана гіграскапічных і > 15% вельмі гіграскапічных)23.根据欧洲药典指南，根据样品吸收水分的百分比，样品分为4 类（0-0,012% w/w-非吸湿性、0,2-2% мас./мас. 轻微吸湿性、2-15 % 适度吸湿，> 15% 非常吸湿）23.根据 欧洲 药典 指南 ， 根据 吸收 水分 的 百分比 样品 分为 分为 分为 类 （（0-0,012% Маса/маса- 吸湿 性 、 、 、 、 0,2-2% маса/маса 轻微 、 2-15% 适度 吸湿 ，> 15 %非常吸湿）23。У адпаведнасці з рэкамендацыямі Еўрапейскай фармакапеі ўзоры падзяляюцца на 4 класы ў залежнасці ад працэнта вільгаці, паглынутай узорам (0-0,012% па масе – негіграскапічныя, 0,2-2% па масе слабагіграскапічныя, 2-15% па масе).% умерана гіграскапічны, > 15 % вельмі гіграскапічны) 23. % умерана гіграскапічныя, > 15% вельмі гіграскапічныя) 23.Гіграскапічная эфектыўнасць NFCS X NFCS і TsN NFCS была вызначана на аналізатары DVS TA TGA Q5000 SA. Падчас гэтага працэсу былі атрыманы час працы, адносная вільготнасць (RH) і вага ўзору ў рэжыме рэальнага часу пры тэмпературы 25°C24. Змест вільгаці разлічваецца з дапамогай дакладнага масавага аналізу NFRCS з выкарыстаннем наступнага ўраўнення:
MC — вільготнасць па дадзеных NFRCS. m1 — сухая маса НПВС. m2 — маса па дадзеных NFRCS у рэжыме рэальнага часу пры зададзенай вільготнасці.
Агульная плошча паверхні была ацэненая з дапамогай эксперыменту па адсорбцыі азоту вадкім азотам пасля апаражнення ўзораў пры тэмпературы 25 °C на працягу 10 гадзін (< 7 × 10–3 Торр). Агульная плошча паверхні была ацэненая з дапамогай эксперыменту па адсорбцыі азоту вадкім азотам пасля апаражнення ўзораў пры тэмпературы 25 °C на працягу 10 гадзін (< 7 × 10–3 Торр). Агульная плошча паверхні ацэньвалася з дапамогай эксперыменту па адсорбцыі азоту вадкім азотам пасля апаражэння пробаў пры 25 °С на працягу 10 гадзін (< 7 × 10–3 Торр). Агульная плошча паверхні была ацэненая з дапамогай эксперыменту па адсорбцыі азоту вадкім азотам пасля таго, як узоры былі апаражнены пры тэмпературы 25°C на працягу 10 гадзін (< 7 × 10–3 Торр).Тэмпература да 25°C пры 10 градусах (< 7 × 10-3 Тор)Тэмпература да 25°C Агульная плошча паверхні ацэньвалася з выкарыстаннем эксперыментаў па адсорбцыі азоту жыдкім азотам пасля апаражэння пробаў на працягу 10 гадзін пры 25°C (< 7 × 10-3 торр). Агульная плошча паверхні была ацэненая з дапамогай эксперыментаў па адсорбцыі азоту вадкім азотам пасля таго, як узоры былі апаражнены на працягу 10 гадзін пры тэмпературы 25°C (< 7 x 10⁻³ торр).Агульная плошча паверхні, аб'ём пор і памер пор па дадзеных NFRCS былі вызначаны з дапамогай Quantachrome ад NOVA 1000e, Аўстрыя, з выкарыстаннем праграмнага забеспячэння RS 232.
