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Un entorno de atención médica contaminado desempeña un papel importante en la propagación de organismos resistentes a múltiples fármacos (MDR) y C. difficile. El propósito de este estudio fue evaluar el efecto del ozono producido por un reactor de plasma de descarga de barrera dieléctrica (DBD) sobre la acción de Enterococcus faecalis resistente a la vancomicina (VRE), Klebsiella pneumoniae resistente a los carbapenémicos (CRE), Efectos antibacterianos de diferentes materiales contaminados con Pseudomonas spp. Pseudomonas aeruginosa (CRPA), Acinetobacter baumannii resistente a los carbapenémicos (CRAB) y esporas de Clostridium difficile. Varios materiales contaminados con VRE, CRE, CRPA, CRAB y esporas de C. difficile se trataron con ozono a diversas concentraciones y tiempos de exposición. La microscopía de fuerza atómica (AFM) demostró la modificación de la superficie de las bacterias después del tratamiento con ozono. Al aplicar una dosis de 500 ppm de ozono a ERV y CRAB durante 15 minutos, se observó una disminución de aproximadamente 2 log10 o más en acero inoxidable, tela y madera, y de 1 a 2 log10 en vidrio y plástico. Se observó que las esporas de C. difficile eran más resistentes al ozono que todos los demás organismos analizados. En el AFM, tras el tratamiento con ozono, las células bacterianas se hincharon y deformaron. El ozono producido por el reactor de plasma DBD es una herramienta de descontaminación sencilla y valiosa para MDR y esporas de C. difficile, patógenos comunes de infecciones asociadas a la atención médica.
La aparición de organismos multirresistentes a los fármacos (MDR) es causada por el mal uso de antibióticos en humanos y animales y ha sido identificada por la Organización Mundial de la Salud (OMS) como una amenaza importante para la salud pública1. En particular, las instituciones de salud se enfrentan cada vez más a la aparición y propagación de MRO. Los principales MRO son Staphylococcus aureus resistente a la meticilina y enterococos resistentes a la vancomicina (VRE), enterobacterias productoras de betalactamasas de espectro extendido (BLEE), Pseudomonas aeruginosa multirresistente, Acinetobacter baumannii multirresistente y Enterobacter resistente a carbapenémicos (CRE). Además, la infección por Clostridium difficile es una de las principales causas de diarrea asociada a la atención médica, lo que supone una carga significativa para el sistema de atención médica. MDR y C. difficile se transmiten a través de las manos de los trabajadores de la salud, entornos contaminados o directamente de persona a persona. Estudios recientes han demostrado que los entornos contaminados en entornos de atención médica desempeñan un papel importante en la transmisión de MDRO y C. difficile cuando los trabajadores de la salud (HCW) entran en contacto con superficies contaminadas o cuando los pacientes entran en contacto directo con superficies contaminadas 3,4. Los entornos contaminados en entornos de atención médica reducen la incidencia de infección o colonización por MLRO y C. difficile5,6,7. Dada la preocupación mundial por el aumento de la resistencia a los antimicrobianos, es evidente que se necesita más investigación sobre los métodos y procedimientos para la descontaminación en entornos de atención médica. Recientemente, los métodos de limpieza terminal sin contacto, especialmente los equipos ultravioleta (UV) o los sistemas de peróxido de hidrógeno, han sido reconocidos como métodos prometedores de descontaminación. Sin embargo, estos dispositivos UV o de peróxido de hidrógeno disponibles en el mercado no solo son caros, sino que la desinfección UV solo es efectiva en superficies expuestas, mientras que la desinfección con plasma de peróxido de hidrógeno requiere un tiempo de descontaminación relativamente largo antes del siguiente ciclo de desinfección5.
El ozono posee conocidas propiedades anticorrosivas y su producción es económica8. También se sabe que es tóxico para la salud humana, pero puede descomponerse rápidamente en oxígeno8. Los reactores de plasma de descarga de barrera dieléctrica (DBD) son, con diferencia, los generadores de ozono más comunes9. Los equipos DBD permiten crear plasma de baja temperatura en el aire y producir ozono. Hasta ahora, el uso práctico del ozono se ha limitado principalmente a la desinfección del agua de piscinas, el agua potable y las aguas residuales10. Diversos estudios han reportado su uso en entornos sanitarios8,11.
