Спасибо за посещение сайта Nature.com. Версия вашего браузера имеет ограниченную поддержку CSS. Для наилучшего взаимодействия с сайтом мы рекомендуем использовать обновлённую версию браузера (или отключить режим совместимости в Internet Explorer). В настоящее время, для обеспечения дальнейшей поддержки, мы будем отображать сайт без стилей и JavaScript.
Загрязненная среда в медицинских учреждениях играет важную роль в распространении мультирезистентных (МДР) микроорганизмов и Clostridium difficile. Целью данного исследования было оценить влияние озона, вырабатываемого плазменным реактором с диэлектрическим барьерным разрядом (ДБР), на действие ванкомицин-резистентного Enterococcus faecalis (VRE), карбапенем-резистентной Klebsiella pneumoniae (CRE), карбапенем-резистентных спор Clostridium difficile. Антибактериальное действие различных материалов, загрязненных Pseudomonas spp. Pseudomonas aeruginosa (CRPA), карбапенем-резистентным Acinetobacter baumannii (CRAB) и спорами Clostridium difficile. Различные материалы, загрязненные VRE, CRE, CRPA, CRAB и спорами C. difficile, обрабатывали озоном в различных концентрациях и в течение различного времени. Атомно-силовая микроскопия (АСМ) продемонстрировала модификацию поверхности бактерий после обработки озоном. При обработке VRE и CRAB дозой озона 500 ppm в течение 15 минут наблюдалось снижение примерно на 2 или более log10 в нержавеющей стали, ткани и древесине, а также снижение на 1-2 log10 в стекле и пластике. Было обнаружено, что споры C. difficile более устойчивы к озону, чем все другие протестированные организмы. На АСМ после обработки озоном бактериальные клетки набухали и деформировались. Озон, производимый плазменным реактором DBD, является простым и ценным средством дезинфекции для MDRO и спор C. difficile, которые, как известно, являются распространенными возбудителями внутрибольничных инфекций.
Появление мультирезистентных (МР) микроорганизмов вызвано неправильным использованием антибиотиков у людей и животных и признано Всемирной организацией здравоохранения (ВОЗ) серьезной угрозой для общественного здравоохранения1. В частности, медицинские учреждения все чаще сталкиваются с появлением и распространением МР. Основными МР являются метициллин-резистентный золотистый стафилококк и ванкомицин-резистентный энтерококк (VRE), энтеробактерии, продуцирующие бета-лактамазы расширенного спектра (ESBL), мультирезистентная Pseudomonas aeruginosa, мультирезистентный Acinetobacter baumannii и карбапенем-резистентный энтеробактерий (CRE). Кроме того, инфекция Clostridium difficile является одной из ведущих причин внутрибольничной диареи, создавая значительную нагрузку на систему здравоохранения. МР и C. difficile передаются через руки медицинских работников, загрязненную окружающую среду или непосредственно от человека к человеку. Недавние исследования показали, что загрязненная среда в медицинских учреждениях играет важную роль в передаче множественно-резистентных микроорганизмов (МРИ) и Clostridium difficile, когда медицинские работники контактируют с загрязненными поверхностями или когда пациенты непосредственно контактируют с загрязненными поверхностями 3,4. Загрязненная среда в медицинских учреждениях снижает частоту инфекций или колонизации МРИ и Clostridium difficile5,6,7. Учитывая глобальную обеспокоенность ростом устойчивости к противомикробным препаратам, очевидно, что необходимы дополнительные исследования методов и процедур дезинфекции в медицинских учреждениях. В последнее время бесконтактные методы терминальной очистки, особенно ультрафиолетовое (УФ) оборудование или системы на основе перекиси водорода, были признаны перспективными методами дезинфекции. Однако эти коммерчески доступные УФ-устройства или устройства на основе перекиси водорода не только дороги, но и УФ-дезинфекция эффективна только на открытых поверхностях, в то время как дезинфекция плазмой перекиси водорода требует относительно длительного времени дезинфекции перед следующим циклом дезинфекции5.
Озон обладает известными антикоррозионными свойствами и может производиться недорого⁸. Также известно, что он токсичен для здоровья человека, но может быстро разлагаться на кислород⁸. Плазменные реакторы с диэлектрическим барьерным разрядом (ДБР) являются наиболее распространенными генераторами озона⁹. Оборудование ДБР позволяет создавать низкотемпературную плазму в воздухе и производить озон. До настоящего времени практическое применение озона в основном ограничивалось дезинфекцией воды в бассейнах, питьевой воды и сточных вод¹⁰. В ряде исследований сообщалось о его использовании в медицинских учреждениях⁸,¹¹.
В данном исследовании мы использовали компактный генератор плазменного озона DBD для демонстрации его эффективности в уничтожении устойчивых к антибиотикам микроорганизмов (MDRO) и Clostridium difficile, даже тех, которые были инокулированы на различные материалы, обычно используемые в медицинской практике. Кроме того, процесс стерилизации озоном был изучен с помощью изображений клеток, обработанных озоном, полученных методом атомно-силовой микроскопии (АСМ).
