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오염된 의료 환경은 다제내성(MDR) 유기체와 클로스트리디움 디피실레의 확산에 중요한 역할을 합니다. 본 연구의 목적은 유전체 장벽 방전(DBD) 플라즈마 반응기에서 생성된 오존이 반코마이신 내성 엔테로코쿠스 패칼리스(VRE), 카바페넴 내성 클렙시엘라 뉴모니아(CRE), 카바페넴 내성 녹농균(CRPA), 카바페넴 내성 아시네토박터 바우마니(CRAB) 및 클로스트리디움 디피실레 포자에 오염된 다양한 물질의 항균 효과에 미치는 영향을 평가하는 것입니다. VRE, CRE, CRPA, CRAB 및 클로스트리디움 디피실레 포자에 오염된 다양한 물질을 다양한 농도와 노출 시간으로 오존으로 처리했습니다. 원자간력 현미경(AFM)을 통해 오존 처리 후 박테리아의 표면 개질이 확인되었습니다. VRE와 CRAB에 500ppm의 오존을 15분간 적용했을 때, 스테인리스강, 직물, 목재에서 약 2 log10 이상의 감소가 관찰되었고, 유리와 플라스틱에서는 1~2 log10의 감소가 관찰되었습니다. 클로스트리디움 디피실레 포자는 다른 모든 생물체보다 오존에 대한 내성이 더 강한 것으로 나타났습니다. AFM에서 오존 처리 후 세균 세포가 부풀어 오르고 변형되었습니다. DBD 플라즈마 반응기에서 생성된 오존은 의료 관련 감염의 흔한 병원균으로 알려진 MDRO와 클로스트리디움 디피실레 포자에 대한 간단하고 유용한 제독 도구입니다.
다중 약물 내성(MDR) 유기체의 출현은 인간과 동물에서 항생제의 오용으로 인해 발생하며 세계보건기구(WHO)는 공중 보건에 대한 주요 위협으로 지적했습니다.1 특히 의료기관은 MRO의 출현과 확산에 점점 더 직면하고 있습니다. 주요 MRO는 메티실린 내성 황색포도상구균과 반코마이신 내성 엔테로코커스(VRE), 광범위 베타-락타마제 생성 엔테로박테리아(ESBL), 다중 약물 내성 녹농균, 다중 약물 내성 아시네토박터 바우마니, 카바페넴 내성 엔테로박터(CRE)입니다. 또한, 클로스트리디움 디피실레 감염은 의료 관련 설사의 주요 원인으로, 의료 시스템에 상당한 부담을 주고 있습니다. MDRO와 클로스트리디움 디피실레는 의료 종사자의 손, 오염된 환경 또는 사람 간에 직접 전파됩니다. 최근 연구에 따르면 의료 시설의 오염된 환경은 의료 종사자(HCW)가 오염된 표면과 접촉하거나 환자가 오염된 표면과 직접 접촉할 때 MDRO 및 C. difficile 전파에 중요한 역할을 하는 것으로 나타났습니다.3,4 의료 시설의 오염된 환경은 MLRO 및 C. difficile 감염 또는 식민지화 발생률을 감소시킵니다.5,6,7 항생제 내성 증가에 대한 전 세계적인 우려를 고려할 때 의료 시설의 오염 제거 방법 및 절차에 대한 더 많은 연구가 필요하다는 것이 분명합니다. 최근 비접촉식 단말 세척 방법, 특히 자외선(UV) 장비 또는 과산화수소 시스템이 유망한 오염 제거 방법으로 인식되고 있습니다. 그러나 이러한 시중에서 판매되는 UV 또는 과산화수소 장치는 비용이 많이 들 뿐만 아니라 UV 소독은 노출된 표면에만 효과적인 반면 과산화수소 플라즈마 소독은 다음 소독 주기 전에 비교적 긴 오염 제거 시간이 필요합니다.5.