Прыгатуйце 5% эрытрацытаў (з фізіялагічным растворам у якасці разбаўляльніка) з цэльнай крыві. Затым перанясіце аліквоту HFFC (0,25 мл) у 96-лункавы планшэт і 5% масы эрытрацытаў (0,1 мл). Інкубуйце сумесь пры тэмпературы 37°C на працягу 40 хвілін. Сумесь эрытрацытаў і сыроваткі лічылася станоўчым кантролем, а сумесь фізіялагічнага раствора і эрытрацытаў — адмоўным кантролем. Гемаглютынацыю вызначалі па шкале Стайцкага. Прапанаваныя шкалы наступныя: + + + + шчыльныя гранулярныя агрэгаты; + + + гладкія ніжнія падушачкі з закругленымі краямі; + + гладкія ніжнія падушачкі з абарванымі краямі; + вузкія чырвоныя кольцы вакол краёў гладкіх падушачак; – (адмоўны) дыскрэтная чырвоная кнопка 12 у цэнтры ніжняй лункі.
Гемасумяшчальнасць НКФКС вывучалася ў адпаведнасці з метадам Міжнароднай арганізацыі па стандартызацыі (ISO) (ISO10993-4, 1999)26,27. Гравіметрычны метад апісаны Сінгхам і інш. Былі ўнесены нязначныя мадыфікацыі для ацэнкі ўтварэння тромбаў у прысутнасці або на паверхні НКФКС. 500 мг НКФКС з Cs, Ch і Cp інкубавалі ў фасфатна-буферным фізіялагічным растворы (PBS) на працягу 24 гадзін пры тэмпературы 37°C. Праз 24 гадзіны PBS выдалялі, а НКФКС апрацоўвалі 2 мл крыві, якая змяшчае 3,8% цытрату натрыю. На паверхню НКФКС да інкубаваных узораў дадавалі 0,04 мл 0,1 М CaCl2. Праз 45 хвілін дадавалі 5 мл дыстыляванай вады для спынення каагуляцыі. Згарнутая кроў на паверхні НКФКС апрацоўвалі 36-38% растворам фармальдэгіду. Згусткі, зафіксаваныя фармальдэгідам, высушвалі і ўзважвалі. Працэнт трамбозу ацэньвалі, разлічваючы вагу шклянкі без крыві і ўзору (адмоўны кантроль) і шклянкі з крывёю (станоўчы кантроль).
У якасці папярэдняга пацверджання ўзоры былі візуалізаваны пад аптычным мікраскопам, каб зразумець здольнасць паверхневага пакрыцця HFFC, узаемазлучанага Ct і сеткі Ct утвараць поры. Тонкія зрэзы Ch і Cp з NFRCS былі абрэзаны лязом скальпеля. Атрыманы зрэз быў размешчаны на прадметным шкле, накрыты покрыўным шклом, а краю зафіксаваны клеем. Падрыхтаваныя прэпараты былі прагледжаны пад аптычным мікраскопам і зроблены фатаграфіі пры розных павелічэннях.
Адклад палімераў у Ct-сетках быў візуалізаваны з дапамогай флуарэсцэнтнай мікраскапіі на аснове метаду, апісанага Райсам і інш.29. Кампазіцыя HFFC, якая выкарыстоўвалася для падрыхтоўкі прэпарата, была змяшана з флуарэсцэнтным фарбавальнікам (амарантам), і NFRCS (Ch і Cp) былі падрыхтаваны паводле метаду, згаданага раней. Кампазіцыя HFFC, якая выкарыстоўвалася для падрыхтоўкі прэпарата, была змяшана з флуарэсцэнтным фарбавальнікам (амарантам), і NFRCS (Ch і Cp) былі падрыхтаваны паводле метаду, згаданага раней.Кампазіцыя HFFC, якая выкарыстоўвалася для падрыхтоўкі рэцэптуры, была змяшана з флуарэсцэнтным фарбавальнікам (амарантам), і NFRCS (Ch і Cp) была атрымана ў адпаведнасці з раней згаданым метадам.将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的方法制备NFRCS（Ch & Cp).将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的方法制备NFRCS（Ch & Cp).Выкарыстаны ў рэцэптуры склад HFFC змяшалі з флуарэсцэнтным фарбавальнікам (амарант) і атрымалі NFRCS (Ch і Cp), як згадвалася раней.З атрыманых узораў выразалі тонкія зрэзы NFRK, змяшчалі на шкляныя шклы і накрывалі покрыўнымі шкламі. Разгледзьце падрыхтаваныя шклы пад флуарэсцэнтным мікраскопам, выкарыстоўваючы зялёны фільтр (310-380 нм). Здымкі былі зроблены пры 4-кратным павелічэнні, каб зразумець суадносіны Ct і залішняе адкладанне палімераў у сетцы Ct.