Штаммы были получены из клинических изолятов: VRE (SCH 479 и SCH 637), карбапенем-резистентной Klebsiella pneumoniae (CRE; SCH CRE-14 и DKA-1), карбапенем-резистентной Pseudomonas aeruginosa (CRPA; 54 и 83) и карбапенем-резистентных бактерий Pseudomonas aeruginosa (CRPA; 54 и 83), а также карбапенем-резистентных Acinetobacter baumannii (CRAB; F2487 и SCH-511). Clostridium difficile была получена из Национальной коллекции культур патогенов (NCCP 11840) Корейского агентства по контролю и профилактике заболеваний. Она была выделена от пациента в Южной Корее в 2019 году и, согласно мультилокусному секвенированию, относится к ST15. Бульон Brain Heart Infusion (BHI) (BD, Sparks, MD, USA), инокулированный VRE, CRE, CRPA и CRAB, тщательно перемешивали и инкубировали при 37°C в течение 24 часов.
Clostridium difficile высевали анаэробным методом на кровяной агар в течение 48 часов. Затем несколько колоний добавляли к 5 мл бульона для культивирования бактерий (brain heart broth) и инкубировали в анаэробных условиях в течение 48 часов. После этого культуру встряхивали, добавляли 5 мл 95% этанола, снова встряхивали и оставляли при комнатной температуре на 30 минут. После центрифугирования при 3000 g в течение 20 минут надосадочную жидкость удаляли, а осадок, содержащий споры и убитые бактерии, суспендировали в 0,3 мл воды. Жизнеспособные клетки подсчитывали путем спирального посева суспензии бактериальных клеток на чашки Петри с кровяным агаром после соответствующего разведения. Окрашивание по Граму подтвердило, что от 85% до 90% бактериальных структур составляли споры.
Данное исследование было проведено с целью изучения воздействия озона в качестве дезинфицирующего средства на различные поверхности, загрязненные полирезистентными микроорганизмами и спорами Clostridium difficile, которые, как известно, вызывают внутрибольничные инфекции. Были подготовлены образцы из нержавеющей стали, ткани (хлопка), стекла, пластика (акрила) и дерева (сосны) размером один сантиметр на один сантиметр. Перед использованием образцы были продезинфицированы. Все образцы были стерилизованы автоклавированием перед заражением бактериями.
В данном исследовании бактериальные клетки были распределены по различным поверхностям субстрата, а также по агаровым пластинам. Затем панели стерилизовались путем воздействия озона в течение определенного периода времени и при определенной концентрации в герметичной камере. На рис. 1 представлена ​​фотография оборудования для озоновой стерилизации. Реакторы DBD-плазмы были изготовлены путем прикрепления перфорированных и открытых электродов из нержавеющей стали к передней и задней сторонам пластин из оксида алюминия (диэлектрика) толщиной 1 мм. Для перфорированных электродов площадь отверстия и диаметр отверстия составляли 3 мм и 0,33 мм соответственно. Каждый электрод имеет круглую форму диаметром 43 мм. Для подачи синусоидального напряжения приблизительно 8 кВ от пика до пика на перфорированные электроды использовался высоковольтный высокочастотный источник питания (GBS Elektronik GmbH Minipuls 2.2) с частотой 12,5 кГц для генерации плазмы на краях электродов. Поскольку технология представляет собой метод газовой стерилизации, стерилизация проводится в камере, разделенной по объему на верхний и нижний отсеки, содержащие, соответственно, образцы, загрязненные бактериями, и генераторы плазмы. В верхнем отсеке имеются два клапана для удаления и выпуска остаточного озона. Перед использованием в эксперименте измерялось изменение концентрации озона в помещении во времени после включения плазменной установки по спектру поглощения спектральной линии 253,65 нм ртутной лампы.
(a) Схема экспериментальной установки для стерилизации бактерий на различных материалах с использованием озона, генерируемого в плазменном реакторе DBD, и (b) концентрация озона и время генерации плазмы в стерилизационной камере. Рисунок создан с помощью OriginPro версии 9.0 (программное обеспечение OriginPro, Нортгемптон, Массачусетс, США; https://www.originlab.com).
Сначала, путем стерилизации бактериальных клеток, помещенных на агаровые пластины, озоном, при изменении концентрации озона и времени обработки были определены оптимальные концентрация озона и время обработки для дезинфекции MDRO и C. difficile. В процессе стерилизации камера сначала продувалась окружающим воздухом, а затем заполнялась озоном путем включения плазменного блока. После обработки образцов озоном в течение заданного периода времени оставшийся озон удалялся с помощью диафрагменного насоса. Для измерений использовался образец полной 24-часовой культуры (~ 10⁸ КОЕ/мл). Образцы суспензий бактериальных клеток (20 мкл) сначала последовательно разбавляли в десять раз стерильным физиологическим раствором, а затем эти образцы распределяли по агаровым пластинам, стерилизованным озоном, в камере. После этого повторные образцы, состоящие из образцов, подвергнутых и не подвергнутых воздействию озона, инкубировали при 37°C в течение 24 часов и подсчитывали колонии для оценки эффективности стерилизации.
