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Français Un environnement de soins de santé contaminé joue un rôle important dans la propagation des organismes multirésistants (MDR) et de C. difficile. Le but de cette étude était d'évaluer l'effet de l'ozone produit par un réacteur à plasma à décharge à barrière diélectrique (DBD) sur l'action d'Enterococcus faecalis résistant à la vancomycine (VRE), de Klebsiella pneumoniae résistante aux carbapénèmes (CRE), de C. aeruginosa résistante aux carbapénèmes. Effets antibactériens de différents matériaux contaminés par des spores de Pseudomonas spp. Pseudomonas aeruginosa (CRPA), Acinetobacter baumannii résistant aux carbapénèmes (CRAB) et Clostridium difficile. Divers matériaux contaminés par des spores de VRE, CRE, CRPA, CRAB et C. difficile ont été traités à l'ozone à diverses concentrations et durées d'exposition. La microscopie à force atomique (AFM) a démontré une modification de surface des bactéries après traitement à l'ozone. Après l'application d'une dose de 500 ppm d'ozone aux ERV et aux CRAB pendant 15 minutes, une diminution d'environ 2 log10 ou plus a été observée dans l'acier inoxydable, le tissu et le bois, et une diminution de 1 à 2 log10 dans le verre et le plastique. Les spores de C. difficile se sont révélées plus résistantes à l'ozone que tous les autres organismes testés. Après traitement à l'ozone, les cellules bactériennes ont gonflé et se sont déformées en AFM. L'ozone produit par le réacteur à plasma DBD est un outil de décontamination simple et précieux pour les spores de MDRO et de C. difficile, connues pour être des agents pathogènes courants des infections associées aux soins.
L'émergence d'organismes multirésistants (MR) est due à l'utilisation abusive d'antibiotiques chez l'homme et l'animal et a été identifiée par l'Organisation mondiale de la santé (OMS) comme une menace majeure pour la santé publique1. Les établissements de santé sont de plus en plus confrontés à l'émergence et à la propagation d'organismes multirésistants. Les principaux organismes multirésistants sont Staphylococcus aureus résistant à la méthicilline et l'entérocoque résistant à la vancomycine (ERV), les entérobactéries productrices de bêta-lactamases à spectre étendu (BLSE), Pseudomonas aeruginosa multirésistant, Acinetobacter baumannii multirésistant et Enterobacter résistant aux carbapénèmes (ERC). De plus, l'infection à Clostridium difficile est l'une des principales causes de diarrhée associée aux soins, ce qui représente une charge importante pour le système de santé. Les MR et C. difficile se transmettent par les mains du personnel soignant, dans des environnements contaminés ou directement d'une personne à l'autre. Français Des études récentes ont montré que les environnements contaminés dans les établissements de soins jouent un rôle important dans la transmission des bactéries multirésistantes et de C. difficile lorsque les agents de santé (PS) entrent en contact avec des surfaces contaminées ou lorsque les patients entrent en contact direct avec des surfaces contaminées 3,4. Les environnements contaminés dans les établissements de soins réduisent l'incidence des infections ou des colonisations par les bactéries multirésistantes et C. difficile 5,6,7. Compte tenu de l'inquiétude mondiale concernant l'augmentation de la résistance aux antimicrobiens, il est clair que des recherches supplémentaires sont nécessaires sur les méthodes et les procédures de décontamination dans les établissements de soins. Récemment, les méthodes de nettoyage terminal sans contact, en particulier les équipements ultraviolets (UV) ou les systèmes au peroxyde d'hydrogène, ont été reconnues comme des méthodes de décontamination prometteuses. Cependant, ces appareils UV ou au peroxyde d'hydrogène disponibles dans le commerce sont non seulement coûteux, mais la désinfection UV n'est efficace que sur les surfaces exposées, tandis que la désinfection au plasma au peroxyde d'hydrogène nécessite un temps de décontamination relativement long avant le cycle de désinfection suivant 5.