En este estudio, utilizamos un generador compacto de ozono de plasma DBD para demostrar su eficacia en la eliminación de MDR y C. difficile, incluso inoculados en diversos materiales de uso común en entornos médicos. Además, el proceso de esterilización con ozono se ha dilucidado mediante imágenes de microscopía de fuerza atómica (AFM) de células tratadas con ozono.
Las cepas se obtuvieron de aislados clínicos de: VRE (SCH 479 y SCH 637), Klebsiella pneumoniae resistente a carbapenémicos (CRE; SCH CRE-14 y DKA-1), Pseudomonas aeruginosa resistente a carbapenémicos (CRPA; 54 y 83) y bacterias resistentes a carbapenémicos. bacterias Pseudomonas aeruginosa (CRPA; 54 y 83). Acinetobacter baumannii resistente (CRAB; F2487 y SCH-511). C. difficile se obtuvo de la Colección Nacional de Cultivos de Patógenos (NCCP 11840) de la Agencia de Corea para el Control y la Prevención de Enfermedades. Se aisló de un paciente en Corea del Sur en 2019 y se encontró que pertenecía a ST15 mediante la tipificación de secuencias de locus múltiples. El caldo de infusión de cerebro y corazón (BHI) (BD, Sparks, MD, EE. UU.) inoculado con VRE, CRE, CRPA y CRAB se mezcló bien y se incubó a 37 °C durante 24 horas.
C. difficile se sembró en anaerobiosis en agar sangre durante 48 horas. Posteriormente, se añadieron varias colonias a 5 ml de caldo cerebro-corazón y se incubaron en condiciones anaerobias durante 48 horas. Posteriormente, se agitó el cultivo, se añadieron 5 ml de etanol al 95%, se volvió a agitar y se dejó a temperatura ambiente durante 30 minutos. Tras centrifugar a 3000 g durante 20 minutos, se descartó el sobrenadante y se suspendió el sedimento con esporas y bacterias muertas en 0,3 ml de agua. Se contaron las células viables mediante la siembra en espiral de la suspensión bacteriana en placas de agar sangre tras la dilución adecuada. La tinción de Gram confirmó que entre el 85% y el 90% de las estructuras bacterianas eran esporas.
El siguiente estudio se realizó para investigar los efectos del ozono como desinfectante en diversas superficies contaminadas con esporas de MDR y C. difficile, conocidas por causar infecciones asociadas a la atención médica. Prepare muestras de acero inoxidable, tela (algodón), vidrio, plástico (acrílico) y madera (pino) de un centímetro por un centímetro. Desinfecte los cupones antes de usarlos. Todas las muestras se esterilizaron en autoclave antes de la infección bacteriana.
En este estudio, se extendieron células bacterianas sobre diversas superficies de sustrato, así como sobre placas de agar. Los paneles se esterilizaron posteriormente exponiéndolos a ozono durante un período de tiempo determinado y a una concentración determinada en una cámara sellada. La figura 1 muestra una fotografía del equipo de esterilización por ozono. Los reactores de plasma DBD se fabricaron fijando electrodos de acero inoxidable perforados y expuestos a la parte frontal y posterior de placas de alúmina (dieléctrica) de 1 mm de espesor. Para los electrodos perforados, el área de apertura y del orificio fue de 3 mm y 0,33 mm, respectivamente. Cada electrodo tiene una forma redonda con un diámetro de 43 mm. Se utilizó una fuente de alimentación de alta tensión y alta frecuencia (GBS Elektronik GmbH Minipuls 2.2) para aplicar una tensión sinusoidal de aproximadamente 8 kV pico a pico a una frecuencia de 12,5 kHz a los electrodos perforados para generar plasma en los bordes de los electrodos. electrodos perforados. Dado que la tecnología es un método de esterilización por gas, la esterilización se lleva a cabo en una cámara dividida en un compartimento superior e inferior, que contiene muestras contaminadas con bacterias y generadores de plasma, respectivamente. El compartimento superior cuenta con dos válvulas para eliminar y purgar el ozono residual. Antes de su uso en el experimento, se midió la variación temporal de la concentración de ozono en la sala tras el encendido de la instalación de plasma, según el espectro de absorción de la línea espectral de 253,65 nm de una lámpara de mercurio.
(a) Esquema de un montaje experimental para la esterilización de bacterias en diversos materiales mediante ozono generado en el reactor de plasma DBD, y (b) concentración de ozono y tiempo de generación de plasma en la cámara de esterilización. La figura se elaboró ​​con OriginPro versión 9.0 (software OriginPro, Northampton, MA, EE. UU.; https://www.originlab.com).