Кроме того, в соответствии с условиями стерилизации, определенными в вышеупомянутом исследовании, дезактивирующий эффект данной технологии на MDRO и C. difficile оценивали с использованием образцов из различных материалов (нержавеющая сталь, ткань, стекло, пластик и дерево), обычно используемых в медицинских учреждениях. Использовали полные 24-часовые культуры (~10⁸ КОЕ/мл). Образцы суспензии бактериальных клеток (20 мкл) последовательно разбавляли в десять раз стерильным физиологическим раствором, а затем образцы погружали в эти разбавленные бульоны для оценки контаминации. Образцы, извлеченные после погружения в разбавленный бульон, помещали в стерильные чашки Петри и высушивали при комнатной температуре в течение 24 часов. Закрывали образец крышкой чашки Петри и осторожно помещали ее в тестовую камеру. Снимали крышку с чашки Петри и подвергали образец воздействию 500 ppm озона в течение 15 минут. Контрольные образцы помещали в бокс биологической безопасности и не подвергали воздействию озона. Сразу после облучения озоном образцы и необлученные образцы (т.е. контрольные) смешивали со стерильным физиологическим раствором с помощью вихревого миксера для выделения бактерий с поверхности. Полученную суспензию последовательно разбавляли в 10 раз стерильным физиологическим раствором, после чего определяли количество разбавленных бактерий на чашках с кровяным агаром (для аэробных бактерий) или анаэробным кровяным агаром для Brucella (для Clostridium difficile) и инкубировали при 37°C в течение 24 часов или в анаэробных условиях в течение 48 часов при 37°C в двух повторах для определения начальной концентрации инокулята. Разницу в количестве бактерий между необлученными контрольными образцами и облученными образцами рассчитывали для получения логарифмического снижения количества бактерий (т.е. эффективности стерилизации) в условиях эксперимента.
Биологические клетки необходимо иммобилизовать на пластине для получения изображений методом атомно-силовой микроскопии (АСМ); поэтому в качестве подложки используется плоский и равномерно шероховатый диск из слюды с шероховатостью меньше размера клетки. Диаметр и толщина дисков составляли 20 мм и 0,21 мм соответственно. Для прочного закрепления клеток на поверхности слюду наносили поли-L-лизин (200 мкл), что придавало ей положительный заряд, а клеточной мембране — отрицательный. После нанесения поли-L-лизина диски из слюды промывали 3 раза 1 мл деионизированной воды и сушили на воздухе в течение ночи. Затем на поверхность слюды, покрытую поли-L-лизином, наносили бактериальные клетки путем добавления разбавленного бактериального раствора, оставляли на 30 минут, после чего поверхность слюды промывали 1 мл деионизированной воды.
Половина образцов была обработана озоном, а морфология поверхности слюдяных пластин, нагруженных спорами VRE, CRAB и C. difficile, была визуализирована с помощью АСМ (XE-7, Park Systems). Режим работы АСМ был установлен в режим сканирования с касанием, что является распространенным методом визуализации биологических клеток. В экспериментах использовался микрокантилевер, разработанный для бесконтактного режима (OMCL-AC160TS, OLYMPUS Microscopy). Изображения АСМ записывались при частоте сканирования зонда 0,5 Гц, что обеспечивало разрешение изображения 2048 × 2048 пикселей.
Для определения условий, при которых плазменные реакторы с диэлектрическим барьерным разрядом (ДБР) эффективны для стерилизации, мы провели серию экспериментов с использованием как устойчивых к антибиотикам микроорганизмов (VRE, CRE, CRPA и CRAB), так и Clostridium difficile, варьируя концентрацию озона и время воздействия. На рис. 1b показана кривая зависимости концентрации озона от времени для каждого условия эксперимента после включения плазменного устройства. Концентрация увеличивалась логарифмически, достигая 300 и 500 ppm через 1,5 и 2,5 минуты соответственно. Предварительные испытания с VRE показали, что минимальное количество озона, необходимое для эффективной дезинфекции бактерий, составляет 300 ppm в течение 10 минут. Таким образом, в последующих экспериментах устойчивые к антибиотикам микроорганизмы и Clostridium difficile подвергались воздействию озона в двух различных концентрациях (300 и 500 ppm) и в два разных времени воздействия (10 и 15 минут). Эффективность стерилизации для каждой дозы озона и времени воздействия была рассчитана и представлена ​​в таблице 1. Воздействие озона в концентрации 300 или 500 ppm в течение 10–15 минут приводило к общему снижению количества VRE на 2 или более log10. Такой высокий уровень уничтожения бактерий CRE был достигнут при 15-минутном воздействии озона в концентрации 300 или 500 ppm. Значительное снижение уровня CRPA (> 7 log10) было достигнуто при воздействии 500 ppm озона в течение 15 минут. Значительное снижение уровня CRPA (> 7 log10) было достигнуто при воздействии 500 ppm озона в течение 15 минут. Высокое снижение CRPA (>7 log10) было достигнуто при воздействии 500 частей на миллион озона в течение 15 минут. Значительное снижение уровня CRPA (> 7 log10) было достигнуто при воздействии 500 ppm озона в течение 15 минут.500 ppm, 15 分钟后, CRPA (> 7 log10).。