L'ozone possède des propriétés anticorrosion reconnues et peut être produit à moindre coût8. Il est également connu pour sa toxicité pour la santé humaine, mais peut se décomposer rapidement en oxygène8. Les réacteurs à plasma à décharge à barrière diélectrique (DBD) sont de loin les générateurs d'ozone les plus courants9. L'équipement DBD permet de créer du plasma à basse température dans l'air et de produire de l'ozone. Jusqu'à présent, l'utilisation pratique de l'ozone s'est principalement limitée à la désinfection de l'eau des piscines, de l'eau potable et des eaux usées10. Plusieurs études ont fait état de son utilisation dans le milieu médical8,11.
Dans cette étude, nous avons utilisé un générateur d'ozone plasma compact DBD afin de démontrer son efficacité à éliminer les bactéries MDRO et C. difficile, même celles inoculées sur divers matériaux couramment utilisés en milieu médical. De plus, le processus de stérilisation à l'ozone a été élucidé grâce à des images de microscopie à force atomique (AFM) de cellules traitées à l'ozone.
Français Les souches ont été obtenues à partir d'isolats cliniques de : VRE (SCH 479 et SCH 637), Klebsiella pneumoniae résistante aux carbapénèmes (CRE ; SCH CRE-14 et DKA-1), Pseudomonas aeruginosa résistante aux carbapénèmes (CRPA ; 54 et 83) et bactéries résistantes aux carbapénèmes. bactéries Pseudomonas aeruginosa (CRPA ; 54 et 83). Acinetobacter baumannii résistant aux carbapénèmes (CRAB ; F2487 et SCH-511). C. difficile a été obtenu à partir de la National Pathogen Culture Collection (NCCP 11840) de l'Agence coréenne pour le contrôle et la prévention des maladies. Il a été isolé chez un patient en Corée du Sud en 2019 et s'est avéré appartenir au ST15 à l'aide d'un typage de séquence multilocus. Le bouillon Brain Heart Infusion (BHI) (BD, Sparks, MD, USA) inoculé avec VRE, CRE, CRPA et CRAB a été bien mélangé et incubé à 37° C pendant 24 heures.
C. difficile a été ensemencé en anaérobiose sur gélose au sang pendant 48 heures. Plusieurs colonies ont ensuite été ajoutées à 5 ml de bouillon cœur-cervelle et incubées en anaérobiose pendant 48 heures. Après cela, la culture a été agitée, 5 ml d'éthanol à 95 % ont été ajoutés, agités à nouveau et laissés à température ambiante pendant 30 minutes. Après centrifugation à 3 000 g pendant 20 minutes, le surnageant a été éliminé et le culot contenant les spores et les bactéries tuées a été mis en suspension dans 0,3 ml d'eau. Les cellules viables ont été comptées par ensemencement en spirale de la suspension bactérienne sur des plaques de gélose au sang après dilution appropriée. La coloration de Gram a confirmé que 85 à 90 % des structures bactériennes étaient des spores.
L'étude suivante a été menée pour examiner les effets de l'ozone comme désinfectant sur diverses surfaces contaminées par des spores de MDRO et de C. difficile, connues pour provoquer des infections associées aux soins. Préparer des échantillons d'acier inoxydable, de tissu (coton), de verre, de plastique (acrylique) et de bois (pin) mesurant un centimètre sur un centimètre. Désinfecter les coupons avant utilisation. Tous les échantillons ont été stérilisés à l'autoclave avant toute contamination bactérienne.
