Дякуємо за відвідування Nature.com. Версія браузера, яку ви використовуєте, має обмежену підтримку CSS. Для найкращого досвіду рекомендуємо використовувати оновлений браузер (або вимкнути режим сумісності в Internet Explorer). Тим часом, щоб забезпечити постійну підтримку, ми відображатимемо сайт без стилів та JavaScript.
Забруднене середовище медичних закладів відіграє важливу роль у поширенні організмів з множинною лікарською стійкістю (МЛС) та C. difficile. Метою цього дослідження було оцінити вплив озону, що виробляється плазмовим реактором діелектричного бар'єрного розряду (ДБР), на дію ванкоміцин-резистентного Enterococcus faecalis (VRE), карбапенем-резистентної Klebsiella pneumoniae (CRE), карбапенем-резистентної антибактеріальної дії різних матеріалів, забруднених Pseudomonas spp., Pseudomonas aeruginosa (CRPA), карбапенем-резистентним Acinetobacter baumannii (CRAB) та спорами Clostridium difficile. Різні матеріали, забруднені VRE, CRE, CRPA, CRAB та спорами C. difficile, були оброблені озоном у різних концентраціях та з різним часом експозиції. Атомно-силова мікроскопія (АСМ) продемонструвала модифікацію поверхні бактерій після обробки озоном. Коли дозу озону 500 ppm наносили на VRE та CRAB протягом 15 хвилин, спостерігалося зменшення приблизно на 2 або більше log10 у нержавіючій сталі, тканині та деревині, а зменшення на 1-2 log10 спостерігалося у склі та пластику. Спори C. difficile виявилися більш стійкими до озону, ніж усі інші протестовані організми. На AFM, після обробки озоном, бактеріальні клітини набухали та деформувалися. Озон, що виробляється плазмовим реактором DBD, є простим та цінним засобом дезактивації для спор MDRO та C. difficile, які відомі як поширені збудники інфекцій, пов'язаних з охороною здоров'я.
Поява організмів з множинною лікарською стійкістю (МЛС) спричинена неправильним використанням антибіотиків у людей і тварин, і була визначена Всесвітньою організацією охорони здоров'я (ВООЗ) як серйозна загроза громадському здоров'ю1. Зокрема, заклади охорони здоров'я все частіше стикаються з появою та поширенням МЛС. Основними МЛС є метицилін-резистентний золотистий стафілокок та ванкоміцин-резистентний ентерокок (ВРЕ), ентеробактерії, що продукують бета-лактамазу розширеного спектру (БЛРС), мультирезистентна Pseudomonas aeruginosa, мультирезистентний Acinetobacter baumannii та карбапенем-резистентний ентеробактерій (КРЕ). Крім того, інфекція Clostridium difficile є основною причиною діареї, пов'язаної з медичним обслуговуванням, що створює значне навантаження на систему охорони здоров'я. МЛС та C. difficile передаються через руки медичних працівників, забруднене середовище або безпосередньо від людини до людини. Недавні дослідження показали, що забруднене середовище в закладах охорони здоров'я відіграє важливу роль у передачі MDRO та C. difficile, коли медичні працівники (ОЗ) контактують із забрудненими поверхнями або коли пацієнти безпосередньо контактують із забрудненими поверхнями 3,4. Забруднене середовище в закладах охорони здоров'я знижує частоту інфікування або колонізації MLRO та C. difficile 5,6,7. Враховуючи глобальну стурбованість зростанням резистентності до антимікробних препаратів, очевидно, що потрібні додаткові дослідження методів та процедур дезактивації в закладах охорони здоров'я. Нещодавно безконтактні методи очищення терміналів, особливо ультрафіолетове (УФ) обладнання або системи перекису водню, були визнані перспективними методами дезактивації. Однак ці комерційно доступні УФ-пристрої або пристрої з перекисом водню не тільки дорогі, УФ-дезінфекція ефективна лише на відкритих поверхнях, тоді як плазмова дезінфекція перекисом водню вимагає відносно тривалого часу дезактивації перед наступним циклом дезінфекції 5.
Озон має відомі антикорозійні властивості та може бути вироблений недорого8. Також відомо, що він токсичний для здоров'я людини, але може швидко розкладатися на кисень8. Плазмові реактори з діелектричним бар'єрним розрядом (DBD) є найпоширенішими генераторами озону9. Обладнання DBD дозволяє створювати низькотемпературну плазму в повітрі та виробляти озон. Дотепер практичне використання озону обмежувалося переважно дезінфекцією води в басейнах, питної води та стічних вод10. Кілька досліджень повідомляли про його використання в медичних закладах8,11.
У цьому дослідженні ми використовували компактний плазмовий озонатор DBD, щоб продемонструвати його ефективність у знищенні MDRO та C. difficile, навіть тих, що були інокульовані на різних матеріалах, що зазвичай використовуються в медичних установах. Крім того, процес стерилізації озоном був з'ясований за допомогою зображень атомно-силової мікроскопії (АСМ) клітин, оброблених озоном.