500 ppm, 15 分钟后, CRPA (> 7 log10).。 Существенное снижение CRPA (>7 log10) после 15-минутного воздействия озона с концентрацией 500 ppm. Значительное снижение уровня CRPA (> 7 log10) после 15 минут воздействия озона концентрацией 500 ppm.Незначительное уничтожение бактерий CRAB при концентрации озона 300 ppm; Однако при концентрации озона 500 ppm наблюдалось снижение более чем на 1,5 log10. Однако при концентрации озона 500 ppm наблюдалось снижение более чем на 1,5 log10. Однако при концентрации озона 500 частей на миллион наблюдалось снижение > 1,5 log10. Однако при концентрации озона 500 ppm наблюдалось снижение более чем на 1,5 log10.然而, 在500 ppm 臭氧下, 减少了> 1,5 log10。然而, 在500 ppm 臭氧下, 减少了> 1,5 log10。 Однако при концентрации озона 500 частей на миллион наблюдалось снижение >1,5 log10. Однако при концентрации озона 500 ppm наблюдалось снижение более чем на 1,5 log10. Воздействие озона в концентрации 300 или 500 ppm на споры Clostridium difficile привело к снижению их количества более чем на 2,5 log10. Воздействие озона в концентрации 300 или 500 ppm на споры Clostridium difficile привело к снижению их количества более чем на 2,5 log10. Воздействие на споры C. difficile озона с концентрацией 300 или 500 частей на миллион приводило к снижению > 2,5 log10. Воздействие озона в концентрации 300 или 500 ppm на споры Clostridium difficile привело к снижению их количества более чем на 2,5 log10.От 300 до 500 ppm > 2,5 log10. 300–500 ч/млн > 2,5 log10 减少. Воздействие на споры C. difficile озона с концентрацией 300 или 500 частей на миллион приводило к снижению >2,5 log10. Воздействие озона в концентрации 300 или 500 ppm на споры Clostridium difficile привело к снижению их количества более чем на 2,5 log10.
На основании проведенных выше экспериментов было установлено, что для инактивации бактерий достаточно дозы озона 500 ppm в течение 15 минут. Бактерицидное действие озона на различные материалы, включая нержавеющую сталь, ткань, стекло, пластик и дерево, широко используемые в больницах, было протестировано на VRE, CRAB и споры C. difficile. Эффективность стерилизации показана в таблице 2. Тестируемые микроорганизмы оценивались дважды. В случае VRE и CRAB озон был менее эффективен на стеклянных и пластиковых поверхностях, хотя на поверхностях из нержавеющей стали, ткани и дерева наблюдалось снижение количества бактерий примерно в 2 раза и более (log10). Споры C. difficile оказались более устойчивыми к обработке озоном, чем все остальные протестированные микроорганизмы. Для статистического изучения влияния озона на бактерицидное действие различных материалов против VRE, CRAB и C. difficile были использованы t-тесты для сравнения различий между количеством КОЕ на миллилитр в контрольной и экспериментальной группах при использовании разных материалов (рис. 2). Были выявлены статистически значимые различия между штаммами, однако более значительные различия наблюдались для спор VRE и CRAB, чем для спор C. difficile.
Диаграмма рассеяния, показывающая влияние озона на уничтожение бактерий различных типов: (a) VRE, (b) CRAB и (c) C. difficile.
Для детального изучения процесса стерилизации озоном были проведены исследования с помощью атомно-силовой микроскопии (АСМ) спор VRE, CRAB и C. difficile, обработанных и необработанных озоном. На рис. 3a, c и e показаны изображения АСМ необработанных спор VRE, CRAB и C. difficile соответственно. Как видно на 3D-изображениях, клетки гладкие и неповрежденные. На рисунках 3b, d и f показаны споры VRE, CRAB и C. difficile после обработки озоном. У всех исследованных клеток не только уменьшился общий размер, но и их поверхность стала заметно более шероховатой после воздействия озона.
Изображения, полученные с помощью атомно-силовой микроскопии (АСМ), необработанных спор VRE, MRAB и C. difficile (a, c, e) и (b, d, f), обработанных озоном концентрацией 500 ppm в течение 15 мин. Изображения были созданы с использованием программного обеспечения Park Systems XEI версии 5.1.6 (XEI Software, Сувон, Корея; https://www.parksystems.com/102-products/park-xe-bio).
Наши исследования показывают, что озон, производимый оборудованием для плазменной обработки с диэлектрическим барьером (ДБД), демонстрирует способность эффективно дезактивировать полирезистентные микроорганизмы (MDRO) и споры Clostridium difficile, которые, как известно, являются основными причинами внутрибольничных инфекций. Кроме того, в нашем исследовании, учитывая, что загрязнение окружающей среды спорами MDRO и C. difficile может быть источником внутрибольничных инфекций, бактерицидный эффект озона оказался успешным для материалов, используемых преимущественно в больничных условиях. Тесты на дезактивацию проводились с использованием оборудования для плазменной обработки с ДБД после искусственного загрязнения таких материалов, как нержавеющая сталь, ткань, стекло, пластик и дерево, спорами MDRO и C. difficile. В результате, хотя эффект дезактивации варьируется в зависимости от материала, дезактивирующая способность озона является замечательной.