오존은 잘 알려진 부식 방지 특성을 가지고 있으며 저렴하게 생산할 수 있습니다.8 인체 건강에 유해한 것으로 알려져 있지만, 빠르게 산소로 분해될 수 있습니다.8 유전체 장벽 방전(DBD) 플라즈마 반응기는 단연 가장 일반적인 오존 발생기입니다.9 DBD 장비를 사용하면 공기 중에 저온 플라즈마를 생성하여 오존을 생성할 수 있습니다. 지금까지 오존의 실제 사용은 주로 수영장 물, 식수, 하수 소독에 국한되어 왔습니다.10 여러 연구에서 의료 환경에서의 오존 사용 사례가 보고되었습니다.8,11
본 연구에서는 소형 DBD 플라즈마 오존 발생기를 사용하여 의료 환경에서 흔히 사용되는 다양한 물질에 접종된 경우에도 MDRO와 C. difficile의 살균 효과를 입증했습니다. 또한, 오존 처리된 세포의 원자간력 현미경(AFM) 이미지를 통해 오존 살균 과정을 규명했습니다.
균주는 다음의 임상 분리주에서 확보하였다: VRE(SCH 479 및 SCH 637), 카바페넴 내성 클렙시엘라 뉴모니아(CRE; SCH CRE-14 및 DKA-1), 카바페넴 내성 녹농균(CRPA; 54 및 83), 그리고 카바페넴 내성 세균. 세균: 녹농균(CRPA; 54 및 83). 내성 아시네토박터 바우마니(CRAB; F2487 및 SCH-511). 클로스트리디움 디피실레(C. difficile)는 질병관리본부 국립병원체배양연구소(NCCP 11840)에서 확보하였다. 2019년 한국 환자에서 분리하였으며, 다중좌위 염기서열 분석(multilocus sequence typing)을 통해 ST15에 속하는 것으로 확인되었다. VRE, CRE, CRPA 및 CRAB를 접종한 Brain Heart Infusion (BHI) Broth (BD, Sparks, MD, USA)를 잘 섞은 후 37°C에서 24시간 동안 배양했습니다.
C. difficile을 혈액 한천 배지에 48시간 동안 혐기적으로 도말했습니다. 그 후, 여러 개의 콜로니를 뇌심장 배지 5ml에 넣고 혐기성 조건에서 48시간 동안 배양했습니다. 그 후, 배양액을 흔들어 주고 95% 에탄올 5ml를 첨가한 후 다시 흔들어 주고 실온에서 30분 동안 방치했습니다. 3000g에서 20분 동안 원심분리한 후, 상층액을 버리고 포자와 사멸된 세균이 포함된 펠릿을 물 0.3ml에 현탁했습니다. 적절한 희석 후 세균 세포 현탁액을 혈액 한천 배지에 나선형으로 접종하여 생존 세포 수를 측정했습니다. 그람 염색을 통해 세균 구조의 85~90%가 포자임을 확인했습니다.
다음 연구는 의료 관련 감염을 유발하는 것으로 알려진 MDRO와 C. difficile 포자로 오염된 다양한 표면에 대한 오존 소독제의 효과를 조사하기 위해 수행되었습니다. 스테인리스 스틸, 직물(면), 유리, 플라스틱(아크릴), 목재(소나무)의 1cm x 1cm 크기의 샘플을 준비합니다. 사용 전 쿠폰을 소독합니다. 모든 샘플은 박테리아 감염 전에 고압 증기 멸균했습니다.