Штами були отримані з клінічних ізолятів: VRE (SCH 479 та SCH 637), карбапенем-резистентної Klebsiella pneumoniae (CRE; SCH CRE-14 та DKA-1), карбапенем-резистентної Pseudomonas aeruginosa (CRPA; 54 та 83) та карбапенем-резистентних бактерій, Pseudomonas aeruginosa (CRPA; 54 та 83), резистентного Acinetobacter baumannii (CRAB; F2487 та SCH-511). C. difficile був отриманий з Національної колекції культур патогенів (NCCP 11840) Корейського агентства з контролю та профілактики захворювань. Він був виділений від пацієнта в Південній Кореї у 2019 році та виявлений як такий, що належить до ST15 за допомогою багатолокусного послідовного типування. Бульйон для інфузії мозку та серця (BHI) (BD, Спаркс, Меріленд, США), інокульований VRE, CRE, CRPA та CRAB, добре перемішали та інкубували при 37°C протягом 24 годин.
C. difficile анаеробно висівали штрихом на кров'яний агар протягом 48 годин. Кілька колоній потім додали до 5 мл бульйону з мозку та серця та інкубували в анаеробних умовах протягом 48 годин. Після цього культуру струшували, додали 5 мл 95% етанолу, знову струшували та залишили при кімнатній температурі на 30 хвилин. Після центрифугування при 3000 g протягом 20 хвилин, супернатант видалили, а осад, що містив спори та вбиті бактерії, суспендували у 0,3 мл води. Життєздатні клітини підраховували шляхом спірального посіву суспензії бактеріальних клітин на чашки з кров'яним агаром після відповідного розведення. Фарбування за Грамом підтвердило, що від 85% до 90% бактеріальних структур були спорами.
Наступне дослідження було проведено для вивчення впливу озону як дезінфікуючого засобу на різні поверхні, забруднені спорами MDRO та C. difficile, які, як відомо, викликають інфекції, пов'язані з охороною здоров'я. Підготуйте зразки нержавіючої сталі, тканини (бавовна), скла, пластику (акрил) та дерева (сосна) розміром один на один сантиметр. Продезінфікуйте купони перед використанням. Усі зразки були стерилізовані в автоклаві перед інфікуванням бактеріями.
У цьому дослідженні бактеріальні клітини були розподілені на різних поверхнях субстратів, а також на агарових чашках. Потім панелі стерилізували, піддаючи їх впливу озону протягом певного періоду часу та при певній концентрації в герметичній камері. На рис. 1 наведено фотографію обладнання для стерилізації озоном. Плазмові реактори DBD були виготовлені шляхом приєднання перфорованих та відкритих електродів з нержавіючої сталі до передньої та задньої частин пластин з оксиду алюмінію (діелектричних) товщиною 1 мм. Для перфорованих електродів площа отвору та отвору становила 3 ​​мм та 0,33 мм відповідно. Кожен електрод має круглу форму діаметром 43 мм. Для подачі синусоїдальної напруги приблизно 8 кВ від піку до піку з частотою 12,5 кГц до перфорованих електродів використовувався високовольтний високочастотний джерело живлення (GBS Elektronik GmbH Minipuls 2.2) для генерації плазми на краях електродів. Оскільки технологія є методом газової стерилізації, стерилізація проводиться в камері, розділеній за об'ємом на верхній та нижній відсіки, які містять бактеріально забруднені зразки та генератори плазми відповідно. Верхній відсік має два клапанні отвори для видалення та вентиляції залишкового озону. Перед використанням в експерименті зміну в часі концентрації озону в приміщенні після ввімкнення плазмової установки вимірювали за спектром поглинання спектральної лінії 253,65 нм ртутної лампи.
(a) Схема експериментальної установки для стерилізації бактерій на різних матеріалах з використанням озону, що генерується в плазмовому реакторі DBD, та (b) концентрація озону та час генерації плазми в стерилізаційній камері. Рисунок створено за допомогою OriginPro версії 9.0 (програмне забезпечення OriginPro, Нортгемптон, Массачусетс, США; https://www.originlab.com).
Спочатку, шляхом стерилізації бактеріальних клітин, розміщених на агарових чашках, озоном, при зміні концентрації озону та часу обробки, визначали відповідну концентрацію озону та час обробки для деконтамінації MDRO та C. difficile. Під час процесу стерилізації камеру спочатку продували навколишнім повітрям, а потім наповнювали озоном, увімкнувши плазмовий блок. Після обробки зразків озоном протягом заданого періоду часу, для видалення залишків озону використовується діафрагмовий насос. Для вимірювань використовували зразок повної 24-годинної культури (~ 108 КУО/мл). Зразки суспензій бактеріальних клітин (20 мкл) спочатку послідовно розводили десять разів стерильним фізіологічним розчином, а потім ці зразки розподіляли на агарових чашках, стерилізованих озоном у камері. Після цього повторні зразки, що складалися зі зразків, що піддавалися впливу озону, та зразків, що не піддавалися впливу озону, інкубували при 37°C протягом 24 годин та підраховували колонії для оцінки ефективності стерилізації.
