ການໄດ້ຮັບ ແລະ ການແຈກຢາຍສານອາຫານປະສົມປະສານການຫາອາຫານຂອງແມງໄມ້ ແລະ ລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດ. ເພື່ອຊົດເຊີຍການຂາດສານອາຫານສະເພາະໃນໄລຍະຊີວິດທີ່ແຕກຕ່າງກັນ, ແມງໄມ້ສາມາດໄດ້ຮັບສານອາຫານເຫຼົ່ານີ້ຜ່ານການໃຫ້ອາຫານເສີມ, ຕົວຢ່າງ, ໂດຍການກິນສານຄັດຫຼັ່ງຂອງສັດກະດູກສັນຫຼັງໃນຂະບວນການທີ່ຮູ້ຈັກກັນໃນນາມ puddles. ຍຸງ Anopheles arabiani ເບິ່ງຄືວ່າຂາດສານອາຫານ ແລະ ດັ່ງນັ້ນ, ຈຶ່ງຕ້ອງການສານອາຫານສຳລັບທັງການເຜົາຜານອາຫານ ແລະ ການສືບພັນ. ຈຸດປະສົງຂອງການສຶກສານີ້ແມ່ນເພື່ອປະເມີນວ່າການກະຕຸ້ນ An. arabiensis ໃນປັດສະວະງົວເພື່ອການໄດ້ຮັບສານອາຫານປັບປຸງລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດຫຼືບໍ່.
ໃຫ້ແນ່ໃຈວ່າມັນປອດໄພ. arabiensis ຖືກດຶງດູດໂດຍກິ່ນຂອງປັດສະວະງົວສົດ, ອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງ, 72 ຊົ່ວໂມງ, ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງ, ແລະ ແມ່ພັນທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ ແລະ ກິນເລືອດ (48 ຊົ່ວໂມງຫຼັງກິນອາຫານເລືອດ) ໄດ້ຖືກວັດແທກໃນເຄື່ອງວັດແທກກິ່ນທໍ່ Y, ແລະ ແມ່ພັນທີ່ຖືພາໄດ້ຖືກປະເມີນສຳລັບການທົດສອບການວາງໄຂ່. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ການວິເຄາະທາງເຄມີ ແລະ ການວິເຄາະທາງໄຟຟ້າສະລີລະວິທະຍາລວມກັນໄດ້ຖືກນຳໃຊ້ເພື່ອລະບຸສານປະກອບຊີວະພາບທີ່ມີການເຄື່ອນໄຫວໃນປັດສະວະງົວໃນທຸກຊັ້ນອາຍຸທັງສີ່ຊັ້ນ. ສ່ວນປະສົມສັງເຄາະຂອງສານປະກອບຊີວະພາບທີ່ມີການເຄື່ອນໄຫວໄດ້ຖືກປະເມີນໃນທໍ່ Y ແລະ ການທົດລອງພາກສະໜາມ. ເພື່ອສືບສວນປັດສະວະງົວ ແລະ ສານປະກອບຢູເຣຍທີ່ມີໄນໂຕຣເຈນຫຼັກເປັນອາຫານເສີມທີ່ມີທ່າແຮງສຳລັບພາຫະນຳເຊື້ອໄຂ້ມາເລເຣຍ, ພາລາມິເຕີການກິນອາຫານ ແລະ ລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດໄດ້ຖືກວັດແທກ. ສັດສ່ວນຂອງຍຸງເພດແມ່ ແລະ ປະລິມານຂອງປັດສະວະງົວ ແລະ ຢູເຣຍທີ່ດູດຊຶມໄດ້ຖືກປະເມີນ. ຫຼັງຈາກກິນອາຫານ, ແມ່ພັນໄດ້ຖືກປະເມີນສຳລັບການຢູ່ລອດ, ການບິນທີ່ຜູກມັດ, ແລະ ການສືບພັນ.
ຊອກຫາເລືອດ ແລະ ສານອາຫານຂອງເຈົ້າພາບ. ໃນການສຶກສາໃນຫ້ອງທົດລອງ ແລະ ສະໜາມ, ຊາວອາຣັບໄດ້ຖືກດຶງດູດໃຫ້ກິ່ນທຳມະຊາດ ແລະ ກິ່ນສັງເຄາະຂອງປັດສະວະງົວສົດ ແລະ ເຖົ້າ. ແມ່ຖືພາບໍ່ສົນໃຈການຕອບສະໜອງຂອງປັດສະວະງົວຢູ່ບໍລິເວນວາງໄຂ່. ແມ່ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ ແລະ ດູດເລືອດດູດຊຶມປັດສະວະງົວ ແລະ ຢູເຣຍຢ່າງຫ້າວຫັນ ແລະ ຈັດສັນຊັບພະຍາກອນເຫຼົ່ານີ້ຕາມການແລກປ່ຽນປະຫວັດຊີວິດ ເປັນໜ້າທີ່ຂອງສະພາບທາງສະລີລະວິທະຍາ ສຳລັບການບິນ, ການຢູ່ລອດ ຫຼື ການສືບພັນ.