Primero, mediante la esterilización de células bacterianas colocadas en placas de agar con ozono, mientras se modificaba la concentración de ozono y el tiempo de tratamiento, se determinaron la concentración de ozono y el tiempo de tratamiento adecuados para la descontaminación de MDR y C. difficile. Durante el proceso de esterilización, la cámara se purga primero con aire ambiente y luego se llena con ozono encendiendo la unidad de plasma. Después de que las muestras se hayan tratado con ozono durante un período de tiempo predeterminado, se utiliza una bomba de diafragma para eliminar el ozono restante. Las mediciones utilizaron una muestra de un cultivo completo de 24 horas (~ 108 UFC/ml). Las muestras de suspensiones de células bacterianas (20 μl) primero se diluyeron en serie diez veces con solución salina estéril, y luego estas muestras se distribuyeron en placas de agar esterilizadas con ozono en la cámara. Después de eso, muestras repetidas consistentes en muestras expuestas y no expuestas al ozono se incubaron a 37 °C durante 24 horas y se contaron las colonias para evaluar la efectividad de la esterilización.
Además, de acuerdo con las condiciones de esterilización definidas en el estudio anterior, se evaluó el efecto de descontaminación de esta tecnología en MDRO y C. difficile utilizando cupones de varios materiales (acero inoxidable, tela, vidrio, plástico y cupones de madera) comúnmente utilizados en instituciones médicas. Se utilizaron cultivos completos de 24 horas (~108 ufc/ml). Las muestras de suspensión de células bacterianas (20 μl) se diluyeron en serie diez veces con solución salina estéril y luego los cupones se sumergieron en estos caldos diluidos para evaluar la contaminación. Las muestras extraídas después de la inmersión en el caldo de dilución se colocaron en placas de Petri estériles y se secaron a temperatura ambiente durante 24 horas. Coloque la tapa de la placa de Petri sobre la muestra y colóquela cuidadosamente en la cámara de prueba. Retire la tapa de la placa de Petri y exponga la muestra a 500 ppm de ozono durante 15 minutos. Las muestras de control se colocaron en una cabina de seguridad biológica y no se expusieron al ozono. Inmediatamente después de la exposición al ozono, las muestras y las muestras no irradiadas (es decir, los controles) se mezclaron con solución salina estéril utilizando un mezclador vórtex para aislar las bacterias de la superficie. La suspensión eluida se diluyó en serie 10 veces con solución salina estéril, después de lo cual se determinó el número de bacterias diluidas en placas de agar sangre (para bacterias aeróbicas) o placas de agar sangre anaeróbicas para Brucella (para Clostridium difficile) y se incubaron a 37 °C durante 24 horas. o bajo condiciones anaeróbicas durante 48 horas a 37 °C por duplicado para determinar la concentración inicial del inóculo. La diferencia en los recuentos bacterianos entre los controles no expuestos y las muestras expuestas se calculó para dar una reducción logarítmica en los recuentos bacterianos (es decir, la eficiencia de esterilización) bajo las condiciones de prueba.
Las células biológicas deben inmovilizarse en una placa de imágenes AFM; por lo tanto, se utiliza como sustrato un disco de mica plano y uniformemente rugoso con una escala de rugosidad menor que el tamaño celular. El diámetro y el grosor de los discos fueron de 20 mm y 0,21 mm, respectivamente. Para anclar firmemente las células a la superficie, la superficie de la mica se recubre con poli-L-lisina (200 µl), lo que la carga positivamente y la membrana celular negativamente. Después del recubrimiento con poli-L-lisina, los discos de mica se lavaron 3 veces con 1 ml de agua desionizada (DI) y se secaron al aire durante la noche. Luego, las células bacterianas se aplicaron a la superficie de mica recubierta con poli-L-lisina mediante la dosificación de una solución bacteriana diluida, se dejó reposar durante 30 min y, a continuación, la superficie de mica se lavó con 1 ml de agua desionizada.
La mitad de las muestras se trataron con ozono y la morfología superficial de las placas de mica cargadas con esporas de VRE, CRAB y C. difficile se visualizó mediante AFM (XE-7, Park Systems). El modo de operación del AFM está configurado en modo de golpeteo, un método común para la obtención de imágenes de células biológicas. En los experimentos, se utilizó un microcantilever diseñado para el modo sin contacto (OMCL-AC160TS, OLYMPUS Microscopy). Las imágenes de AFM se registraron con una frecuencia de barrido de sonda de 0,5 Hz, lo que resultó en una resolución de imagen de 2048 × 2048 píxeles.