Тапаграфія паверхні NFRCS Ch і Cp вызначалася з дапамогай атамна-сілавога мікраскопа (АСМ) з ультравострым кансоллю TESP у рэжыме націскання: 42 Н/м, 320 кГц, ROC 2-5 нм, Bruker, Тайвань. Шурпатасць паверхні вызначалася метадам сярэднеквадратычнага адхілення (СК) з выкарыстаннем праграмнага забеспячэння (Scanning Probe Image Processor). Розныя месцы NFRCS былі візуалізаваны на 3D-выявах для праверкі аднастайнасці паверхні. Стандартнае адхіленне бала для дадзенай вобласці вызначаецца як шурпатасць паверхні. Для колькаснай ацэнкі шурпатасці паверхні NFRCS31 выкарыстоўвалася ўраўненне СК.
Даследаванні на аснове FESEM былі праведзены з выкарыстаннем FESEM, SU8000, HI-0876-0003, Hitachi, Токіо, для разумення марфалогіі паверхні Ch NFRCS і Cp NFRCS, якія паказалі лепшыя BCT, чым Cm NFRCS. Даследаванне FESEM было праведзена ў адпаведнасці з метадам, апісаным Zhao et al.32, з невялікімі мадыфікацыямі. NFRCS: ад 20 да 30 мг Ch NFRCS і Cp NFRCS папярэдне змяшалі з 20 мкл 3,8% цытрату натрыю, папярэдне змяшанага з крывёю пацука. 20 мкл 0,2 М CaCl2 дадалі да апрацаваных узораў крыві для пачатку каагуляцыі, і ўзоры інкубавалі пры пакаёвай тэмпературы на працягу 10 хвілін. Акрамя таго, лішнія эрытрацыты выдалілі з паверхні NFRCS шляхам прамывання фізіялагічным растворам.
Наступныя ўзоры апрацоўвалі 0,1% глутаральдэгідам, а затым высушвалі ў духоўцы з гарачым паветрам пры тэмпературы 37°C для выдалення вільгаці. Высушаныя ўзоры пакрывалі і аналізавалі 32. Іншыя выявы, атрыманыя падчас аналізу, уключалі ў сябе ўтварэнне згустку на паверхні асобных баваўняных валокнаў, адклад палімера паміж Ct, марфалогію (форму) эрытрацытаў, цэласнасць згустку і марфалогію эрытрацытаў у прысутнасці NFRCS. Неапрацаваныя ўчасткі NFRCS і ўчасткі NFRCS, апрацаваныя Ch і Cp, інкубаваныя з крывёю, сканавалі на наяўнасць элементарных іонаў (натрыю, калію, азоту, кальцыя, магнію, цынку, медзі і селену) 33. Параўнайце працэнтныя ўтрыманні элементарных іонаў паміж апрацаванымі і неапрацаванымі ўзорамі, каб зразумець назапашванне элементарных іонаў падчас утварэння згустку і яго аднастайнасць.
Таўшчыня павярхоўнага пакрыцця Cp HFFC на паверхні Ct была вызначана з дапамогай FESEM. Папярочныя сячэнні Cp NFRCS былі выразаны з каркаса і пакрытыя напыленнем. Атрыманыя ўзоры пакрыцця, атрыманага напыленнем, былі даследаваны з дапамогай FESEM, і таўшчыня павярхоўнага пакрыцця была вымерана 34, 35, 36.