Далі, відповідно до умов стерилізації, визначених у вищезазначеному дослідженні, деконтамінаційний ефект цієї технології на MDRO та C. difficile був оцінений за допомогою купонів з різних матеріалів (нержавіюча сталь, тканина, скло, пластик та дерев'яні купони), які зазвичай використовуються в медичних закладах. Були використані повні 24-годинні культури (~108 КУО/мл). Зразки суспензії бактеріальних клітин (20 мкл) послідовно розводили десять разів стерильним фізіологічним розчином, а потім купони занурювали в ці розведені бульйони для оцінки забруднення. Зразки, видалені після занурення в бульйон для розведення, поміщали у стерильні чашки Петрі та сушили при кімнатній температурі протягом 24 годин. Помістіть кришку чашки Петрі на зразок та обережно помістіть його у випробувальну камеру. Зніміть кришку з чашки Петрі та піддайте зразок впливу озону з концентрацією 500 ppm протягом 15 хвилин. Контрольні зразки поміщали в шафу біологічної безпеки та не піддавали впливу озону. Відразу після впливу озону зразки та неопромінені зразки (тобто контролі) змішували зі стерильним фізіологічним розчином за допомогою вихрового змішувача для виділення бактерій з поверхні. Елюйовану суспензію послідовно розводили в 10 разів стерильним фізіологічним розчином, після чого кількість розведених бактерій визначали на чашках з кров'яним агаром (для аеробних бактерій) або анаеробних чашках з кров'яним агаром для Brucella (для Clostridium difficile) та інкубували при 37°C протягом 24 годин або в анаеробних умовах протягом 48 годин при 37°C у двох повторностях для визначення початкової концентрації інокулята. Різницю в кількості бактерій між неекспонованими контролями та експонованими зразками розраховували, щоб отримати логарифмічне зниження кількості бактерій (тобто ефективність стерилізації) в умовах тестування.
Біологічні клітини необхідно іммобілізувати на пластині для АСМ-візуалізації; тому як підкладку використовується плоский та рівномірно шорсткий диск слюди зі шкалою шорсткості, меншою за розмір клітини. Діаметр та товщина дисків становили 20 мм та 0,21 мм відповідно. Для міцного закріплення клітин на поверхні поверхню слюди покривають полі-L-лізином (200 мкл), що робить її позитивно зарядженою, а клітинну мембрану - негативно. Після покриття полі-L-лізином диски слюди 3 рази промивали 1 мл деіонізованої (DI) води та сушили на повітрі протягом ночі. Потім бактеріальні клітини наносили на поверхню слюди, покриту полі-L-лізином, шляхом додавання розведеного бактеріального розчину, залишали на 30 хвилин, а потім поверхню слюди промивали 1 мл деіонізованої води.
Половину зразків обробили озоном, а морфологію поверхні слюдяних пластин, завантажених VRE, CRAB та спорами C. difficile, візуалізували за допомогою АСМ (XE-7, park systems). Режим роботи АСМ встановлено на режим постукування, що є поширеним методом візуалізації біологічних клітин. В експериментах використовувався мікроконсоль, розроблений для безконтактного режиму (OMCL-AC160TS, OLYMPUS Microscopy). Зображення АСМ були записані на основі швидкості сканування зонда 0,5 Гц, що призвело до роздільної здатності зображення 2048 × 2048 пікселів.
Щоб визначити умови, за яких плазмові реактори DBD є ефективними для стерилізації, ми провели серію експериментів, використовуючи як MDRO (VRE, CRE, CRPA та CRAB), так і C. difficile для зміни концентрації озону та часу експозиції. На рис. 1b показано криву залежності концентрації озону від часу для кожної умови тестування після ввімкнення плазмового пристрою. Концентрація логарифмічно зростала, досягнувши 300 та 500 ppm через 1,5 та 2,5 хвилини відповідно. Попередні випробування з VRE показали, що мінімум, необхідний для ефективного знезараження бактерій, становить 300 ppm озону протягом 10 хвилин. Таким чином, у наступних експериментах MDRO та C. difficile піддавалися впливу озону при двох різних концентраціях (300 та 500 ppm) та при двох різних часах експозиції (10 та 15 хвилин). Ефективність стерилізації для кожної дози озону та налаштування часу експозиції була розрахована та наведена в таблиці 1. Вплив озону з концентрацією 300 або 500 ppm протягом 10–15 хвилин призвів до загального зниження VRE на 2 log10 або більше. Такий високий рівень знищення бактерій за допомогою CRE був досягнутий за 15 хвилин впливу озону з концентрацією 300 або 500 ppm. Значне зниження CRPA (> 7 log10) було досягнуто при впливі 500 ppm озону протягом 15 хвилин. Значне зниження CRPA (> 7 log10) було досягнуто при впливі 500 ppm озону протягом 15 хвилин. Високе зниження CRPA (> 7 log10) було досягнуто при дії 500 частин на мільйон озону протягом 15 хвилин. Значне зниження CRPA (> 7 log10) було досягнуто при впливі озону з концентрацією 500 ppm протягом 15 хвилин.