이 연구에서는 박테리아 세포를 다양한 기질 표면과 아가 플레이트에 도말했습니다. 그런 다음 패널을 밀폐된 챔버에서 일정 시간 동안 특정 농도로 오존에 노출시켜 살균했습니다. 그림 1은 오존 살균 장비의 사진입니다. DBD 플라즈마 반응기는 1mm 두께의 알루미나(유전체) 플레이트의 앞면과 뒷면에 천공되고 노출된 스테인리스 스틸 전극을 부착하여 제작했습니다. 천공 전극의 경우 개구부와 구멍 면적은 각각 3mm와 0.33mm였습니다. 각 전극은 직경 43mm의 원형입니다. 고전압 고주파 전원 공급 장치(GBS Elektronik GmbH Minipuls 2.2)를 사용하여 12.5kHz 주파수에서 약 8kV 피크 대 피크의 사인파 전압을 천공 전극에 인가하여 전극 가장자리에서 플라즈마를 생성했습니다. 천공 전극. 이 기술은 가스 살균 방식이기 때문에, 상부와 하부로 용량이 구분된 챔버에서 살균이 수행되며, 각 챔버에는 박테리아로 오염된 시료와 플라즈마 발생기가 각각 들어 있습니다. 상부 챔버에는 잔류 오존을 제거하고 배출하기 위한 두 개의 밸브 포트가 있습니다. 실험에 사용하기 전에, 플라즈마 설비를 가동한 후 실내 오존 농도의 시간 변화를 수은 램프의 253.65nm 스펙트럼선의 흡수 스펙트럼을 이용하여 측정했습니다.
(a) DBD 플라즈마 반응기에서 생성된 오존을 이용하여 다양한 재료의 박테리아를 살균하는 실험 장치 구성도, (b) 살균 챔버 내 오존 농도 및 플라즈마 생성 시간. 그림은 OriginPro 버전 9.0(OriginPro 소프트웨어, 미국 매사추세츠주 노샘프턴, https://www.originlab.com)을 사용하여 제작되었습니다.
먼저, 오존으로 한천 평판 배지에 놓인 세균 세포를 살균하고, 오존 농도와 처리 시간을 변경하면서 MDRO와 C. difficile의 오염 제거에 적절한 오존 농도와 처리 시간을 결정했습니다. 살균 과정에서 챔버는 먼저 주변 공기로 정화된 다음 플라즈마 장치를 켜서 오존으로 채웠습니다. 샘플을 미리 정해진 시간 동안 오존으로 처리한 후, 다이어프램 펌프를 사용하여 남아 있는 오존을 제거했습니다. 측정에는 24시간 동안 배양한 완전한 샘플(~ 108 CFU/ml)을 사용했습니다. 세균 세포 현탁액 샘플(20 μl)을 먼저 멸균 식염수로 10배로 연속 희석한 다음, 이 샘플을 챔버에서 오존으로 살균한 한천 평판 배지에 분배했습니다. 그 후, 오존에 노출된 샘플과 노출되지 않은 샘플로 구성된 반복 샘플을 37°C에서 24시간 동안 배양하고 콜로니를 세어 살균 효과를 평가했습니다.
또한, 상기 연구에서 정의된 살균 조건에 따라, 의료기관에서 일반적으로 사용되는 다양한 재질(스테인리스 스틸, 패브릭, 유리, 플라스틱 및 목재 쿠폰)의 쿠폰을 사용하여 MDRO 및 C. difficile에 대한 이 기술의 오염 제거 효과를 평가했습니다.완전한 24시간 배양액(~108 cfu/ml)을 사용했습니다.박테리아 세포 현탁액 샘플(20 μl)을 멸균 식염수로 10배로 연속 희석한 다음, 쿠폰을 이 희석된 배지에 담가 오염을 평가했습니다.희석 배지에 담근 후 꺼낸 샘플은 멸균 페트리 접시에 담아 실온에서 24시간 동안 건조했습니다.샘플 위에 페트리 접시 뚜껑을 덮고 조심스럽게 시험 챔버에 넣었습니다.페트리 접시에서 뚜껑을 제거하고 샘플을 500 ppm 오존에 15분 동안 노출시켰습니다.대조 샘플은 생물 안전 캐비닛에 넣고 오존에 노출시키지 않았습니다. 오존에 노출된 직후, 샘플과 비조사 샘플(즉, 대조군)을 멸균 식염수와 혼합하여 볼텍스 믹서를 사용하여 표면에서 박테리아를 분리했습니다.용출된 현탁액을 멸균 식염수로 10배로 연속 희석한 후 희석된 박테리아 수를 혈액 한천 평판 배지(호기성 박테리아의 경우) 또는 혐기성 혈액 한천 평판 배지(브루셀라균의 경우)에서 측정하고 37°C에서 24시간 동안 배양했습니다.또는 혐기성 조건에서 37°C에서 48시간 동안 두 번 배양하여 접종원의 초기 농도를 결정했습니다.노출되지 않은 대조군과 노출된 샘플 간의 박테리아 수 차이를 계산하여 시험 조건에서 박테리아 수의 로그 감소(즉, 살균 효율)를 제공했습니다.