Dans cette étude, des cellules bactériennes ont été étalées sur divers substrats ainsi que sur des plaques d'agar. Les panneaux ont ensuite été stérilisés par exposition à l'ozone pendant une certaine durée et à une certaine concentration dans une chambre étanche. La figure 1 présente une photographie de l'équipement de stérilisation à l'ozone. Les réacteurs à plasma DBD ont été fabriqués en fixant des électrodes en acier inoxydable perforées et exposées à l'avant et à l'arrière de plaques d'alumine (diélectrique) de 1 mm d'épaisseur. Pour les électrodes perforées, l'ouverture et la surface du trou étaient respectivement de 3 mm et 0,33 mm. Chaque électrode a une forme ronde avec un diamètre de 43 mm. Une alimentation haute tension haute fréquence (GBS Elektronik GmbH Minipuls 2.2) a été utilisée pour appliquer une tension sinusoïdale d'environ 8 kV crête à crête à une fréquence de 12,5 kHz aux électrodes perforées afin de générer du plasma sur les bords des électrodes perforées. S'agissant d'une méthode de stérilisation au gaz, la stérilisation est réalisée dans une chambre divisée en deux compartiments, supérieur et inférieur, contenant respectivement les échantillons contaminés par des bactéries et les générateurs de plasma. Le compartiment supérieur est équipé de deux vannes pour éliminer et évacuer l'ozone résiduel. Avant l'utilisation expérimentale, l'évolution de la concentration d'ozone dans la pièce après la mise en marche de l'installation plasma a été mesurée grâce au spectre d'absorption de la raie spectrale de 253,65 nm d'une lampe à mercure.
(a) Schéma d'un dispositif expérimental de stérilisation bactérienne sur divers matériaux à l'aide d'ozone généré dans le réacteur à plasma DBD, et (b) concentration d'ozone et temps de génération du plasma dans la chambre de stérilisation. La figure a été réalisée avec OriginPro version 9.0 (logiciel OriginPro, Northampton, MA, États-Unis ; https://www.originlab.com).
Tout d'abord, en stérilisant des cellules bactériennes placées sur des plaques de gélose à l'ozone, tout en modifiant la concentration d'ozone et la durée de traitement, la concentration d'ozone et la durée de traitement appropriées pour la décontamination de MDRO et C. difficile ont été déterminées. Pendant le processus de stérilisation, la chambre est d'abord purgée à l'air ambiant, puis remplie d'ozone en allumant l'unité plasma. Après que les échantillons ont été traités à l'ozone pendant une durée prédéterminée, une pompe à membrane est utilisée pour éliminer l'ozone restant. Les mesures ont utilisé un échantillon d'une culture complète de 24 heures (~ 108 UFC/ml). Des échantillons de suspensions de cellules bactériennes (20 μl) ont d'abord été dilués dix fois en série avec une solution saline stérile, puis ces échantillons ont été répartis sur des plaques de gélose stérilisées à l'ozone dans la chambre. Ensuite, des échantillons répétés, constitués d'échantillons exposés et non exposés à l'ozone, ont été incubés à 37 °C pendant 24 heures et les colonies ont été comptées afin d'évaluer l'efficacité de la stérilisation.
Français De plus, selon les conditions de stérilisation définies dans l'étude ci-dessus, l'effet de décontamination de cette technologie sur MDRO et C. difficile a été évalué à l'aide de coupons de divers matériaux (coupons en acier inoxydable, tissu, verre, plastique et bois) couramment utilisés dans les établissements médicaux. Des cultures complètes de 24 heures (~108 ufc/ml) ont été utilisées. Des échantillons de suspension de cellules bactériennes (20 μl) ont été dilués en série dix fois avec une solution saline stérile, puis les coupons ont été immergés dans ces bouillons dilués pour évaluer la contamination. Les échantillons prélevés après immersion dans le bouillon de dilution ont été placés dans des boîtes de Petri stériles et séchés à température ambiante pendant 24 heures. Placez le couvercle de la boîte de Petri sur l'échantillon et placez-le soigneusement dans la chambre d'essai. Retirez le couvercle de la boîte de Petri et exposez l'échantillon à 500 ppm d'ozone pendant 15 minutes. Les échantillons témoins ont été placés dans une enceinte de sécurité biologique et n'ont pas été exposés à l'ozone. Immédiatement après l'exposition à l'ozone, les échantillons et les échantillons non irradiés (c'est-à-dire les témoins) ont été mélangés avec une solution saline stérile à l'aide d'un agitateur vortex afin d'isoler les bactéries de la surface. La suspension éluée a été diluée en série 10 fois avec une solution saline stérile, après quoi le nombre de bactéries diluées a été déterminé sur des plaques de gélose au sang (pour les bactéries aérobies) ou anaérobies au sang pour Brucella (pour Clostridium difficile) et incubées à 37 °C pendant 24 heures. ou dans des conditions anaérobies pendant 48 heures à 37 °C en double pour déterminer la concentration initiale de l'inoculum. La différence de numération bactérienne entre les témoins non exposés et les échantillons exposés a été calculée pour donner une réduction logarithmique du nombre de bactéries (c'est-à-dire l'efficacité de la stérilisation) dans les conditions d'essai.