暴露于500 ppm 的臭氧15 分钟后，可大幅降低CRPA (> 7 log10).暴露于500 ppm 的臭氧15 分钟后，可大幅降低CRPA (> 7 log10). Существенное зниження CRPA (> 7 log10) після 15-хвилинного впливу озону з концентрацією 500 ppm. Значне зниження CRPA (> 7 log10) після 15 хвилин впливу озону з концентрацією 500 ppm.Незначне знищення бактерій CRAB при концентрації озону 300 ppm; однак, при концентрації озону 500 ppm спостерігалося зниження > 1,5 log10. однак, при концентрації озону 500 ppm спостерігалося зниження > 1,5 log10. однак при концентрації озону 500 частин на мільйон спостерігалося зниження > 1,5 log10. однак, при концентрації озону 500 ppm спостерігалося зменшення >1,5 log10.然而，在500 ppm 臭氧下，减少了> 1,5 log10.然而，在500 ppm 臭氧下，减少了> 1,5 log10. Однак при концентрації озону 500 частин на мільйон спостерігалося зниження >1,5 log10. Однак, при концентрації озону 500 ppm спостерігалося зменшення >1,5 log10. Вплив на спори C. difficile озону в концентрації 300 або 500 ppm призвів до зниження > 2,5 log10. Вплив на спори C. difficile озону в концентрації 300 або 500 ppm призвів до зниження > 2,5 log10. Воздействие на спори C. difficile озону з концентрацією 300 або 500 частин на мільйон приводило до зниження > 2,5 log10. Вплив спор C. difficile на озон у концентрації 300 або 500 ppm призвів до зниження концентрації >2,5 log10.将艰难梭菌孢子暴露于300 或500 ppm 的臭氧中导致> 2,5 log10 减少。 300 或500 ppm 的臭氧中导致> 2,5 log10 减少。 Воздействие на спори C. difficile озону з концентрацією 300 або 500 частин на мільйон приводило до зниження >2,5 log10. Вплив спор C. difficile на озон у концентрації 300 або 500 ppm призвів до зниження концентрації >2,5 log10.
На основі вищезазначених експериментів було виявлено достатню вимогу для інактивації бактерій у дозі 500 ppm озону протягом 15 хвилин. Спори VRE, CRAB та C. difficile були протестовані на герміцидний ефект озону на різних матеріалах, включаючи нержавіючу сталь, тканину, скло, пластик та дерево, що зазвичай використовуються в лікарнях. Їх ефективність стерилізації показана в таблиці 2. Тестові організми оцінювали двічі. У VRE та CRAB озон був менш ефективним на скляних та пластикових поверхнях, хоча на поверхнях з нержавіючої сталі, тканини та дерева спостерігалося зниження log10 приблизно в 2 рази або більше. Спори C. difficile виявилися більш стійкими до обробки озоном, ніж усі інші протестовані організми. Для статистичного вивчення впливу озону на знищувальний ефект різних матеріалів проти VRE, CRAB та C. difficile були використані t-тести для порівняння відмінностей між кількістю КУО на мілілітр у контрольній та експериментальній групах на різних матеріалах (рис. 2). Штами показали статистично значущі відмінності, але більш значущі відмінності спостерігалися для спор VRE та CRAB, ніж для спор C. difficile.
Діаграма розсіювання впливу озону на знищення бактерій різними матеріалами (a) VRE, (b) CRAB та (c) C. difficile.
АСМ-візуалізацію було проведено на оброблених озоном та необроблених спорах VRE, CRAB та C. difficile для детального вивчення процесу стерилізації озоном. На рис. 3a, c та e показано АСМ-зображення необроблених спор VRE, CRAB та C. difficile відповідно. Як видно на 3D-зображеннях, клітини гладкі та неушкоджені. На рисунках 3b, d та f показано спори VRE, CRAB та C. difficile після обробки озоном. Після впливу озону вони не тільки зменшилися в загальному розмірі, але й помітно стали більш шорсткими на поверхні.
АСМ-зображення необроблених спор VRE, MRAB та C. difficile (a, c, e) та (b, d, f), оброблених 500 ppm озону протягом 15 хвилин. Зображення були отримані за допомогою Park Systems XEI версії 5.1.6 (XEI Software, Сувон, Корея; https://www.parksystems.com/102-products/park-xe-bio).
Наші дослідження показують, що озон, що виробляється плазмовим обладнанням DBD, демонструє здатність ефективно знезаражувати спори MDRO та C. difficile, які, як відомо, є основними причинами інфекцій, пов'язаних з охороною здоров'я. Крім того, у нашому дослідженні, враховуючи, що забруднення навколишнього середовища спорами MDRO та C. difficile може бути джерелом інфекцій, пов'язаних з охороною здоров'я, герміцидний ефект озону виявився успішним для матеріалів, що використовуються переважно в лікарнях. Випробування на дезактивацію проводилися з використанням плазмового обладнання DBD після штучного забруднення таких матеріалів, як нержавіюча сталь, тканина, скло, пластик та дерево, спорами MDRO та C. difficile. Як результат, хоча ефект дезактивації варіюється залежно від матеріалу, дезактиваційна здатність озону є вражаючою.