Предметы, к которым часто прикасаются в больничных палатах, требуют регулярной дезинфекции низкого уровня. Стандартным методом дезинфекции таких предметов является ручная очистка жидким дезинфицирующим средством, таким как четвертичные аммониевые соединения¹³. Даже при строгом соблюдении рекомендаций по использованию дезинфицирующих средств МПО трудно удалить традиционными методами очистки окружающей среды (обычно ручной очисткой)¹⁴. Поэтому необходимы новые технологии, такие как бесконтактные методы. В связи с этим возник интерес к газообразным дезинфицирующим средствам, включая перекись водорода и озон¹⁰. Преимущество газообразных дезинфицирующих средств заключается в том, что они могут достигать мест и предметов, недоступных для традиционных ручных методов. Перекись водорода недавно начала использоваться в медицинских учреждениях, однако сама по себе она токсична и должна обрабатываться в соответствии со строгими правилами обращения. Плазменная стерилизация перекисью водорода требует относительно длительного времени продувки перед следующим циклом стерилизации. В отличие от этого, озон действует как антибактериальное средство широкого спектра действия, эффективное против бактерий и вирусов, устойчивых к другим дезинфицирующим средствам⁸,¹¹,¹⁵. Кроме того, озон можно дешево получать из атмосферного воздуха, и для этого не требуются дополнительные токсичные химические вещества, которые могут оставлять вредный след в окружающей среде, поскольку он в конечном итоге распадается на кислород. Однако причина, по которой озон не получил широкого распространения в качестве дезинфицирующего средства, заключается в следующем. Озон токсичен для здоровья человека, поэтому его концентрация в среднем не превышает 0,07 ppm в течение более 8 часов16, поэтому были разработаны и выпущены на рынок озоновые стерилизаторы, в основном для очистки отходящих газов. Также возможно вдыхание газа и появление неприятного запаха после дезинфекции5,8. Озон не был активно использован в медицинских учреждениях. Однако озон можно безопасно использовать в стерилизационных камерах и при надлежащей вентиляции, а его удаление может быть значительно ускорено с помощью каталитического нейтрализатора. В данном исследовании мы демонстрируем, что плазменные озоновые стерилизаторы могут использоваться для дезинфекции в медицинских учреждениях. Мы разработали устройство с высокими стерилизующими возможностями, простым управлением и быстрым обслуживанием для госпитализированных пациентов. Кроме того, мы разработали простой стерилизационный блок, использующий окружающий воздух без дополнительных затрат. На сегодняшний день недостаточно информации о минимальных требованиях к содержанию озона для инактивации МДР. Оборудование, использованное в нашем исследовании, легко устанавливается, имеет короткое время работы и, как ожидается, будет полезно для частой стерилизации оборудования.
Механизм бактерицидного действия озона до конца не ясен. Несколько исследований показали, что озон повреждает клеточные мембраны бактерий, приводя к внутриклеточной утечке и последующему лизису клеток17,18. Озон может влиять на ферментативную активность клеток, реагируя с тиольными группами, и модифицировать пуриновые и пиримидиновые основания в нуклеиновых кислотах. В данном исследовании была визуализирована морфология спор VRE, CRAB и C. difficile до и после обработки озоном, и было обнаружено, что они не только уменьшились в размере, но и стали значительно более шероховатыми на поверхности, что указывает на повреждение или коррозию самой внешней мембраны и внутренних материалов из-за сильной окислительной способности озона. Это повреждение может привести к инактивации клеток в зависимости от степени тяжести клеточных изменений.
Споры Clostridium difficile трудно удалить из больничных палат. Споры остаются в местах, где они выделяются 10,20. Кроме того, в этом исследовании, хотя максимальное логарифмическое десятикратное снижение количества бактерий на агаровых пластинах при концентрации озона 500 ppm в течение 15 минут составило 2,73, бактерицидный эффект озона на различных материалах, содержащих споры Clostridium difficile, был снижен. Поэтому можно рассмотреть различные стратегии для снижения инфицирования Clostridium difficile в медицинских учреждениях. При использовании только в изолированных камерах для Clostridium difficile может быть полезно также скорректировать время воздействия и интенсивность обработки озоном. Кроме того, следует помнить, что метод дезинфекции озоном не может полностью заменить традиционную ручную очистку с использованием дезинфицирующих и антимикробных средств, и может быть очень эффективным в борьбе с Clostridium difficile 5. В этом исследовании эффективность озона в качестве дезинфицирующего средства варьировалась для разных типов MPO. Эффективность может зависеть от нескольких факторов, таких как стадия роста, клеточная стенка и эффективность механизмов восстановления21,22. Причиной различного стерилизующего эффекта озона на поверхности каждого материала может быть образование биопленки. Предыдущие исследования показали, что E. faecium и E. faecium повышают устойчивость к воздействию окружающей среды, когда присутствуют в виде биопленок23, 24, 25. Однако данное исследование показывает, что озон оказывает значительное бактерицидное действие на MDRO и споры C. difficile.
Ограничением нашего исследования является то, что мы оценивали эффект удержания озона после очистки. Это может привести к завышенной оценке количества жизнеспособных бактериальных клеток.
Хотя данное исследование проводилось для оценки эффективности озона в качестве дезинфицирующего средства в больничных условиях, сложно обобщить полученные результаты на все больничные учреждения. Таким образом, необходимы дополнительные исследования для изучения применимости и совместимости данного стерилизатора на основе озона с диэлектрическим барьером (DBD) в реальных условиях больницы.