Рэнтгенаўская мікра-КТ забяспечвае трохмерную неразбуральную візуалізацыю з высокім разрозненнем і дазваляе вывучаць унутраную структурную арганізацыю NFRK. Мікра-КТ выкарыстоўвае рэнтгенаўскі прамень, які праходзіць праз узор, для рэгістрацыі лакальнага лінейнага каэфіцыента аслаблення рэнтгенаўскіх прамянёў ва ўзоры, што дапамагае атрымаць марфалагічную інфармацыю. Унутранае размяшчэнне Ct у Cp NFRCS і апрацаваных крывёю Cp NFRCS было даследавана з дапамогай мікра-КТ, каб зразумець эфектыўнасць паглынання і згусальнасць крыві ў прысутнасці NFRCS37,38,39. Трохмерныя структуры ўзораў апрацаваных і неапрацаваных крывёю Cp NFRCS былі рэканструяваны з дапамогай мікра-КТ (V|tome|x S240, Фенікс, Германія). З дапамогай праграмнага забеспячэння VG STUDIO-MAX версіі 2.2 было зроблена некалькі рэнтгенаўскіх здымкаў з розных ракурсаў (у ідэале з пакрыццём 360°) для стварэння трохмерных здымкаў для NFRCS. Сабраныя праекцыйныя дадзеныя былі рэканструяваны ў трохмерныя аб'ёмныя здымкі з выкарыстаннем адпаведнага простага праграмнага забеспячэння 3D ScanIP Academic.
Акрамя таго, каб зразумець размеркаванне згустку, у NFRCS было дададзена 20 мкл папярэдне змяшанай цытратаванай крыві і 20 мкл 0,2 М CaCl2 для ініцыяцыі згортвання крыві. Падрыхтаваныя ўзоры пакідаюць зацвярдзець. Паверхню NFRK апрацоўваюць 0,5% глутаральдэгідам і сушаць у духоўцы з гарачым паветрам пры тэмпературы 30–40°C на працягу 30 хвілін. Згустак крыві, які ўтварыўся на NFRCS, скануюць, рэканструююць і візуалізуюць яго трохмерны малюнак.
Антыбактэрыйныя аналізы былі праведзены на Cp NFRCS (лепш за ўсё параўнальны з Ch NFRCS) з выкарыстаннем раней апісанага метаду з невялікімі мадыфікацыямі. Антыбактэрыйная актыўнасць Cp NFRCS і Cp HFFC была вызначана з выкарыстаннем трох розных тэставых мікраарганізмаў [S. aureus (грамстаноўчыя бактэрыі), E. coli (грамадмоўныя бактэрыі) і белая Candida (C. albicans)], якія растуць на агары ў чашках Петры ў інкубатары. Раўнамерна інакулюйце 50 мл разведзенай суспензіі бактэрыяльнай культуры ў канцэнтрацыі 105-106 КУО мл-1 на агаравае асяроддзе. Выліце асяроддзе ў чашку Петры і дайце яму застыць. На паверхні агаравага пласцінкі былі зроблены лункі для запаўнення HFFC (3 лункі для HFFC і 1 для адмоўнага кантролю). Дадайце па 200 мкл HFFC у 3 лункі і 200 мкл PBS з pH 7,4 у 4-ю лунку. З іншага боку чашкі Петры змясціце 12-міліметровы дыск Cp NFRCS на зацвярдзелы агар і намачыце яго PBS (pH 7,4). Таблеткі цыпрафлаксацыну, ампіцыліну і флуканазолу лічацца эталоннымі стандартамі для залацістага стафілакока, кішачнай палачкі і Candida albicans. Вымерайце зону інгібіравання ўручную і зрабіце лічбавы здымак зоны інгібіравання.