Часто торкані предмети в лікарняних палатах потребують регулярної дезінфекції низького рівня. Стандартним методом дезінфекції таких предметів є ручне очищення рідким дезінфікуючим засобом, таким як четвертинна амонієва сполука 13. Навіть за умови суворого дотримання рекомендацій щодо використання дезінфікуючих засобів, MPO важко видалити традиційним очищенням навколишнього середовища (зазвичай ручним очищенням) 14. Тому потрібні нові технології, такі як безконтактні методи. Відповідно, виник інтерес до газоподібних дезінфікуючих засобів, включаючи перекис водню та озон 10. Перевага газоподібних дезінфікуючих засобів полягає в тому, що вони можуть досягати місць і об'єктів, до яких традиційні ручні методи не можуть дістатися. Перекис водню нещодавно почали використовувати в медичних установах, проте сама перекис водню є токсичною і повинна оброблятися відповідно до суворих процедур обробки. Плазмова стерилізація перекисом водню вимагає відносно тривалого часу очищення перед наступним циклом стерилізації. На противагу цьому, озон діє як антибактеріальний засіб широкого спектру дії, ефективний проти бактерій і вірусів, стійких до інших дезінфікуючих засобів 8,11,15. Крім того, озон можна дешево виробляти з атмосферного повітря і не потребує додаткових токсичних хімічних речовин, які можуть залишати шкідливий слід у навколишньому середовищі, оскільки він зрештою розщеплюється на кисень. Однак, причина, чому озон не отримав широкого використання як дезінфікуючий засіб, полягає в наступному. Озон токсичний для здоров'я людини, тому його концентрація не перевищує 0,07 ppm в середньому протягом більше 8 годин16, тому були розроблені та випущені на ринок озонові стерилізатори, головним чином для очищення відпрацьованих газів. Також можливо вдихати газ і утворювати неприємний запах після дезактивації5,8. Озон не активно використовувався в медичних закладах. Однак озон можна безпечно використовувати в стерилізаційних камерах та за умови належної вентиляції, а його видалення можна значно прискорити за допомогою каталітичного нейтралізатора. У цьому дослідженні ми демонструємо, що плазмові озонові стерилізатори можна використовувати для дезінфекції в медичних закладах. Ми розробили пристрій з високими можливостями стерилізації, простим в експлуатації та швидким обслуговуванням для госпіталізованих пацієнтів. Крім того, ми розробили простий стерилізаційний блок, який використовує навколишнє повітря без додаткових витрат. На сьогоднішній день недостатньо інформації про мінімальні вимоги до озону для інактивації MDRO. Обладнання, що використовувалося в нашому дослідженні, легко налаштовується, має короткий час роботи та, як очікується, буде корисним для частої стерилізації обладнання.
Механізм бактерицидної дії озону до кінця не з'ясований. Кілька досліджень показали, що озон пошкоджує мембрани бактеріальних клітин, що призводить до внутрішньоклітинного витоку та, зрештою, лізису клітин17,18. Озон може впливати на ферментативну активність клітин, реагуючи з тіоловими групами, та може модифікувати пуринові та піримідинові основи в нуклеїнових кислотах. Це дослідження візуалізувало морфологію спор VRE, CRAB та C. difficile до та після обробки озоном і виявило, що вони не тільки зменшилися в розмірі, але й стали значно шорсткішими на поверхні, що свідчить про пошкодження або корозію зовнішньої мембрани та внутрішніх матеріалів через те, що озоновий газ має сильну окислювальну здатність. Це пошкодження може призвести до інактивації клітин, залежно від тяжкості клітинних змін.
Спори C. difficile важко видалити з лікарняних палат. Спори залишаються в місцях, де вони розсіювалися 10,20. Крім того, у цьому дослідженні, хоча максимальне логарифмічне 10-кратне зменшення кількості бактерій на агарових чашках при концентрації озону 500 ppm протягом 15 хвилин становило 2,73, бактерицидний ефект озону на різні матеріали, що містять спори C. difficile, був зменшений. Тому можна розглянути різні стратегії для зменшення інфекції C. difficile в медичних закладах. Для використання лише в ізольованих камерах C. difficile також може бути корисним скоригувати час експозиції та інтенсивність обробки озоном. Крім того, слід пам'ятати, що метод деконтамінації озоном не може повністю замінити звичайне ручне очищення дезінфікуючими засобами та антимікробними стратегіями, а також може бути дуже ефективним у боротьбі з C. difficile 5. У цьому дослідженні ефективність озону як дезінфікуючого засобу варіювалася для різних типів MPO. Ефективність може залежати від кількох факторів, таких як стадія росту, клітинна стінка та ефективність механізмів репарації21,22. Причиною різного стерилізуючого ефекту озону на поверхні кожного матеріалу може бути утворення біоплівки. Попередні дослідження показали, що E. faecium та E. faecium підвищують стійкість до впливу навколишнього середовища, коли вони присутні у вигляді біоплівок23, 24, 25. Однак це дослідження показує, що озон має значний бактерицидний ефект на MDRO та спори C. difficile.
Обмеженням нашого дослідження є те, що ми оцінювали вплив затримки озону після рекультивації. Це може призвести до переоцінки кількості життєздатних бактеріальних клітин.
Хоча це дослідження було проведено для оцінки ефективності озону як дезінфікуючого засобу в умовах лікарні, важко узагальнити наші результати на всі лікарняні установи. Таким чином, необхідні додаткові дослідження для вивчення застосовності та сумісності цього озонового стерилізатора DBD в реальних лікарняних умовах.