Озон, образующийся в плазменных реакторах с диэлектрическим барьером (DBD), может быть простым и эффективным средством дезинфекции от мультирезистентных микроорганизмов (MDRO) и Clostridium difficile. Таким образом, обработка озоном может рассматриваться как эффективная альтернатива дезинфекции больничной среды.
Использованные и/или проанализированные в данном исследовании наборы данных доступны у соответствующих авторов по обоснованному запросу.
Глобальная стратегия ВОЗ по сдерживанию устойчивости к противомикробным препаратам. https://www.who.int/drugresistance/WHO_Global_Strategy.htm/en/ Доступно.
Дубберке, Э.Р. и Олсен, М.А. Бремя Clostridium difficile для системы здравоохранения. Дубберке, Э.Р. и Олсен, М.А. Бремя Clostridium difficile для системы здравоохранения.Дубберке, Э.Р. и Олсен, М.А. Бремя Clostridium difficile в системе здравоохранения. Дубберке, Э.Р. и Олсен, Массачусетс. Дубберке, Э.Р. и Олсен, М.А.Дубберке, Э.Р. и Олсен, М.А. Бремя, которое Clostridium difficile наносит системе здравоохранения.clinical. Infect. Dis. https://doi.org/10.1093/cid/cis335 (2012).
Бойс, Дж. М. Загрязнение окружающей среды оказывает значительное влияние на внутрибольничные инфекции. Журнал госпитальной инфекции. 65 (Приложение 2), 50-54. https://doi.org/10.1016/s0195-6701(07)60015-2 (2007).
Ким, Я.А., Ли, Х. и К.Л. Ким, Я.А., Ли, Х. и К.Л.Ким, Я.А., Ли, Х. и КЛ. Ким, Я.А., Ли, Х. и К.Л. Ким, Я.А., Ли, Х. и К.Л.Ким, Я.А., Ли, Х. и КЛ.Загрязнение и контроль инфекций в больничной среде, вызываемых патогенными бактериями [J. Korea J. Hospital Infection Control. 20(1), 1-6 (2015).
Дэнсер, С.Дж. Борьба с внутрибольничными инфекциями: внимание к роли окружающей среды и новым технологиям дезинфекции. Clinical. Microorganism. Open 27(4), 665–690. https://doi.org/10.1128/cmr.00020-14 (2014).
Вебер, Д.Дж. и др. Эффективность УФ-устройств и систем на основе перекиси водорода для дезинфекции терминальных зон: акцент на клинических испытаниях. Да. Журнал инфекционного контроля. 44 (5 дополнений), e77-84. https://doi.org/10.1016/j.ajic.2015.11.015 (2016).
Сиани, Х. и Майяр, Ж. И. Передовые методы дезинфекции помещений в медицинских учреждениях. Сиани, Х. и Майяр, Ж. И. Передовые методы дезинфекции помещений в медицинских учреждениях. Сиани, Х. и Майлард, Дж. Я. Передовая практика дезактивации окружающей среды. Сиани, Х. и Майяр, Ж.И. Передовая практика дезинфекции медицинских учреждений. Сиани, Х. и Майлард, Дж. Ю. Сиани, Х. и Майяр, Ж.И. Передовые методы очистки медицинской среды. Сиани, Х. и Майлард, Дж. Я. Передовой опыт обеззараживания в медицинских учреждениях. Сиани, Х. и Майяр, Ж. И. Передовые методы дезинфекции медицинских учреждений.EURO. J. Clin. microorganism To infect Dis. 34(1), 1-11. https://doi.org/10.1007/s10096-014-2205-9 (2015).
Шарма, М. и Хадсон, Дж. Б. Озон является эффективным и практичным антибактериальным средством. Шарма, М. и Хадсон, Дж. Б. Озон является эффективным и практичным антибактериальным средством.Шарма, М. и Хадсон, Дж. Б. Газообразный озон является эффективным и практичным антибактериальным средством. Шарма, М. и Хадсон, Дж.Б. Шарма, М. и Хадсон, Дж. Б.Шарма, М. и Хадсон, Дж. Б. Газообразный озон является эффективным и практичным противомикробным средством.Да. Журнал инфекционного контроля. 36(8), 559-563. https://doi.org/10.1016/j.ajic.2007.10.021 (2008).
Сын-Лок Пак, Дж.-ДМ, Ли, С.-Х. & Шин, С.-Й. & Шин, С.-Й.и Шин, С.-Ю. & Шин, С.-Й. & Шин, С.-Й.и Шин, С.-Ю.Озон эффективно генерируется с использованием пластинчатых электродов в генераторе озона разрядного типа с диэлектрическим барьером. J. Electrostatics. 64(5), 275-282. https://doi.org/10.1016/j.elstat.2005.06.007 (2006).