Пасля этычнага адабрэння ўстановы даследаванне было праведзена ў Медыцынскім каледжы адукацыі і даследаванняў Кастурбы ў Маніпале, штат Карнатака, на поўдні Індыі. Эксперыментальны пратакол TEG in vitro быў разгледжаны і ўхвалены Камітэтам па этыцы ўстановы Медыцынскага каледжа Кастурбы, Маніпал, штат Карнатака (IEC: 674/2020). Удзельнікі даследавання былі набраны з ліку добраахвотных донараў крыві (ва ўзросце ад 18 да 55 гадоў) з банка крыві бальніцы. Акрамя таго, ад добраахвотнікаў была атрымана форма інфармаванай згоды на збор узораў крыві. Натыўны TEG (N-TEG) ​​выкарыстоўваўся для вывучэння ўплыву фармулёўкі Cp HFFC на цэльную кроў, папярэдне змяшаную з цытратам натрыю. N-TEG шырока вядомы за сваю ролю ў рэанімацыі ў месцы аказання медыцынскай дапамогі, што стварае праблемы для клініцыстаў з-за патэнцыйнай клінічна значнай затрымкі вынікаў (звычайныя тэсты згусальнасці крыві). Аналіз N-TEG праводзіўся з выкарыстаннем цэльнай крыві. Інфармаваная згода і падрабязная гісторыя хваробы былі атрыманы ад усіх удзельнікаў. У даследаванне не ўключаліся ўдзельнікі з гемастатычнымі або трамбатычнымі ўскладненнямі, такімі як цяжарнасць/послеродавы перыяд або захворванні печані. Суб'екты, якія прымалі лекі, што ўплываюць на каскад згусальнасці крыві, таксама былі выключаны з даследавання. Базавыя лабараторныя аналізы (гемаглабін, пратромбінавы час, актываваны трамбапластын і колькасць трамбацытаў) былі праведзены ўсім удзельнікам у адпаведнасці са стандартнымі працэдурамі. N-TEG вызначае глейкапругкасць крывянога згустку, пачатковую структуру згустку, узаемадзеянне часціц, умацаванне згустку і лізіс згустку. N-TEG-аналіз дае графічныя і лікавыя дадзеныя аб сукупным уздзеянні некалькіх клетачных элементаў і плазмы. N-TEG-аналіз быў праведзены на двух розных аб'ёмах Cp HFFC (10 мкл і 50 мкл). У выніку 1 мл цэльнай крыві з цытрынавай кіслатой быў дададзены да 10 мкл Cp HFFC. Дадайце 1 мл (Cp HFFC + цытратаваная кроў), 340 мкл змяшанай крыві да 20 мкл 0,2 М CaCl2, якая змяшчае TEG. Пасля гэтага, чашкі TEG былі загружаны ў TEG® 5000, US для вымярэння R, K, вугла альфа, MA, G, CI, TPI, EPL, LY 30% узораў крыві ў прысутнасці Cp HFFC41.
Пратакол даследавання in vivo быў разгледжаны і зацверджаны Інстытуцыйным камітэтам па этыцы жывёл (IAEC), Медыцынскай школы Кастурбы, Інстытута вышэйшай адукацыі Маніпала, Маніпал (IAEC/KMC/69/2020). Усе эксперыменты на жывёлах праводзіліся ў адпаведнасці з рэкамендацыямі Камітэта па кантролі і наглядзе за эксперыментамі на жывёлах (CPCSEA). Усе даследаванні NFRCS in vivo (2 × 2 см2) праводзіліся на самках пацукоў Вістар (вагой ад 200 да 250 г). Усе жывёлы былі акліматызаваны пры тэмпературы 24-26°C, жывёлы мелі свабодны доступ да стандартнай ежы і вады ad libitum. Усе жывёлы былі выпадковым чынам падзелены на розныя групы, кожная група складалася з трох жывёл. Усе даследаванні праводзіліся ў адпаведнасці з Animal Studies: Report of In Vivo Experiments 43. Перад даследаваннем жывёл анестэзавалі ўнутрыбрушынным (в/б) увядзеннем сумесі з 20-50 мг кетаміна (на 1 кг масы цела) і 2-10 мг ксілазіну (на 1 кг масы цела). Пасля даследавання аб'ём крывацёку разлічвалі, ацэньваючы розніцу паміж пачатковай і канчатковай вагой узораў, за аб'ём крывацёку ўзору прымалі сярэдняе значэнне, атрыманае з трох тэстаў.