Озон, що виробляється плазмовими реакторами DBD, може бути простим та цінним засобом дезактивації для MDRO та C. difficile. Таким чином, обробку озоном можна розглядати як ефективну альтернативу дезінфекції лікарняного середовища.
Набори даних, використані та/або проаналізовані в цьому дослідженні, доступні у відповідних авторів за обґрунтованим запитом.
Глобальна стратегія ВООЗ щодо стримування резистентності до антимікробних препаратів. https://www.who.int/drugresistance/WHO_Global_Strategy.htm/en/ Доступно.
Дубберке, Е.Р. та Олсен, М.А. Вплив Clostridium difficile на систему охорони здоров'я. Дубберке, Е.Р. та Олсен, М.А. Вплив Clostridium difficile на систему охорони здоров'я.Дубберке, Е.Р. та Олсен, М.А. Тягар Clostridium difficile в системі охорони здоров'я. Dubberke, ER & Olsen, MA 艰难梭菌对医疗保健系统的负担。 Дубберке, відділення невідкладної допомоги та Олсен, МассачусетсДубберке, Е.Р. та Олсен, М.А. Тягар Clostridium difficile для системи охорони здоров'я.клінічний. Інфект. Дис. https://doi.org/10.1093/cid/cis335 (2012).
Бойс, Дж. М. Забруднення навколишнього середовища має значний вплив на внутрішньолікарняні інфекції. J. Hospital. Infect. 65 (Додаток 2), 50-54. https://doi.org/10.1016/s0195-6701(07)60015-2 (2007).
Кім, Ю.А., Лі, Х. та К. Л. Кім, Ю.А., Лі, Х. та К. Л.Кім, Ю.А., Лі, Х. та К.Л. Кім, Ю.А., Лі, Х. та К. Л. Кім, Ю.А., Лі, Х. та К. Л.Кім, Ю.А., Лі, Х. та К.Л.Забруднення та контроль інфекцій лікарняного середовища патогенними бактеріями [J. Korea J. Hospital Infection Control. 20(1), 1-6 (2015).
Дансер, С. Дж. Боротьба з внутрішньолікарняними інфекціями: увага до ролі навколишнього середовища та нові технології дезінфекції. clinical. microorganism. open 27(4), 665–690. https://doi.org/10.1128/cmr.00020-14 (2014).
Вебер, Д.Дж. та ін. Ефективність ультрафіолетових пристроїв та систем перекису водню для деконтамінації термінальних зон: фокус на клінічних випробуваннях. Так. J. Infection control. 44 (5 доповнень), e77-84. https://doi.org/10.1016/j.ajic.2015.11.015 (2016).
Сіані, Х. та Майярд, Дж.Й. Найкраща практика деконтамінації медичного середовища. Сіані, Х. та Майярд, Дж.Й. Найкраща практика деконтамінації медичного середовища. Siani, H. & Maillard, JY Передова практика дезактивації середовища охорони здоров'я. Сіані, Х. та Майярд, Дж.Й. Належна практика деконтамінації медичних закладів. Siani, H. & Maillard, JY 医疗环境净化的最佳实践。 Сіані, Х. та Майярд, Дж.Й. Найкраща практика очищення медичного середовища. Siani, H. & Maillard, JY Передовий досвід обеззаражування медичних установ. Сіані, Х. та Майярд, Дж.Й. Найкраща практика деконтамінації медичних закладів.ЄВРО. J. Clin. мікроорганізм для інфікування Dis. 34(1), 1-11. https://doi.org/10.1007/s10096-014-2205-9 (2015).
Шарма, М. та Хадсон, Дж. Б. Озоновий газ є ефективним та практичним антибактеріальним засобом. Шарма, М. та Хадсон, Дж. Б. Озоновий газ є ефективним та практичним антибактеріальним засобом.Шарма, М. та Хадсон, Дж. Б. Газоподібний озон є ефективним та практичним антибактеріальним засобом. Sharma, M. & Hudson, JB 臭氧气体是一种有效且实用的抗菌剂。 Шарма, М. та Хадсон, Дж. Б.Шарма, М. та Хадсон, Дж. Б. Газоподібний озон є ефективним та практичним антимікробним засобом.Так. Журнал контролю інфекцій. 36(8), 559-563. https://doi.org/10.1016/j.ajic.2007.10.021 (2008).
Син-Лок Пак, Дж.-ДМ, Лі, С.-Х. & Шін, С.-Й. & Шін, С.-Й.та Шин, С.-Ю. & Шін, С.-Й. & Шін, С.-Й.та Шин, С.-Ю.Озон ефективно генерується за допомогою сітчастих електродів у генераторі озону розрядного типу з діелектричним бар'єром. J. Electrostatics. 64(5), 275-282. https://doi.org/10.1016/j.elstat.2005.06.007 (2006).