Les cellules biologiques doivent être immobilisées sur une plaque d'imagerie AFM ; par conséquent, un disque de mica plat et uniformément rugueux, dont l'échelle de rugosité est inférieure à la taille des cellules, est utilisé comme substrat. Le diamètre et l'épaisseur des disques étaient respectivement de 20 mm et 0,21 mm. Pour ancrer fermement les cellules à la surface, la surface du mica est enduite de poly-L-lysine (200 µl), ce qui la charge positivement et la membrane cellulaire négativement. Après enduction de poly-L-lysine, les disques de mica ont été lavés trois fois avec 1 ml d'eau déionisée (DI) et séchés à l'air libre pendant une nuit. Ensuite, les cellules bactériennes ont été appliquées sur la surface de mica enduite de poly-L-lysine par dosage d'une solution bactérienne diluée, laissées en place pendant 30 minutes, puis la surface de mica a été lavée avec 1 ml d'eau déionisée.
La moitié des échantillons a été traitée à l'ozone et la morphologie de surface des plaques de mica chargées de spores de VRE, CRAB et C. difficile a été visualisée par AFM (XE-7, Park Systems). Le mode de fonctionnement de l'AFM est réglé sur le mode tapping, une méthode courante pour l'imagerie des cellules biologiques. Dans les expériences, un microcantilever conçu pour le mode sans contact (OMCL-AC160TS, OLYMPUS Microscopy) a été utilisé. Les images AFM ont été enregistrées avec une fréquence de balayage de sonde de 0,5 Hz, ce qui a donné une résolution d'image de 2048 × 2048 pixels.
Afin de déterminer les conditions d'efficacité des réacteurs à plasma DBD pour la stérilisation, nous avons mené une série d'expériences utilisant des MDRO (VRE, CRE, CRPA et CRAB) et C. difficile pour faire varier la concentration d'ozone et le temps d'exposition. La figure 1b montre la courbe de concentration d'ozone en fonction du temps pour chaque condition de test après la mise en marche du dispositif à plasma. La concentration a augmenté de façon logarithmique, atteignant 300 et 500 ppm après respectivement 1,5 et 2,5 minutes. Des tests préliminaires avec VRE ont montré que le minimum requis pour décontaminer efficacement les bactéries est de 300 ppm d'ozone pendant 10 minutes. Ainsi, dans les expériences suivantes, MDRO et C. difficile ont été exposés à l'ozone à deux concentrations différentes (300 et 500 ppm) et à deux temps d'exposition différents (10 et 15 minutes). L'efficacité de stérilisation pour chaque dose d'ozone et chaque durée d'exposition a été calculée et présentée dans le tableau 1. Une exposition à 300 ou 500 ppm d'ozone pendant 10 à 15 minutes a entraîné une réduction globale du VRE de 2 log10 ou plus. Ce niveau élevé de destruction bactérienne avec CRE a été atteint après 15 minutes d'exposition à 300 ou 500 ppm d'ozone. Une réduction élevée du CRPA (> 7 log10) a été obtenue avec une exposition à 500 ppm d'ozone pendant 15 min. Une réduction élevée du CRPA (> 7 log10) a été obtenue avec une exposition à 500 ppm d'ozone pendant 15 min. Votre CRPA (> 7 log10) est administré en 15 minutes à raison de 500 millions d'ozone. Une forte réduction du CRPA (> 7 log10) a été obtenue avec une exposition à 500 ppm d’ozone pendant 15 minutes.Il s'agit d'une valeur de 500 