Para determinar las condiciones bajo las cuales los reactores de plasma DBD son efectivos para la esterilización, realizamos una serie de experimentos usando tanto MDRO (VRE, CRE, CRPA y CRAB) como C. difficile para variar la concentración de ozono y el tiempo de exposición. En la fig. 1b se muestra la curva de concentración de ozono-tiempo para cada condición de prueba después de encender el dispositivo de plasma. La concentración aumentó logarítmicamente, alcanzando 300 y 500 ppm después de 1,5 y 2,5 minutos, respectivamente. Las pruebas preliminares con VRE han demostrado que el mínimo requerido para descontaminar eficazmente las bacterias es 300 ppm de ozono durante 10 minutos. Por lo tanto, en los siguientes experimentos, MDRO y C. difficile se expusieron a ozono en dos concentraciones diferentes (300 y 500 ppm) y en dos tiempos de exposición diferentes (10 y 15 minutos). La eficiencia de esterilización para cada dosis de ozono y tiempo de exposición se calculó y se muestra en la Tabla 1. La exposición a 300 o 500 ppm de ozono durante 10 a 15 minutos resultó en una reducción general de ERV de 2 o más log10. Este alto nivel de eliminación bacteriana con CRE se logró con 15 minutos de exposición a 300 o 500 ppm de ozono. Se logró una alta reducción de CRPA (> 7 log10) con la exposición a 500 ppm de ozono durante 15 minutos. Se logró una alta reducción de CRPA (> 7 log10) con la exposición a 500 ppm de ozono durante 15 minutos. Высокое снижение CRPA (> 7 log10) se distribuye por 500 cajas por millón de ozono en una técnica de 15 minutos. Se logró una alta reducción de CRPA (> 7 log10) con la exposición a 500 ppm de ozono durante 15 minutos.500 ppm, 15 veces, CRPA (> 7 log10).500 ppm, 15 veces, CRPA (> 7 log10). La duración máxima de la CRPA (> 7 log10) es de 15 minutos de ozono con una concentración de 500 ppm. Reducción significativa de CRPA (> 7 log10) después de 15 minutos de exposición a 500 ppm de ozono.Muerte insignificante de bacterias CRAB a 300 ppm de ozono; Sin embargo, a 500 ppm de ozono, hubo una reducción de > 1,5 log10. Sin embargo, a 500 ppm de ozono, hubo una reducción de > 1,5 log10. однако при концентрации озона 500 частей на миллион наблюдалось снижение > 1,5 log10. Sin embargo, a una concentración de ozono de 500 ppm, se observó una disminución de >1,5 log10.Por ejemplo, a 500 ppm, aproximadamente a 1,5 log10.Por ejemplo, a 500 ppm, aproximadamente a 1,5 log10. Однако при концентрации озона 500 частей на миллион наблюдалось снижение >1,5 log10. Sin embargo, a una concentración de ozono de 500 ppm, se observó una disminución de >1,5 log10. La exposición de las esporas de C. difficile a 300 o 500 ppm de ozono resultó en una reducción de > 2,5 log10. La exposición de las esporas de C. difficile a 300 o 500 ppm de ozono resultó en una reducción de > 2,5 log10. La fuente de alimentación de C. difficile es una cantidad de 300 o 500 millones de libras por cada cantidad > 2,5 log10. La exposición de esporas de C. difficile a 300 o 500 ppm de ozono resultó en reducciones de >2,5 log10.将艰难梭菌孢子暴露于300 或500 ppm 的臭氧中导致> 2,5 log10 减少。 300 或500 ppm 的臭氧中导致> 2,5 log10 减少。 Las bacterias de C. difficile contienen entre 300 y 500 millones de libras por cada cantidad >2,5 log10. La exposición de esporas de C. difficile a 300 o 500 ppm de ozono resultó en reducciones de >2,5 log10.