ການໄດ້ມາ ແລະ ການແຈກຢາຍນໍ້າຍ່ຽວງົວຂອງແມງ Anopheles arabinis ເພື່ອປັບປຸງລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດ. ການໃຫ້ອາຫານເສີມໃນນໍ້າຍ່ຽວງົວມີຜົນກະທົບໂດຍກົງຕໍ່ຄວາມສາມາດໃນການຢູ່ລອດປະຈຳວັນ ແລະ ຄວາມໜາແໜ້ນຂອງແມງ, ແລະ ໂດຍທາງອ້ອມໂດຍການປ່ຽນແປງກິດຈະກຳການບິນ ແລະ ດັ່ງນັ້ນຈຶ່ງຄວນໄດ້ຮັບການພິຈາລະນາໃນຮູບແບບໃນອະນາຄົດ.
ການໄດ້ຮັບ ແລະ ການແຈກຢາຍສານອາຫານປະສົມປະສານການຫາອາຫານຂອງແມງໄມ້ ແລະ ລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດ [1,2,3]. ແມງໄມ້ສາມາດເລືອກ ແລະ ໄດ້ຮັບອາຫານ ແລະ ປະຕິບັດການໃຫ້ອາຫານຊົດເຊີຍໂດຍອີງໃສ່ຄວາມພ້ອມຂອງອາຫານ ແລະ ຄວາມຕ້ອງການສານອາຫານ [1, 3]. ການແຈກຢາຍສານອາຫານແມ່ນຂຶ້ນກັບຂະບວນການປະຫວັດຊີວິດ ແລະ ອາດຈະນໍາໄປສູ່ຄວາມຕ້ອງການທີ່ແຕກຕ່າງກັນສໍາລັບຄຸນນະພາບ ແລະ ປະລິມານຂອງອາຫານໃນໄລຍະຕ່າງໆຂອງຊີວິດຂອງແມງໄມ້ [1, 2]. ເພື່ອຊົດເຊີຍການຂາດສານອາຫານສະເພາະ, ແມງໄມ້ສາມາດໄດ້ຮັບສານອາຫານເຫຼົ່ານີ້ຜ່ານການໃຫ້ອາຫານເສີມ, ເຊັ່ນ: ໃນຂີ້ຕົມ, ອາຈົມ ແລະ ນໍ້າຫຼໍ່ລື່ນຕ່າງໆຂອງສັດມີກະດູກສັນຫຼັງ, ແລະ ຊາກສັດ, ຂະບວນການທີ່ຮູ້ຈັກກັນໃນນາມໜອງນໍ້າ [2]. ເຖິງແມ່ນວ່ານົກກະຈອກ ແລະ ແມງເມົາຫຼາກຫຼາຍຊະນິດໄດ້ຖືກອະທິບາຍເປັນຕົ້ນຕໍ, ແຕ່ຮູນໍ້າຍັງເກີດຂຶ້ນໃນລໍາດັບແມງໄມ້ອື່ນໆ, ແລະການດຶງດູດ ແລະ ການກິນອາຫານຈາກຊັບພະຍາກອນປະເພດເຫຼົ່ານີ້ສາມາດມີຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ສຸຂະພາບ ແລະ ລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດອື່ນໆ [2, 4, 5, 6], 7]. ຍຸງໄຂ້ຍຸງ Anopheles gambiae sensu lato (sl) ເກີດຂຶ້ນເປັນຕົວເຕັມໄວທີ່ 'ຂາດສານອາຫານ' [8], ດັ່ງນັ້ນການຫົດນໍ້າອາດມີບົດບາດສໍາຄັນໃນລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດຂອງມັນ, ແຕ່ພຶດຕິກຳນີ້ຍັງຖືກລະເລີຍມາຮອດປະຈຸບັນ. ການໃຊ້ການກະຕຸ້ນເປັນວິທີການເພີ່ມການໄດ້ຮັບສານອາຫານໃນພາຫະນະທີ່ສຳຄັນນີ້ຄວນໄດ້ຮັບຄວາມສົນໃຈ ເພາະວ່າສິ່ງນີ້ອາດມີຜົນສະທ້ອນທາງລະບາດວິທະຍາທີ່ສຳຄັນ.