ppm, soit 15 heures, et d'une CRPA (> 7 log10).Il s'agit d'une valeur de 500 ppm, soit 15 heures, et d'une CRPA (> 7 log10). L'effet CRPA est suffisant (> 7 log10) après 15 minutes d'exposition à l'ozone avec une concentration de 500 ppm. Réduction significative du CRPA (> 7 log10) après 15 minutes d'exposition à 500 ppm d'ozone.Destruction négligeable des bactéries CRAB à 300 ppm d'ozone ; cependant, à 500 ppm d'ozone, il y a eu une réduction de > 1,5 log10. cependant, à 500 ppm d'ozone, il y a eu une réduction de > 1,5 log10. однако при концентрации озона 500 частей на million наблюдалось снижение > 1,5 log10. cependant, à une concentration d'ozone de 500 ppm, une diminution de >1,5 log10 a été observée.然而，在500 ppm 臭氧下，减少了> 1,5 log10。然而，在500 ppm 臭氧下，减少了> 1,5 log10。 Avec une concentration d'ozone de 500 heures sur un million, la quantité d'eau est >1,5 log10. Cependant, à une concentration d’ozone de 500 ppm, une diminution de >1,5 log10 a été observée. L’exposition des spores de C. difficile à 300 ou 500 ppm d’ozone a entraîné une réduction de > 2,5 log10. L’exposition des spores de C. difficile à 300 ou 500 ppm d’ozone a entraîné une réduction de > 2,5 log10. L'exposition aux spores de C. difficile est concentrée à 300 ou 500 millions d'euros avec une concentration > 2,5 log10. L’exposition des spores de C. difficile à 300 ou 500 ppm d’ozone a entraîné des réductions de > 2,5 log10.La valeur moyenne est de 300 à 500 ppm> 2,5 log10. 300 à 500 ppm par minute> 2,5 log10 par minute. L'exposition aux spores de C. difficile est concentrée à 300 ou 500 millions d'euros avec une concentration >2,5 log10. L’exposition des spores de C. difficile à 300 ou 500 ppm d’ozone a entraîné des réductions de > 2,5 log10.
Français D'après les expériences ci-dessus, une dose suffisante d'ozone de 500 ppm pendant 15 minutes a été trouvée pour inactiver les bactéries. Les spores de VRE, CRAB et C. difficile ont été testées pour l'effet germicide de l'ozone sur divers matériaux, notamment l'acier inoxydable, le tissu, le verre, le plastique et le bois couramment utilisés dans les hôpitaux. Leur efficacité de stérilisation est présentée dans le tableau 2. Les organismes testés ont été évalués deux fois. Dans les cas de VRE et CRAB, l'ozone était moins efficace sur les surfaces en verre et en plastique, bien qu'une réduction log10 d'un facteur 2 ou plus ait été observée sur les surfaces en acier inoxydable, en tissu et en bois. Les spores de C. difficile se sont avérées plus résistantes au traitement à l'ozone que tous les autres organismes testés. Pour étudier statistiquement l'effet de l'ozone sur l'effet destructeur de différents matériaux contre VRE, CRAB et C. difficile, des tests t ont été utilisés pour comparer les différences entre le nombre d'UFC par millilitre dans les groupes témoin et expérimental sur différents matériaux (Fig. 2). les souches ont montré des différences statistiquement significatives, mais des différences plus significatives ont été observées pour les spores de VRE et de CRAB que pour les spores de C. difficile.
Diagramme de dispersion des effets de l'ozone sur la destruction bactérienne de divers matériaux (a) VRE, (b) CRAB et (c) C. difficile.