Con base en los experimentos anteriores, se encontró un requerimiento suficiente para inactivar bacterias a una dosis de 500 ppm de ozono durante 15 minutos. Se han probado las esporas de VRE, CRAB y C. difficile para el efecto germicida del ozono en una variedad de materiales que incluyen acero inoxidable, tela, vidrio, plástico y madera comúnmente utilizados en hospitales. Su eficiencia de esterilización se muestra en la Tabla 2. Los organismos de prueba se evaluaron dos veces. En VRE y CRAB, el ozono fue menos efectivo en superficies de vidrio y plástico, aunque se observó una reducción log10 de aproximadamente un factor de 2 o más en superficies de acero inoxidable, tela y madera. Se encontró que las esporas de C. difficile eran más resistentes al tratamiento con ozono que todos los demás organismos probados. Para estudiar estadísticamente el efecto del ozono en el efecto letal de diferentes materiales contra VRE, CRAB y C. difficile, se utilizaron pruebas t para comparar las diferencias entre el número de UFC por mililitro en los grupos de control y experimentales en diferentes materiales (Fig. 2). Las cepas mostraron diferencias estadísticamente significativas, pero se observaron diferencias más significativas para las esporas de VRE y CRAB que para las esporas de C. difficile.
Diagrama de dispersión de los efectos del ozono sobre la eliminación bacteriana de diversos materiales (a) VRE, (b) CRAB y (c) C. difficile.
Se obtuvieron imágenes AFM de esporas de VRE, CRAB y C. difficile tratadas y no tratadas con ozono para estudiar en detalle el proceso de esterilización con ozono. Las figuras 3a, c y e muestran imágenes AFM de esporas de VRE, CRAB y C. difficile no tratadas, respectivamente. Como se observa en las imágenes 3D, las células están lisas e intactas. Las figuras 3b, d y f muestran esporas de VRE, CRAB y C. difficile tras el tratamiento con ozono. No solo se observó una disminución en el tamaño general de todas las células analizadas, sino que su superficie se volvió notablemente más rugosa tras la exposición al ozono.
Imágenes de AFM de esporas de VRE, MRAB y C. difficile sin tratar (a, c, e) y (b, d, f) tratadas con 500 ppm de ozono durante 15 min. Las imágenes se obtuvieron con Park Systems XEI versión 5.1.6 (XEI Software, Suwon, Corea; https://www.parksystems.com/102-products/park-xe-bio).
Nuestra investigación muestra que el ozono producido por el equipo de plasma DBD tiene la capacidad de descontaminar eficazmente las esporas de MDRO y C. difficile, conocidas como causas principales de infecciones asociadas a la atención médica. Además, en nuestro estudio, dado que la contaminación ambiental con esporas de MDRO y C. difficile puede ser una fuente de infecciones asociadas a la atención médica, se observó que el efecto germicida del ozono era eficaz en materiales utilizados principalmente en entornos hospitalarios. Se realizaron pruebas de descontaminación con el equipo de plasma DBD tras la contaminación artificial de materiales como acero inoxidable, tela, vidrio, plástico y madera con esporas de MDRO y C. difficile. Como resultado, aunque el efecto de descontaminación varía según el material, la capacidad de descontaminación del ozono es notable.
Los objetos que se tocan con frecuencia en las habitaciones de hospital requieren una desinfección rutinaria de bajo nivel. El método estándar para descontaminar estos objetos es la limpieza manual con un desinfectante líquido, como un compuesto de amonio cuaternario¹³. Incluso siguiendo estrictamente las recomendaciones de uso de desinfectantes, el MPO es difícil de eliminar mediante la limpieza ambiental tradicional (generalmente manual)¹⁴. Por lo tanto, se requieren nuevas tecnologías, como los métodos sin contacto. En consecuencia, ha surgido interés en los desinfectantes gaseosos, como el peróxido de hidrógeno y el ozono¹⁰. La ventaja de los desinfectantes gaseosos es que pueden alcanzar lugares y objetos a los que los métodos manuales tradicionales no pueden acceder. El peróxido de hidrógeno se ha utilizado recientemente en entornos médicos; sin embargo, el peróxido de hidrógeno en sí mismo es tóxico y debe manipularse siguiendo estrictos procedimientos de manipulación. La esterilización por plasma con peróxido de hidrógeno requiere un tiempo de purga relativamente largo antes del siguiente ciclo de esterilización. En cambio, el ozono actúa como un agente antibacteriano de amplio espectro, eficaz contra bacterias y virus resistentes a otros desinfectantes^8,11,15. Además, el ozono se puede producir de forma económica a partir del aire atmosférico y no requiere sustancias químicas tóxicas adicionales que puedan dejar una huella dañina en el medio ambiente, ya que finalmente se descompone en oxígeno. Sin embargo, la razón por la que el ozono no se usa ampliamente como desinfectante es la siguiente: el ozono es tóxico para la salud humana, por lo que su concentración no supera las 0,07 ppm en promedio durante más de 8 horas¹⁶, por lo que se han desarrollado y comercializado esterilizadores de ozono, principalmente para la limpieza de gases de escape. También es posible inhalar el gas y producir un olor desagradable después de la descontaminación^5,8. El ozono no se utilizaba activamente en instituciones médicas. Sin embargo, el ozono se puede usar de forma segura en cámaras de esterilización con procedimientos de ventilación adecuados, y su eliminación se puede acelerar considerablemente mediante el uso de un convertidor catalítico. En este estudio, demostramos que los esterilizadores de ozono de plasma se pueden utilizar para la desinfección en entornos sanitarios. Hemos desarrollado un dispositivo con alta capacidad de esterilización, fácil manejo y servicio rápido para pacientes hospitalizados. Además, hemos desarrollado una unidad de esterilización sencilla que utiliza aire ambiente sin coste adicional. Hasta la fecha, no existe suficiente información sobre los requisitos mínimos de ozono para la inactivación de MDR. El equipo utilizado en nuestro estudio es fácil de instalar y tiene un tiempo de funcionamiento corto, por lo que se espera que sea útil para la esterilización frecuente de equipos.