Моут, Дж., Каргілл, Дж., Шоун, Дж. та Аптон, М. Застосування нового процесу дезактивації з використанням газоподібного озону. Моут, Дж., Каргілл, Дж., Шоун, Дж. та Аптон, М. Застосування нового процесу дезактивації з використанням газоподібного озону.Моут Дж., Каргілл Дж., Шон Дж. та Аптон М. Застосування нового процесу дезактивації з використанням озонового газу. Moat, J., Cargill, J., Shone, J. & Upton, M. 使用气态臭氧的新型净化工艺的应用。 Моут, Дж., Каргілл, Дж., Шоун, Дж. та Аптон, М.Моут Дж., Каргілл Дж., Шон Дж. та Аптон М. Застосування нового процесу очищення з використанням озонового газу.Can. J. Мікроорганізми. 55(8), 928–933. https://doi.org/10.1139/w09-046 (2009).
Зутман, Д., Шеннон, М. та Мандель, А. Ефективність нової системи на основі озону для швидкої високорівневої дезінфекції приміщень та поверхонь у закладах охорони здоров'я. Зутман, Д., Шеннон, М. та Мандель, А. Ефективність нової системи на основі озону для швидкої високорівневої дезінфекції приміщень та поверхонь у закладах охорони здоров'я.Зутман, Д., Шеннон, М. та Мандель, А. Ефективність нової системи на основі озону для швидкої дезінфекції медичних приміщень та поверхонь високого рівня. Zoutman, D., Shannon, M. & Mandel, A. 新型臭氧系统对医疗保健空间和表面进行快速高水平消毒的有效性。 Зутман, Д., Шеннон, М. та Мандель, А.Зутман, Д., Шеннон, М. та Мандель, А. Ефективність нової озонової системи для швидкої дезінфекції медичних приміщень та поверхонь високого рівня.Так. J. Інфекційний контроль. 39(10), 873-879. https://doi.org/10.1016/j.ajic.2011.01.012 (2011).
Вуллт, М., Оденхольт, І. та Вальдер, М. Активність трьох дезінфікуючих засобів та підкисленого нітриту проти спор Clostridium difficile. Вуллт, М., Оденхольт, І. та Вальдер, М. Активність трьох дезінфікуючих засобів та підкисленого нітриту проти спор Clostridium difficile.Вуллт, М., Оденхольт, І. та Вальдер, М. Активність трьох дезінфікуючих засобів та підкисленого нітриту проти спор Clostridium difficile.Вуллт М., Оденгольт І. та Вальдер М. Активність трьох дезінфікуючих засобів та підкислених нітритів проти спор Clostridium difficile. Лікарня з контролю інфекцій. Епідеміологія. 24(10), 765-768. https://doi.org/10.1086/502129 (2003).
Рей, А. та ін. Деконтамінація випаровуванням перекису водню під час спалаху мультирезистентного Acinetobacter baumannii у лікарні тривалого догляду. Лікарня з контролю інфекцій. Епідеміологія. 31(12), 1236-1241. https://doi.org/10.1086/657139 (2010).
Ексштейн, Б.К. та ін. Зменшення забруднення поверхонь навколишнього середовища Clostridium difficile та ванкоміцин-резистентними ентерококами після вжиття заходів щодо покращення методів очищення. Інфекційні хвороби ВМС. 7, 61. https://doi.org/10.1186/1471-2334-7-61 (2007).
Мартінеллі, М., Джованнанджелі, Ф., Ротунно, С., Тромбетта, К.М. та Монтомолі, Е. Обробка води та повітря озоном як альтернативна технологія санітарної обробки. Мартінеллі, М., Джованнанджелі, Ф., Ротунно, С., Тромбетта, К.М. та Монтомолі, Е. Обробка води та повітря озоном як альтернативна технологія санітарної обробки.Мартінеллі, М., Джованнанджелі, Ф., Ротунно, С., Тромбетта, К.М. та Монтомолі, Е. Озонова обробка води та повітря як альтернативна технологія санітарії. Мартінеллі, М., Джованнангелі, Ф., Ротунно, С., Тромбетта, К. М. та Монтомолі, Е. 水和空气臭氧处理作为替代消毒技术。 Мартінеллі, М., Джованнанджелі, Ф., Ротунно, С., Тромбетта, К. М. та Монтомолі, Е.Мартінеллі М., Джованнанджелі Ф., Ротунно С., Тромбетта С.М. та Монтомолі Е. Озонування води та повітря як альтернативний метод дезінфекції.J. Попередня сторінка. медицина. Hagrid. 58(1), E48-e52 (2017).
Міністерство охорони навколишнього середовища Кореї. https://www.me.go.kr/mamo/web/index.do?menuId=586 (2022). Станом на 12 січня 2022 року
Таномсуб, Б. та ін. Вплив обробки озоном на ріст бактеріальних клітин та ультраструктурні зміни. Додаток J. Gen. microorganism. 48(4), 193-199. https://doi.org/10.2323/jgam.48.193 (2002).
Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM та Yang, XH. Вплив озону на проникність та ультраструктуру мембран у Pseudomonas aeruginosa. Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM та Yang, XH. Вплив озону на проникність та ультраструктуру мембран у Pseudomonas aeruginosa. Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM & Yang, XH Вплив озону на проникливість мембран і ультраструктуру Pseudomonas aeruginosa. Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM та Yang, XH. Вплив озону на проникність мембран та ультраструктуру Pseudomonas aeruginosa. Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM & Yang, XH 臭氧对铜绿假单胞菌膜通透性和超微结构的影响。 Чжан, YQ, Ву, QP, Чжан, JM і Ян, XH Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM & Yang, XH Вплив озону на проникливість мембран і ультраструктуру Pseudomonas aeruginosa. Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM та Yang, XH. Вплив озону на проникність мембран та ультраструктуру Pseudomonas aeruginosa.J. Application. мікроорганізм. 111(4), 1006-1015. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2011.05113.x (2011).