L'imagerie AFM a été réalisée sur des spores de VRE, de CRAB et de C. difficile traitées et non traitées à l'ozone afin d'étudier en détail le processus de stérilisation à l'ozone. Les figures 3a, c et e montrent des images AFM de spores de VRE, de CRAB et de C. difficile non traitées, respectivement. Comme le montrent les images 3D, les cellules sont lisses et intactes. Les figures 3b, d et f montrent les spores de VRE, de CRAB et de C. difficile après traitement à l'ozone. Non seulement leur taille globale a diminué pour toutes les cellules testées, mais leur surface est devenue sensiblement plus rugueuse après exposition à l'ozone.
Images AFM de spores VRE, MRAB et C. difficile non traitées (a, c, e) et (b, d, f) traitées avec 500 ppm d'ozone pendant 15 min. Les images ont été dessinées à l'aide de Park Systems XEI version 5.1.6 (XEI Software, Suwon, Corée ; https://www.parksystems.com/102-products/park-xe-bio).
Nos recherches montrent que l'ozone produit par l'équipement plasma DBD est capable de décontaminer efficacement les spores de MDRO et de C. difficile, connues pour être des causes majeures d'infections nosocomiales. De plus, notre étude, considérant que la contamination environnementale par les spores de MDRO et de C. difficile peut être une source d'infections nosocomiales, a démontré l'efficacité de l'ozone sur les matériaux principalement utilisés en milieu hospitalier. Des tests de décontamination ont été réalisés à l'aide d'un équipement plasma DBD après contamination artificielle de matériaux tels que l'acier inoxydable, le tissu, le verre, le plastique et le bois par des spores de MDRO et de C. difficile. Par conséquent, bien que l'effet de décontamination varie selon le matériau, la capacité de l'ozone à décontaminer est remarquable.
Les objets fréquemment touchés dans les chambres d'hôpital nécessitent une désinfection de routine de faible niveau. La méthode standard de décontamination de ces objets est le nettoyage manuel avec un désinfectant liquide tel qu'un composé d'ammonium quaternaire 13. Même en respectant scrupuleusement les recommandations d'utilisation des désinfectants, le MPO est difficile à éliminer par un nettoyage environnemental traditionnel (généralement manuel) 14. De nouvelles technologies sont donc nécessaires, telles que les méthodes sans contact. C'est pourquoi les désinfectants gazeux, notamment le peroxyde d'hydrogène et l'ozone 10, suscitent un intérêt croissant. L'avantage des désinfectants gazeux est qu'ils peuvent atteindre des endroits et des objets inaccessibles aux méthodes manuelles traditionnelles. Le peroxyde d'hydrogène est récemment entré en usage en milieu médical, mais il est toxique et doit être manipulé selon des procédures strictes. La stérilisation au plasma au peroxyde d'hydrogène nécessite un temps de purge relativement long avant le cycle de stérilisation suivant. En revanche, l'ozone agit comme un agent antibactérien à large spectre, efficace contre les bactéries et les virus résistants aux autres désinfectants 8,11,15. De plus, l'ozone peut être produit à moindre coût à partir de l'air atmosphérique et ne nécessite pas de produits chimiques toxiques supplémentaires susceptibles de laisser une empreinte écologique, car il se décompose en oxygène. Cependant, l'ozone n'est pas largement utilisé comme désinfectant pour la raison suivante : l'ozone est toxique pour la santé humaine ; sa concentration ne dépasse donc pas 0,07 ppm en moyenne pendant plus de 8 heures 16. C'est pourquoi des stérilisateurs à l'ozone ont été développés et commercialisés, principalement pour épurer les gaz d'échappement. Il est également possible d'inhaler du gaz et de produire une odeur désagréable après décontamination 5,8. L'ozone n'était pas activement utilisé dans les établissements médicaux. Cependant, il peut être utilisé en toute sécurité dans les chambres de stérilisation et avec des procédures de ventilation appropriées. Son élimination peut être considérablement accélérée grâce à l'utilisation d'un convertisseur catalytique. Dans cette étude, nous démontrons que les stérilisateurs à l'ozone plasma peuvent être utilisés pour la désinfection en milieu hospitalier. Nous avons développé un appareil offrant des capacités de stérilisation élevées, une utilisation simple et un service rapide pour les patients hospitalisés. De plus, nous avons développé une unité de stérilisation simple utilisant l'air ambiant sans frais supplémentaires. À ce jour, les informations sur les exigences minimales en ozone pour l'inactivation des MDRO sont insuffisantes. L'équipement utilisé dans notre étude est facile à installer et offre une autonomie réduite. Il devrait être utile pour la stérilisation fréquente des équipements.