Моат, Дж., Каргилл, Дж., Шон, Дж. и Аптон, М. Применение нового процесса дезактивации с использованием газообразного озона. Моат, Дж., Каргилл, Дж., Шон, Дж. и Аптон, М. Применение нового процесса дезактивации с использованием газообразного озона.Моат Дж., Каргилл Дж., Шон Дж. и Аптон М. Применение нового процесса дезактивации с использованием озонового газа. Моут Дж., Каргилл Дж., Шон Дж. и Аптон М. Моат, Дж., Каргилл, Дж., Шон, Дж. и Аптон, М.Моат Дж., Каргилл Дж., Шон Дж. и Аптон М. Применение нового процесса очистки с использованием озона.Can. J. Microorganisms. 55(8), 928–933. https://doi.org/10.1139/w09-046 (2009).
Зутман, Д., Шеннон, М. и Мандель, А. Эффективность новой системы на основе озона для быстрой высокоэффективной дезинфекции помещений и поверхностей в медицинских учреждениях. Зутман, Д., Шеннон, М. и Мандель, А. Эффективность новой системы на основе озона для быстрой высокоэффективной дезинфекции помещений и поверхностей в медицинских учреждениях.Зутман, Д., Шеннон, М. и Мандель, А. Эффективность новой системы на основе озона для быстрой дезинфекции медицинских помещений и поверхностей высокого уровня. Зутман Д., Шеннон М. и Мандель А. Зутман, Д., Шеннон, М. и Мандель, А.Зутман, Д., Шеннон, М. и Мандель, А. Эффективность новой озоновой системы для быстрой дезинфекции медицинских помещений и поверхностей высокого уровня.Да. Журнал контроля инфекций. 39(10), 873-879. https://doi.org/10.1016/j.ajic.2011.01.012 (2011).
Вуллт, М., Оденхольт, И. и Уолдер, М. Активность трех дезинфицирующих средств и подкисленного нитрита против спор Clostridium difficile. Вуллт, М., Оденхольт, И. и Уолдер, М. Активность трех дезинфицирующих средств и подкисленного нитрита против спор Clostridium difficile.Вуллт, М., Оденхольт, И. и Уолдер, М. Активность трех дезинфицирующих средств и подкисленного нитрита против спор Clostridium difficile.Вуллт М., Оденхольт И. и Вальдер М. Активность трех дезинфицирующих средств и подкисленных нитритов против спор Clostridium difficile. Инфекционный контроль больницы. Эпидемиология. 24(10), 765-768. https://doi.org/10.1086/502129 (2003).
Рэй, А. и др. Деконтаминация парами перекиси водорода во время вспышки мультирезистентного Acinetobacter baumannii в больнице длительного ухода. Инфекционный контроль в больнице. Эпидемиология. 31(12), 1236-1241. https://doi.org/10.1086/657139 (2010).
Экштейн, Б.К. и др. Снижение загрязнения поверхностей окружающей среды Clostridium difficile и ванкомицин-резистентными энтерококками после принятия мер по улучшению методов очистки. Инфекционные заболевания ВМФ. 7, 61. https://doi.org/10.1186/1471-2334-7-61 (2007).
Мартинелли, М., Джованнанджели, Ф., Ротунно, С., Тромбетта, К.М. и Монтомоли, Э. Обработка воды и воздуха озоном как альтернативная технология дезинфекции. Мартинелли, М., Джованнанджели, Ф., Ротунно, С., Тромбетта, К.М. и Монтомоли, Э. Обработка воды и воздуха озоном как альтернативная технология дезинфекции.Мартинелли, М., Джованнанджели, Ф., Ротунно, С., Тромбетта, К.М. и Монтомоли, Э. Озонирование воды и воздуха как альтернативная технология санитарной обработки. Мартинелли М., Джованнанджели Ф., Ротунно С., Тромбетта С.М. и Монтомоли Э. Мартинелли М., Джованнанджели Ф., Ротунно С., Тромбетта С.М. и Монтомоли Э.Мартинелли М., Джованнанджели Ф., Ротунно С., Тромбетта С.М. и Монтомоли Э. Озонирование воды и воздуха как альтернативный метод дезинфекции.J. Предыдущая страница. медицина. Хагрид. 58(1), E48-e52 (2017).
Министерство окружающей среды Кореи. https://www.me.go.kr/mamo/web/index.do?menuId=586 (2022). По состоянию на 12 января 2022 г.
Таномсуб, Б. и др. Влияние обработки озоном на рост бактериальных клеток и ультраструктурные изменения. Приложение J. Gen. microorganism. 48(4), 193-199. https://doi.org/10.2323/jgam.48.193 (2002).
Чжан, Ю.К., У, Ц.П., Чжан, Дж.М. и Ян, С.Х. Влияние озона на проницаемость мембран и ультраструктуру Pseudomonas aeruginosa. Чжан, Ю.К., У, Ц.П., Чжан, Дж.М. и Ян, С.Х. Влияние озона на проницаемость мембран и ультраструктуру Pseudomonas aeruginosa. Чжан Ю.К., Ву К.П., Чжан Дж.М. и Ян С.Х. Исследование озона на проницаемость мембран и ультраструктуру Pseudomonas aeruginosa. Чжан, Ю.К., У, Ц.П., Чжан, Ц.М. и Ян, С.Х. Влияние озона на проницаемость мембран и ультраструктуру Pseudomonas aeruginosa. Чжан, YQ, Ву, QP, Чжан, JM и Ян, XH Чжан, YQ, Ву, QP, Чжан, JM и Ян, XH Чжан Ю.К., Ву К.П., Чжан Дж.М. и Ян С.Х. Исследование озона на проницаемость мембран и ультраструктуру Pseudomonas aeruginosa. Чжан, Ю.К., У, Ц.П., Чжан, Ц.М. и Ян, С.Х. Влияние озона на проницаемость мембран и ультраструктуру Pseudomonas aeruginosa.Журнал применения микроорганизмов. 111(4), 1006-1015. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2011.05113.x (2011).