생물학적 세포는 AFM 이미징 플레이트에 고정되어야 하므로 세포 크기보다 작은 거칠기 스케일을 가진 평평하고 균일한 조도를 가진 운모 디스크를 기판으로 사용합니다. 디스크의 직경과 두께는 각각 20mm와 0.21mm입니다. 세포를 표면에 단단히 고정시키기 위해 운모 표면을 폴리-L-리신(200µl)으로 코팅하여 양전하를 띠게 하고 세포막을 음전하로 만듭니다. 폴리-L-리신으로 코팅한 후, 운모 디스크를 1ml의 탈이온수(DI)로 3회 세척하고 하룻밤 동안 자연 건조했습니다. 그런 다음, 박테리아 세포를 폴리-L-리신으로 코팅된 운모 표면에 희석된 박테리아 용액을 투여하여 적용하고 30분간 방치한 후, 운모 표면을 1ml의 탈이온수로 세척했습니다.
샘플의 절반을 오존으로 처리하고, VRE, CRAB, C. difficile 포자가 포함된 운모판의 표면 형태를 AFM(XE-7, park systems)을 사용하여 시각화했습니다. AFM 작동 모드는 생물학적 세포 이미징에 일반적으로 사용되는 태핑 모드로 설정했습니다. 실험에는 비접촉 모드로 설계된 마이크로캔틸레버(OMCL-AC160TS, OLYMPUS Microscopy)를 사용했습니다. AFM 이미지는 0.5Hz의 프로브 스캔 속도를 기반으로 기록되었으며, 2048 x 2048 픽셀의 이미지 해상도를 얻었습니다.
DBD 플라즈마 반응기가 살균에 효과적인 조건을 확인하기 위해 MDRO(VRE, CRE, CRPA, CRAB)와 C. difficile을 모두 사용하여 오존 농도와 노출 시간을 변화시키는 일련의 실험을 수행했습니다.그림 1b는 플라즈마 장치를 켠 후 각 테스트 조건에 대한 오존 농도 시간 곡선을 보여줍니다. 농도는 대수적으로 증가하여 각각 1.5분과 2.5분 후에 300ppm과 500ppm에 도달했습니다. VRE를 사용한 예비 실험 결과, 박테리아를 효과적으로 살균하는 데 필요한 최소 오존 농도는 10분 동안 300ppm입니다. 따라서 다음 실험에서 MDRO와 C. difficile을 두 가지 다른 농도(300ppm과 500ppm)와 두 가지 다른 노출 시간(10분과 15분)의 오존에 노출시켰습니다. 각 오존 농도 및 노출 시간 설정에 따른 살균 효율을 계산하여 표 1에 나타내었다. 300ppm 또는 500ppm 오존에 10~15분간 노출시킨 결과, VRE가 전반적으로 2log10 이상 감소하였다. CRE를 이용한 이러한 높은 수준의 살균 효과는 300ppm 또는 500ppm 오존에 15분간 노출시킨 결과 달성되었다. 500ppm의 오존에 15분간 노출시키면 CRPA가 크게 감소합니다(> 7 log10). 500ppm의 오존에 15분간 노출시키면 CRPA가 크게 감소합니다(> 7 log10). Высокое снижение CRPA (> 7 log10) было достигнуто при воздействии 500 частей на миллион озона в течение 15 minут. 500ppm 오존에 15분간 노출시키면 CRPA가 크게 감소합니다(> 7 log10).暴露于500ppm 량은 15分钟后,可大幅降低CRPA (> 7 log10)입니다.暴露于500ppm 량은 15分钟后,可大幅降低CRPA (> 7 log10)입니다. Сучественное снижение CRPA (> 7 log10) после 15-minutного воздействия озона с концентрацией 500ppm. 500ppm 오존에 15분간 노출된 후 CRPA가 상당히 감소했습니다(> 7 log10).300ppm 오존에서는 CRAB 박테리아의 살균 효과가 미미합니다. 그러나 오존이 500ppm일 때는 1.5 log10 이상의 감소가 나타났습니다. 