Для разумення патэнцыялу NFRCS (нейранска-фрытанскіх катетарных сіндромаў) у мадуляцыі крывацёку пры траўмах, баявых дзеяннях або дарожна-транспартных здарэннях (мадэль траўмы) была выкарыстана мадэль ампутацыі хваста пацука. Адрэжце 50% хваста лязом скальпеля і змясціце яго на паветра на 15 секунд, каб забяспечыць нармальнае крывацёк. Акрамя таго, на хвост пацука змясцілі тэставыя ўзоры, прыклаўшы ціск (Ct, Cs, Ch NFRCS і Cp NFRCS). Для тэставых узораў паведамлялася пра крывацёк і PCT (n = 3)17,45.
Эфектыўнасць кантролю ціску з дапамогай NFRCS у баі даследавалася на мадэлі павярхоўнай сцегнавой артэрыі. Сцегнавая артэрыя агалялася, праколвалася троакарам 24G і крывацёк пускаўся на працягу 15 секунд. Пасля выяўлення некантралюемага крывацёку да месца праколу размяшчаўся выпрабавальны ўзор з прыціскам. Адразу пасля нанясення выпрабавальнага ўзору фіксаваўся час згусальнасці крыві, і гемастатычная эфектыўнасць назіралася на працягу наступных 5 хвілін. Такая ж працэдура паўтаралася з Cs і Ct46.
Даўлінг і інш.47 прапанавалі мадэль пашкоджання печані для ацэнкі гемастатычнага патэнцыялу гемастатычных матэрыялаў у кантэксце інтрааперацыйнага крывацёку. BCT рэгістравалі для ўзораў Ct (адмоўны кантроль), Cs каркаса (станоўчы кантроль), узораў Ch NFRCS і Cp NFRCS. Надпячоначная полая вена пацука была агалена шляхам правядзення сярэдняй лапаратаміі. Пасля гэтага дыстальная частка левай долі была выразана нажніцамі. Зрабіць надрэз на печані лязом скальпеля і даць ёй крывацечыць некалькі секунд. Дакладна ўзважаныя тэставыя ўзоры Ch NFRCS і Cp NFRCS былі размешчаны на пашкоджанай паверхні без якога-небудзь станоўчага ціску, і BCT рэгістравалі. Затым кантрольная група (Ct) прыклала ціск, а затым Cs 30 s47, не парушаючы пашкоджанне.
Для ацэнкі ўласцівасцей гаення ран распрацаваных палімерных NFRCS былі праведзены аналізы гаення ран in vivo з выкарыстаннем мадэлі эксцызійнай раны. Мадэлі эксцызійных ран былі адабраны і выкананы ў адпаведнасці з раней апублікаванымі метадамі з невялікімі мадыфікацыямі19,32,48. Усім жывёлам была зроблена анестэзія, як апісана раней. Выкарыстоўваючы біяпсійны прабойнік (12 мм), зрабілі круглы глыбокі разрэз на скуры спіны. Падрыхтаваныя ўчасткі ран былі пакрытыя Cs (станоўчы кантроль), Ct (улічваючы, што ватовыя дыскі перашкаджаюць гаенню), Ch NFRCS і Cp NFRCS (эксперыментальная група) і адмоўным кантролем без якога-небудзь лячэння. У кожны дзень даследавання плошча раны вымяралася ва ўсіх пацукоў. Выкарыстоўваючы лічбавую камеру, сфатаграфавалі вобласць раны і наклалі новую павязку. Працэнт закрыцця раны вымяраўся па наступнай формуле:
На падставе працэнта закрыцця раны на 12-ы дзень даследавання ў пацукоў найлепшай групы была выдалена скура ((Cp NFRCS) і кантрольная група) і вывучана з дапамогай афарбоўвання H&E і трыхромнага афарбоўвання па Масону. На падставе працэнта закрыцця раны на 12-ы дзень даследавання ў пацукоў найлепшай групы была выдалена скура ((Cp NFRCS) і кантрольная група) і вывучана з дапамогай афарбоўвання H&E і трыхромнага афарбоўвання па Масону.На падставе працэнта закрыцця раны на 12-ы дзень даследавання ў пацукоў найлепшай групы ((Cp NFRCS) і кантрольнай групы) была выразана скура і даследавана шляхам афарбоўвання гематаксілін-эазінам і трыхромам Масона.根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组)的大鼠皮肤，进行H&E染色和Masson三色染色研究。.根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组)的大鼠皮肤，进行H&E染色和眳组＄)Пацукі ў найлепшай групе ((Cp NFRCS) і кантрольнай групе) былі выдалены для афарбоўвання гематаксілін-эазінам і трыхромнага афарбоўвання па Масону на аснове працэнта закрыцця раны на 12-ы дзень даследавання.Працэдура афарбоўвання была праведзена ў адпаведнасці з раней апісанымі метадамі49,50. Карацей кажучы, пасля фіксацыі ў 10% фармаліне ўзоры былі абязводжаны з выкарыстаннем серыі градуяваных спіртоў. Для атрымання тонкіх зрэзаў (таўшчынёй 5 мкм) выдаленай тканкі выкарыстоўвалі мікратом. Тонкія серыйныя зрэзы кантрольных узораў і Cp NFRCS апрацоўвалі гематаксілінам і эазінам для вывучэння гістапаталагічных змен. Для выяўлення ўтварэння калагенавых фібрыл выкарыстоўвалі трыхромную афарбоўку па Масону. Атрыманыя вынікі былі сляпо вывучаны паталагаанатамамі.
Стабільнасць узораў Cp NFRCS вывучалася пры пакаёвай тэмпературы (25°C ± 2°C/60% адноснай вільготнасці ± 5%) на працягу 12 месяцаў51. Cp NFRCS (змяненне колеру паверхні і рост мікробаў) візуальна правяралася і правяралася на ўстойлівасць да згінання і BCT у адпаведнасці з вышэйзгаданымі метадамі, апісанымі ў раздзеле «Матэрыялы і метады».
Маштабаванасць і ўзнаўляльнасць Cp NFRCS былі правераны шляхам падрыхтоўкі Cp NFRCS памерам 15×15 см2. Акрамя таго, з розных фракцый Cp NFRCS былі выразаны ўзоры па 30 мг (n = 5), і BCT даследаваных узораў быў ацэнены, як апісана раней у раздзеле "Метады".
Мы спрабавалі распрацаваць розныя формы і структуры з выкарыстаннем кампазіцый Cp NFRCS для розных біямедыцынскіх ужыванняў. Такія формы або канфігурацыі ўключаюць канічныя тампоны для крывацёкаў з носа, стаматалагічных працэдур і цыліндрычныя тампоны для вагінальных крывацёкаў.
Усе наборы дадзеных прадстаўлены ў выглядзе сярэдняга значэння ± стандартнае адхіленне і былі прааналізаваны метадам ANOVA з выкарыстаннем Prism 5.03 (GraphPad, Сан-Дыега, Каліфорнія, ЗША) з наступным выкарыстаннем тэсту множных параўнанняў Банфероні (*p<0,05).
Усе працэдуры, выкананыя ў даследаваннях на людзях, адпавядалі стандартам Інстытута і Нацыянальнай даследчай рады, а таксама Хельсінкскай дэкларацыі 1964 года і наступным папраўкам да яе або падобным этычным стандартам. Усе ўдзельнікі былі праінфармаваныя аб асаблівасцях даследавання і яго добраахвотным характары. Дадзеныя ўдзельнікаў застаюцца канфідэнцыйнымі пасля іх збору. Пратакол эксперыменту TEG in vitro быў разгледжаны і зацверджаны Камітэтам па этыцы Інстытуцыі медыцынскага каледжа Кастурба, Маніпал, Карнатака (IEC: 674/2020). Валанцёры падпісалі інфармаваную згоду на збор узораў крыві.