Рассел, А.Д. Сходства и различия в реакции микроорганизмов на фунгициды. Журнал антибиотиков. Химиотерапия. 52(5), 750-763. https://doi.org/10.1093/jac/dkg422 (2003).
Уитакер, Дж., Браун, Б.С., Видаль, С. и Калькатерра, М. Разработка протокола, исключающего Clostridium difficile: совместный проект. Уитакер, Дж., Браун, Б.С., Видаль, С. и Калькатерра, М. Разработка протокола, исключающего Clostridium difficile: совместный проект.Уитакер Дж., Браун Б.С., Видаль С. и Калькатерра М. Разработка протокола по устранению Clostridium difficile: совместное предприятие. Уитакер Дж., Браун Б.С., Видал С. и Калькатерра М. Уитакер, Дж., Браун, Б.С., Видаль, С. и Калькатерра, М.Уитакер, Дж., Браун, Б.С., Видаль, С. и Калькатерра, М. Разработка протокола по устранению Clostridium difficile: совместное предприятие.Да. Журнал контроля инфекций. 35(5), 310-314. https://doi.org/10.1016/j.ajic.2006.08.010 (2007).
Бродвотер, В.Т., Хоэн, Р.К. и Кинг, П.Х. Чувствительность трех выбранных видов бактерий к озону. Бродвотер, В.Т., Хоэн, Р.К. и Кинг, П.Х. Чувствительность трех выбранных видов бактерий к озону. Бродуотер, У.Т., Хён, Р.С. и Кинг, П.Х. Чувствительность трех выбранных видов разрушается по отношению к озону. Бродвотер, В.Т., Хоэн, Р.К. и Кинг, П.Х. Чувствительность к озону трех выбранных видов бактерий. Broadwater, WT, Hoehn, RC и King, PH. Бродвотер, В.Т., Хоэн, Р.К. и Кинг, П.Х. Broadwater, WT, Hoehn, RC и King, PH Чувствительность трех выбранных аварий по озону. Бродвотер, В.Т., Хоэн, Р.К. и Кинг, П.Х. Чувствительность к озону трех выбранных бактерий.заявление. микроорганизм. 26(3), 391–393. https://doi.org/10.1128/am.26.3.391-393.1973 (1973).
Патил, С., Валдрамидис, В.П., Каратзас, К.А., Каллен, П.Дж. и Бурк, П. Оценка механизма микробного окислительного стресса при обработке озоном на основе реакции мутантов Escherichia coli. Патил, С., Валдрамидис, В.П., Каратзас, К.А., Каллен, П.Дж. и Бурк, П. Оценка механизма микробного окислительного стресса при обработке озоном на основе реакции мутантов Escherichia coli.Патил, С., Валдрамидис, В.П., Каратзас, К.А., Каллен, П.Дж. и Берк, П. Оценка механизма микробного окислительного стресса при обработке озоном мутантных реакций Escherichia coli. Патил, С., Валдрамидис, вице-президент, Карацас, К.А., Каллен, П.Дж. и Бурк, П.通过大肠杆菌突变体的反应评估臭氧处理的微生物氧化应激机制。 Патил, С., Валдрамидис, вице-президент, Карацас, К.А., Каллен, П.Дж. и Бурк, П.Патил, С., Валдрамидис, В.П., Карацас, К.А., Каллен, П.Дж. и Бурк, П. Оценка механизмов микробного окислительного стресса при обработке озоном посредством мутантных реакций Escherichia coli.Журнал применения микроорганизмов. 111(1), 136-144. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2011.05021.x (2011).
Грин, К., Ву, Дж., Рикард, А.Х. и Си, К. Оценка способности Acinetobacter baumannii образовывать биопленки на шести различных поверхностях, имеющих отношение к биомедицине. Грин, К., Ву, Дж., Рикард, А.Х. и Си, К. Оценка способности Acinetobacter baumannii образовывать биопленки на шести различных поверхностях, имеющих отношение к биомедицине.Грин, К., Ву, Дж., Рикард, А. Х. и Си, К. Оценка способности Acinetobacter baumannii образовывать биопленки на шести различных поверхностях, имеющих отношение к биомедицине. Грин, К., Ву, Дж., Рикард, А.Х. и Си, К.评估鲍曼不动杆菌在六种不同生物医学相关表面上形成生物膜的能力。 Грин К., Ву Дж., Рикард А.Х. и Си С. Оценка способности 鲍曼不动天生在六种 образовывать биопленку на различных биомедицинских поверхностях.Грин, К., Ву, Дж., Рикард, А. Х. и Си, К. Оценка способности Acinetobacter baumannii образовывать биопленки на шести различных поверхностях, имеющих отношение к биомедицине.Райт. Применение микроорганизмов 63(4), 233-239. https://doi.org/10.1111/lam.12627 (2016).