Рассел, А.Д. Подібність та відмінності в мікробних реакціях на фунгіциди. J. Antibiotics. chemotherapy. 52(5), 750-763. https://doi.org/10.1093/jac/dkg422 (2003).
Вітакер, Дж., Браун, Б.С., Відал, С. та Калькатерра, М. Розробка протоколу, який усуває Clostridium difficile: спільний проєкт. Вітакер, Дж., Браун, Б.С., Відал, С. та Калькатерра, М. Розробка протоколу, який усуває Clostridium difficile: спільний проєкт.Вітакер Дж., Браун Б.С., Відал С. та Калькатерра М. Розробка протоколу для знищення Clostridium difficile: спільне підприємство. Вітакер, Дж., Браун, Б.С., Відал, С. і Калкатерра, М. Вітакер, Дж., Браун, Б.С., Відал, С. та Калькатерра, М.Вітакер, Дж., Браун, Б.С., Відал, С. та Калькатерра, М. Розробка протоколу для знищення Clostridium difficile: спільне підприємство.Так. J. Інфекційний контроль. 35(5), 310-314. https://doi.org/10.1016/j.ajic.2006.08.010 (2007).
Бродвотер, В.Т., Хен, Р.К. та Кінг, П.Х. Чутливість трьох вибраних видів бактерій до озону. Бродвотер, В.Т., Хен, Р.К. та Кінг, П.Х. Чутливість трьох вибраних видів бактерій до озону. Broadwater, WT, Hoehn, RC & King, PH Чувствительность трьох вибраних видів бактерій до озону. Бродвотер, В.Т., Хен, Р.К. та Кінг, П.Х. Чутливість трьох вибраних видів бактерій до озону. Broadwater, WT, Hoehn, RC & King, PH 三种选定细菌对臭氧的敏感性。 Бродвотер, Вест-Таун, Хен, Р.К. та Кінг, Філіппін Broadwater, WT, Hoehn, RC & King, PH Чувствительность трьох вибраних бактерій до озону. Бродвотер, В.Т., Хен, Р.К. та Кінг, П.Х. Чутливість трьох вибраних бактерій до озону.твердження. мікроорганізм. 26(3), 391–393. https://doi.org/10.1128/am.26.3.391-393.1973 (1973).
Патіл, С., Вальдрамідіс, В.П., Карацас, К.А., Каллен, П.Дж. та Бурк, П. Оцінка механізму мікробного оксидативного стресу, спричиненого озоновою обробкою, через реакції мутантів Escherichia coli. Патіл, С., Вальдрамідіс, В.П., Карацас, К.А., Каллен, П.Дж. та Бурк, П. Оцінка механізму мікробного оксидативного стресу, спричиненого озоновою обробкою, через реакції мутантів Escherichia coli.Патіл, С., Вальдрамідіс, В.П., Карацас, К.А., Каллен, П.Дж. та Берк, П. Оцінка механізму мікробного оксидативного стресу шляхом обробки озоном з мутантних реакцій Escherichia coli. Патіл С., Вальдрамідіс В.П., Карацас К.А., Каллен П.Дж. та Бурк П.通过大肠杆菌突变体的反应评估臭氧处理的微生物氧化应激机制。 Патіл С., Вальдрамідіс В.П., Карацас К.А., Каллен П.Дж. та Бурк П.Патіл, С., Вальдрамідіс, В.П., Карацас, К.А., Каллен, П.Дж. та Бурк, П. Оцінка механізмів мікробного оксидативного стресу при обробці озоном через реакції мутантів Escherichia coli.J. Application. мікроорганізм. 111(1), 136-144. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2011.05021.x (2011).
Грін, К., Ву, Дж., Рікард, А. Г. та Сі, К. Оцінка здатності Acinetobacter baumannii утворювати біоплівки на шести різних біомедично значущих поверхнях. Грін, К., Ву, Дж., Рікард, А. Г. та Сі, К. Оцінка здатності Acinetobacter baumannii утворювати біоплівки на шести різних біомедично значущих поверхнях.Грін, К., Ву, Дж., Рікард, А. Х. та Сі, К. Оцінка здатності Acinetobacter baumannii утворювати біоплівки на шести різних біомедично значущих поверхнях. Грін, К., Ву, Дж., Рікард, А. Г. і Ксі, К.评估鲍曼不动杆菌在六种不同生物医学相关表面上形成生物膜的能力。 Greene, C., Wu, J., Rickard, AH & Xi, C. Оцінка здатності 鲍曼不动天生在六种 утворювати біоплівки на різних біомедичних поверхнях.Грін, К., Ву, Дж., Рікард, А. Х. та Сі, К. Оцінка здатності Acinetobacter baumannii утворювати біоплівки на шести різних біомедично значущих поверхнях.Райт. Застосування мікроорганізмів 63(4), 233-239. https://doi.org/10.1111/lam.12627 (2016).