그러나 오존이 500ppm일 때는 1.5 log10 이상의 감소가 나타났습니다. однако при концентрации озона 500 частей на миллион наблудалось снижение > 1,5 log10. 그러나 오존 농도가 500ppm일 때는 1.5 log10 이상의 감소가 관찰되었습니다.然而，500ppm 臭氧下，减少了> 1.5 log10。然而，500ppm 臭氧下，减少了> 1.5 log10。 однако при онцентрации озона 500 частей на миллион наблудалось снижение >1,5 log10. 그러나 오존 농도가 500ppm에서는 1.5 log10 이상의 감소가 관찰되었습니다. C. difficile 포자를 300ppm 또는 500ppm 오존에 노출시킨 결과 2.5 log10 이상의 감소가 나타났습니다. C. difficile 포자를 300ppm 또는 500ppm 오존에 노출시킨 결과 2.5 log10 이상의 감소가 나타났습니다. C. difficile의 크기는 300 또는 500으로 100% 미만이며 2,5 log10보다 큽니다. C. difficile 포자를 300ppm 또는 500ppm 오존에 노출시키면 2.5 log10 이상의 감소가 발생합니다.将艰难梭菌孢子暴露于300 或500ppm 的臭氧中导致> 2.5 log10减少. 300 ~ 500ppm 량> 2.5 log10 减少。 C. difficile의 범위는 300 또는 500으로 100% 이상이며 2,5 log10 이상입니다. C. difficile 포자를 300ppm 또는 500ppm 오존에 노출시키면 2.5 log10 이상의 감소가 발생합니다.
위의 실험에 기초하여, 15분 동안 500ppm 오존의 투여량에서 박테리아를 불활성화하는 데 충분한 요건이 발견되었습니다.VRE, CRAB 및 C. difficile 포자는 병원에서 일반적으로 사용되는 스테인리스 스틸, 직물, 유리, 플라스틱 및 목재를 포함한 다양한 재료에 대한 오존의 살균 효과에 대해 테스트되었습니다.살균 효율은 표 2에 나와 있습니다.테스트 유기체는 두 번 평가되었습니다.VRE 및 CRAB에서 오존은 유리 및 플라스틱 표면에 덜 효과적이었지만 스테인리스 스틸, 직물 및 목재 표면에서 약 2배 이상의 log10 감소가 관찰되었습니다.C. difficile 포자는 테스트된 다른 모든 유기체보다 오존 처리에 더 강한 것으로 나타났습니다.VRE, CRAB 및 C. difficile에 대한 다양한 재료의 살균 효과에 대한 오존의 효과를 통계적으로 연구하기 위해 t-테스트를 ​​사용하여 다양한 재료에서 대조군과 실험군의 밀리리터당 CFU 수 간의 차이를 비교했습니다(그림 2). 균주들은 통계적으로 유의미한 차이를 보였지만, VRE와 CRAB 포자에서 C. difficile 포자보다 더 유의미한 차이가 관찰되었습니다.
다양한 물질의 박테리아 살균에 대한 오존 효과의 산점도 (a) VRE, (b) CRAB 및 (c) C. difficile.
오존 가스 살균 과정을 자세히 연구하기 위해 오존 처리 및 미처리 VRE, CRAB, 그리고 C. difficile 포자에 대해 AFM 이미징을 수행했습니다. 그림 3a, c, e는 각각 미처리 VRE, CRAB, 그리고 C. difficile 포자의 AFM 이미지를 보여줍니다. 3D 이미지에서 볼 수 있듯이 세포는 매끄럽고 손상되지 않았습니다. 그림 3b, d, f는 오존 처리 후 VRE, CRAB, 그리고 C. difficile 포자를 보여줍니다. 모든 실험군에서 세포의 전반적인 크기가 감소했을 뿐만 아니라, 오존 노출 후 표면이 눈에 띄게 거칠어졌습니다.