Le mécanisme de l'action bactéricide de l'ozone n'est pas totalement élucidé. Plusieurs études ont montré que l'ozone endommage les membranes cellulaires bactériennes, entraînant des fuites intracellulaires et, à terme, une lyse cellulaire17,18. L'ozone peut interférer avec l'activité enzymatique cellulaire en réagissant avec les groupes thiols et peut modifier les bases puriques et pyrimidiques des acides nucléiques. Cette étude a visualisé la morphologie des spores de VRE, CRAB et C. difficile avant et après traitement à l'ozone et a constaté que non seulement leur taille diminuait, mais qu'elles devenaient également significativement plus rugueuses en surface, indiquant une lésion ou une corrosion de la membrane externe. et les matériaux internes dus à l'ozone gazeux ont un fort pouvoir oxydant. Ces dommages peuvent entraîner une inactivation cellulaire, selon la gravité des modifications cellulaires.
Les spores de C. difficile sont difficiles à éliminer des chambres d'hôpital. Elles restent aux endroits où elles se sont répandues 10,20. De plus, dans cette étude, bien que la réduction logarithmique maximale de 10 fois du nombre de bactéries sur des plaques d'agar à 500 ppm d'ozone pendant 15 minutes ait été de 2,73, l'effet bactéricide de l'ozone sur divers matériaux contenant des spores de C. difficile a été réduit. Par conséquent, diverses stratégies peuvent être envisagées pour réduire l'infection à C. difficile dans les établissements de santé. Pour une utilisation dans des chambres isolées à C. difficile uniquement, il peut également être utile d'ajuster le temps d'exposition et l'intensité du traitement à l'ozone. De plus, il faut garder à l'esprit que la méthode de décontamination à l'ozone ne peut pas remplacer complètement le nettoyage manuel conventionnel avec des désinfectants et des stratégies antimicrobiennes, et peut également être très efficace pour contrôler C. difficile 5 . Dans cette étude, l'efficacité de l'ozone comme désinfectant variait selon les différents types de MPO. L'efficacité peut dépendre de plusieurs facteurs tels que le stade de croissance, la paroi cellulaire et l'efficacité des mécanismes de réparation21,22. La raison de l'effet stérilisant différent de l'ozone sur la surface de chaque matériau pourrait être due à la formation d'un biofilm. Des études antérieures ont montré qu'E. faecium et E. faecium augmentent la résistance environnementale lorsqu'ils sont présents sous forme de biofilms23, 24, 25. Cependant, cette étude montre que l'ozone a un effet bactéricide significatif sur les spores de MDRO et de C. difficile.
Une limite de notre étude réside dans l'évaluation de l'effet de la rétention d'ozone après assainissement. Cela peut conduire à une surestimation du nombre de cellules bactériennes viables.
Bien que cette étude ait été menée pour évaluer l'efficacité de l'ozone comme désinfectant en milieu hospitalier, il est difficile de généraliser nos résultats à tous les milieux hospitaliers. Des recherches supplémentaires sont donc nécessaires pour évaluer l'applicabilité et la compatibilité de ce stérilisateur à l'ozone DBD en milieu hospitalier réel.
L'ozone produit par les réacteurs à plasma DBD pourrait constituer un agent de décontamination simple et précieux pour les bactéries MDRO et C. difficile. Ainsi, le traitement à l'ozone peut être considéré comme une alternative efficace à la désinfection de l'environnement hospitalier.
Les ensembles de données utilisés et/ou analysés dans l’étude actuelle sont disponibles auprès des auteurs respectifs sur demande raisonnable.
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