Усе працэдуры, якія праводзіліся ў даследаваннях на жывёлах, былі выкананы ў адпаведнасці з рэкамендацыямі медыцынскага факультэта імя Кастубы, Інстытута вышэйшай адукацыі Маніпала, Маніпал (IAEC/KMC/69/2020). Усе эксперыменты на жывёлах былі праведзены ў адпаведнасці з рэкамендацыямі Камітэта па кантролі і наглядзе за эксперыментамі на жывёлах (CPCSEA). Усе аўтары прытрымліваюцца рэкамендацый ARRIVE.
ІЧ-спектры FTEC усіх NFRCS былі прааналізаваны і параўнаны са спектрам хітазану, паказаным на малюнку 2A. Характэрныя спектральныя пікі хітазану (запісаныя) пры 3437 см-1 (расцяжэнне OH і NH, перакрыццё), 2945 і 2897 см-1 (расцяжэнне CH), 1660 см-1 (дэфармацыя NH2), 1589 см-1 (выгіб N–H), 1157 см-1 (расцяжэнне мастка O-), 1067 см-1 (расцяжэнне C–O, другасны гідраксіл), 993 см-1 (расцяжэнне CO, Bo-OH) 52.53.54. У дадатковай табліцы S1 паказаны значэнні спектру паглынання ІЧ-спектраў FTEC NFRCS для хітазану (рэпарцёр), чыстага хітазану, Cm, Ch і Cp. ІЧ-спектры FTEC усіх NFRCS (Cm, Ch і Cp) паказалі тыя ж характэрныя паласы паглынання, што і для чыстага хітазану, без якіх-небудзь істотных змен (мал. 2A). Вынікі ІЧ-спектраскапіі з пераўтварэннем Фур'е пацвердзілі адсутнасць хімічных або фізічных узаемадзеянняў паміж палімерамі, якія выкарыстоўваліся для распрацоўкі NFRCS, што сведчыць аб інэртнасці выкарыстаных палімераў.
Характарыстыка in vitro Cm NFRCS, Ch NFRCS, Cp NFRCS і Cs. (A) прадстаўляе аб'яднаныя спектры ІЧ-спектраскапіі з пераўтварэннем Фур'е для кампазіцый хітазану і Cm NFRCS, Ch NFRCS і Cp NFRCS пад сціскам. (B) а) Хуткасць паглынання Cm, Ch, Cp і Cg NFRCS цэльнай крывёю (n = 3); Узоры Ct паказалі больш высокі BAR, таму што ватовы тампон мае больш высокую эфектыўнасць паглынання; б) Кроў пасля паглынання крыві. Ілюстрацыя паглынутага ўзору. Графічнае прадстаўленне BCT тэставага ўзору C (Cp NFRCS меў найлепшы BCT (15 с, n = 3)). Дадзеныя ў C, D, E і G паказаны як сярэдняе значэнне ± стандартнае адхіленне, а палоскі памылак прадстаўляюць стандартнае адхіленне, ***p < 0,0001. Дадзеныя ў C, D, E і G паказаны як сярэдняе значэнне ± стандартнае адхіленне, а палоскі памылак прадстаўляюць стандартнае адхіленне, ***p < 0,0001. Дадзеныя ў C, D, E і G прадстаўлены як сярэдняе ± стандартнае адхіленне, а планкі пагрэшнасцей уяўляюць стандартнае адхіленне, ***p <0,0001. Дадзеныя ў C, D, E і G прадстаўлены ў выглядзе сярэдняга значэння ± стандартнае адхіленне, а палоскі памылак адлюстроўваюць стандартнае адхіленне, ***p<0,0001. C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p < 0,0001. C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p < 0,0001. Дадзеныя ў C, D, E і G паказаны як сярэдняе значэнне ± стандартнае адхіленне, планкі пагрэшнасцяў прадстаўляюць стандартнае адхіленне, ***p <0,0001. Дадзеныя ў C, D, E і G паказаны як сярэдняе значэнне ± стандартнае адхіленне, палоскі памылак прадстаўляюць стандартнае адхіленне, ***p<0,0001.