500 ppm 오존으로 15분간 처리한 미처리 VRE, MRAB 및 C. difficile 포자(a, c, e)와 (b, d, f)의 AFM 이미지. 이미지는 Park Systems XEI 버전 5.1.6(XEI Software, 수원, 한국; https://www.parksystems.com/102-products/park-xe-bio)을 사용하여 생성했습니다.
본 연구는 DBD 플라즈마 장비에서 생성된 오존이 의료 관련 감염의 주요 원인으로 알려진 MDRO와 C. difficile 포자를 효과적으로 살균하는 능력을 입증했습니다. 또한, MDRO와 C. difficile 포자에 의한 환경 오염이 의료 관련 감염의 원인이 될 수 있다는 점을 고려할 때, 오존의 살균 효과는 병원 환경에서 주로 사용되는 재료에 대해 효과적인 것으로 나타났습니다. 스테인리스 스틸, 천, 유리, 플라스틱, 목재 등의 재료를 MDRO와 C. difficile 포자로 인위적으로 오염시킨 후 DBD 플라즈마 장비를 사용하여 살균 시험을 수행했습니다. 그 결과, 재료에 따라 살균 효과는 다르지만 오존의 살균 능력은 매우 우수했습니다.
병실에서 자주 접촉하는 물건은 정기적인 저수준 소독이 필요합니다. 이러한 물건을 소독하는 표준 방법은 4차 암모늄 화합물과 같은 액체 소독제를 이용한 수동 세척입니다.13. 소독제 사용 권장 사항을 엄격히 준수하더라도 MPO는 기존의 환경 세척(일반적으로 수동 세척)으로 제거하기 어렵습니다.14. 따라서 비접촉 방식과 같은 새로운 기술이 필요합니다. 따라서 과산화수소와 오존을 포함한 기체 소독제에 대한 관심이 높아지고 있습니다.10. 기체 소독제의 장점은 기존의 수동 세척으로는 닿을 수 없는 곳과 물건까지 도달할 수 있다는 것입니다. 과산화수소는 최근 의료 환경에서 사용되고 있지만, 과산화수소 자체는 독성이 있어 엄격한 취급 절차에 따라 취급해야 합니다. 과산화수소를 이용한 플라즈마 멸균은 다음 멸균 주기 전에 비교적 긴 퍼지 시간이 필요합니다. 반면, 오존은 광범위 항균제로 작용하여 다른 소독제에 내성이 있는 박테리아와 바이러스에 효과적입니다.8,11,15. 또한, 오존은 대기에서 저렴하게 생산할 수 있으며, 결국 산소로 분해되기 때문에 환경에 유해한 영향을 미칠 수 있는 추가적인 독성 화학 물질을 필요로 하지 않습니다. 그러나 오존이 소독제로 널리 사용되지 않는 이유는 다음과 같습니다. 오존은 인체 건강에 유해하여 8시간 이상 농도가 평균 0.07ppm을 넘지 않기 때문입니다.16 따라서 주로 배기가스 정화용으로 오존 살균기가 개발되어 시판되고 있습니다. 또한, 살균 후 오존 가스를 흡입하여 불쾌한 냄새를 유발할 수 있습니다.5,8 오존은 의료기관에서 활발하게 사용되지 않았습니다. 그러나 오존은 적절한 환기 절차를 통해 멸균실에서 안전하게 사용할 수 있으며, 촉매 변환기를 사용하면 제거 속도를 크게 높일 수 있습니다. 본 연구에서는 플라즈마 오존 살균기를 의료 환경에서 소독에 사용할 수 있음을 보여줍니다. 높은 살균 성능, 간편한 조작, 그리고 입원 환자를 위한 빠른 서비스를 제공하는 장치를 개발했습니다. 또한, 추가 비용 없이 주변 공기를 이용하는 간단한 살균 장치를 개발했습니다. 현재까지 MDRO 불활성화에 필요한 최소 오존 요구량에 대한 정보는 부족합니다. 본 연구에 사용된 장비는 설치가 간편하고 작동 시간이 짧아 빈번한 장비 살균에 유용할 것으로 예상됩니다.