El mecanismo de la acción bactericida del ozono no está completamente claro. Varios estudios han demostrado que el ozono daña las membranas celulares bacterianas, lo que provoca fugas intracelulares y, finalmente, lisis celular17,18. El ozono puede interferir con la actividad enzimática celular al reaccionar con grupos tiol y puede modificar las bases púricas y pirimidínicas en los ácidos nucleicos. Este estudio visualizó la morfología de las esporas de VRE, CRAB y C. difficile antes y después del tratamiento con ozono y descubrió que no solo disminuyeron de tamaño, sino que también se volvieron significativamente más rugosas en la superficie, lo que indica daño o corrosión de la membrana más externa. y los materiales internos debido al gas ozono tiene una fuerte capacidad oxidante. Este daño puede conducir a la inactivación celular, dependiendo de la gravedad de los cambios celulares.
Las esporas de C. difficile son difíciles de eliminar de las habitaciones de los hospitales. Las esporas permanecen en los lugares donde se desprenden 10,20. Además, en este estudio, aunque la reducción logarítmica máxima de 10 veces en el número de bacterias en placas de agar a 500 ppm de ozono durante 15 minutos fue de 2,73, el efecto bactericida del ozono en varios materiales que contienen esporas de C. difficile se ha reducido. Por lo tanto, se pueden considerar varias estrategias para reducir la infección por C. difficile en entornos de atención médica. Para uso en cámaras aisladas de C. difficile únicamente, también puede ser útil ajustar el tiempo de exposición y la intensidad del tratamiento con ozono. Además, debemos tener en cuenta que el método de descontaminación con ozono no puede reemplazar por completo la limpieza manual convencional con desinfectantes y estrategias antimicrobianas, y también puede ser muy eficaz para controlar C. difficile 5 . En este estudio, la eficacia del ozono como desinfectante varió para diferentes tipos de MPO. La eficacia puede depender de varios factores, como la etapa de crecimiento, la pared celular y la eficiencia de los mecanismos de reparación21,22. El diferente efecto esterilizante del ozono en la superficie de cada material podría deberse a la formación de una biopelícula. Estudios previos han demostrado que E. faecium y E. faecium aumentan la resistencia ambiental cuando se presentan como biopelículas23, 24, 25. Sin embargo, este estudio demuestra que el ozono tiene un efecto bactericida significativo sobre las esporas de MDR y C. difficile.
Una limitación de nuestro estudio es que evaluamos el efecto de la retención de ozono tras la remediación. Esto puede llevar a una sobreestimación del número de células bacterianas viables.
Si bien este estudio se realizó para evaluar la eficacia del ozono como desinfectante en un entorno hospitalario, resulta difícil generalizar nuestros resultados a todos los entornos hospitalarios. Por lo tanto, se necesita más investigación para determinar la aplicabilidad y compatibilidad de este esterilizador de ozono DBD en un entorno hospitalario real.
El ozono producido por los reactores de plasma DBD podría ser un agente de descontaminación simple y valioso para MDR y C. difficile. Por lo tanto, el tratamiento con ozono puede considerarse una alternativa eficaz para la desinfección del entorno hospitalario.
Los conjuntos de datos utilizados y/o analizados en el presente estudio están disponibles a pedido razonable de los respectivos autores.
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