오존의 살균 작용 기전은 아직 완전히 밝혀지지 않았습니다. 여러 연구에서 오존이 세균 세포막을 손상시켜 세포 내 누출 및 최종 세포 용해를 유발한다는 것이 밝혀졌습니다.17,18 오존은 티올기와 반응하여 세포의 효소 활성을 방해하고 핵산의 퓨린 및 피리미딘 염기를 변형시킬 수 있습니다. 본 연구에서는 오존 처리 전후 VRE, CRAB, C. difficile 포자의 형태를 시각화하여 크기가 감소했을 뿐만 아니라 표면이 상당히 거칠어졌음을 확인했습니다. 이는 최외곽 막의 손상 또는 부식을 시사합니다. 오존 가스로 인한 내부 물질은 강력한 산화력을 가지고 있습니다. 이러한 손상은 세포 변화의 심각도에 따라 세포 불활성화로 이어질 수 있습니다.
C. difficile 포자는 병실에서 제거하기 어렵습니다. 포자는 10,20 떨어진 곳에 남아 있습니다. 또한 이 연구에서 500ppm 오존에서 15분간 한천 평판 배지에서 박테리아 수의 최대 대수적 10배 감소는 2.73이었지만 C. difficile 포자를 함유한 다양한 물질에 대한 오존의 살균 효과는 감소했습니다. 따라서 의료 환경에서 C. difficile 감염을 줄이기 위한 다양한 전략을 고려할 수 있습니다. 격리된 C. difficile 챔버에서만 사용하는 경우 오존 처리의 노출 시간과 강도를 조정하는 것도 유용할 수 있습니다. 또한 오존 오염 제거 방법은 소독제와 항균 전략을 사용한 기존의 수동 세척을 완전히 대체할 수 없으며 C. difficile를 제어하는 ​​데 매우 효과적일 수도 있다는 점을 명심해야 합니다. 이 연구에서 소독제로서 오존의 효과는 MPO 유형에 따라 달랐습니다. 효능은 성장 단계, 세포벽, 그리고 복구 메커니즘의 효율성 등 여러 요인에 따라 달라질 수 있습니다.21,22 각 물질 표면에서 오존의 살균 효과가 다른 이유는 바이오필름 형성 때문일 수 있습니다. 이전 연구에서는 E. faecium과 E. faecium이 바이오필름 형태로 존재할 때 환경 저항성을 증가시킨다는 것이 밝혀졌습니다.23, 24, 25. 그러나 이번 연구는 오존이 MDRO와 C. difficile 포자에 대해 유의미한 살균 효과를 나타냄을 보여줍니다.
본 연구의 한계점은 복원 후 오존 유지 효과를 평가했다는 점입니다. 이로 인해 생존 가능한 박테리아 세포의 수가 과대평가될 수 있습니다.
본 연구는 병원 환경에서 오존 소독제의 효과를 평가하기 위해 수행되었지만, 모든 병원 환경에 일반화하기는 어렵습니다. 따라서 실제 병원 환경에서 이 DBD 오존 살균기의 적용 가능성과 적합성을 조사하기 위한 추가 연구가 필요합니다.
DBD 플라즈마 반응기에서 생성되는 오존은 MDRO와 C. difficile에 대한 간단하고 유용한 제독제가 될 수 있습니다. 따라서 오존 처리는 병원 환경 소독의 효과적인 대안으로 고려될 수 있습니다.
현재 연구에서 사용 및/또는 분석된 데이터 세트는 합리적인 요청이 있는 경우 각 저자로부터 제공받을 수 있습니다.
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