ການໄດ້ຮັບໄນໂຕຣເຈນໃນຍຸງ Anopheles ເພດແມ່ທີ່ເຕີບໃຫຍ່ເຕັມໄວແມ່ນມີຈຳກັດເນື່ອງຈາກມີພະລັງງານສຳຮອງຕ່ຳທີ່ມາຈາກໄລຍະຕົວອ່ອນ ແລະ ການນຳໃຊ້ເລືອດເມັດບໍ່ມີປະສິດທິພາບ [9]. ໂດຍທົ່ວໄປແລ້ວ, ຍຸງ Ann.gambiae sl ເພດແມ່ມັກຈະຊົດເຊີຍສິ່ງນີ້ໂດຍການເສີມດ້ວຍເລືອດເມັດເສີມ [10, 11], ເຊິ່ງເຮັດໃຫ້ຜູ້ຄົນມີຄວາມສ່ຽງຕໍ່ການຕິດເຊື້ອພະຍາດຫຼາຍຂຶ້ນ ແລະ ເຮັດໃຫ້ຍຸງມີຄວາມສ່ຽງຕໍ່ການລ່າຫຼາຍຂຶ້ນ. ອີກທາງເລືອກໜຶ່ງ, ຍຸງສາມາດໃຊ້ການໃຫ້ອາຫານເສີມຂອງອາຈົມສັດກະດູກສັນຫຼັງເພື່ອໃຫ້ໄດ້ສານປະກອບໄນໂຕຣເຈນທີ່ຊ່ວຍເພີ່ມການປັບຕົວ ແລະ ຄວາມສາມາດໃນການບິນ, ດັ່ງທີ່ສະແດງໃຫ້ເຫັນໂດຍແມງໄມ້ອື່ນໆ [2]. ໃນເລື່ອງນີ້, ຄວາມດຶງດູດທີ່ເຂັ້ມແຂງ ແລະ ແຕກຕ່າງຂອງໜຶ່ງໃນຊະນິດອ້າຍນ້ອງພາຍໃນ An. ສະລັບສັບຊ້ອນຊະນິດ Gambian sl, Anopheles arabinis, ປັດສະວະງົວສົດ ແລະ ແກ່ [12,13,14], ແມ່ນໜ້າສົນໃຈ. Anopheles arabinis ມີຄວາມມັກໃນໂອກາດໃນການເປັນເຈົ້າພາບ ແລະ ເປັນທີ່ຮູ້ຈັກວ່າພົວພັນກັບ ແລະ ກິນງົວ. ປັດສະວະງົວເປັນຊັບພະຍາກອນທີ່ອຸດົມໄປດ້ວຍສານປະກອບໄນໂຕຣເຈນ, ໂດຍມີຢູເຣຍຄິດເປັນ 50-95% ຂອງໄນໂຕຣເຈນທັງໝົດໃນປັດສະວະສົດ [15, 16]. ເມື່ອນໍ້າຍ່ຽວງົວມີອາຍຸຫຼາຍຂຶ້ນ, ຈຸລິນຊີຈະນຳໃຊ້ຊັບພະຍາກອນເຫຼົ່ານີ້ເພື່ອຫຼຸດຜ່ອນຄວາມສັບສົນຂອງສານປະກອບໄນໂຕຣເຈນພາຍໃນ 24 ຊົ່ວໂມງ [15]. ດ້ວຍການເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງໄວວາຂອງແອມໂມເນຍ, ເຊິ່ງກ່ຽວຂ້ອງກັບການຫຼຸດລົງຂອງໄນໂຕຣເຈນອິນຊີ, ຈຸລິນຊີທີ່ເປັນດ່າງ (ຫຼາຍຊະນິດຜະລິດສານປະກອບທີ່ເປັນພິດຕໍ່ຍຸງ) ຈະຈະເລີນເຕີບໂຕໄດ້ດີ [15], ເຊິ່ງອາດຈະເປັນແມ່ Ann.arabiensis ມັກຖືກດຶງດູດໃຫ້ຍ່ຽວທີ່ມີອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງ ຫຼື ໜ້ອຍກວ່າ [13, 14].
ໃນການສຶກສາຄັ້ງນີ້, ແມງກະເບື້ອ Ans ທີ່ເຈົ້າພາບ ແລະ ແມງກະເບື້ອທີ່ກິນເລືອດໄດ້ຖືກຄົ້ນຫາ. ໃນລະຫວ່າງວົງຈອນ gonadotropin ທຳອິດຂອງມັນ, arabiensis ໄດ້ຖືກປະເມີນສຳລັບການໄດ້ມາຂອງສານປະກອບໄນໂຕຣເຈນ, ລວມທັງ urea, ໂດຍການປະສົມນໍ້າຍ່ຽວ. ຕໍ່ໄປ, ຊຸດຂອງການທົດລອງໄດ້ຖືກດຳເນີນເພື່ອປະເມີນວ່າຍຸງເພດແມ່ຈັດສັນຊັບພະຍາກອນສານອາຫານທີ່ມີທ່າແຮງນີ້ເພື່ອປັບປຸງການຢູ່ລອດ, ການສືບພັນ ແລະ ການຫາອາຫານຕື່ມອີກແນວໃດ. ສຸດທ້າຍ, ກິ່ນຂອງປັດສະວະງົວສົດ ແລະ ເຖົ້າໄດ້ຖືກປະເມີນເພື່ອກຳນົດວ່າສິ່ງເຫຼົ່ານີ້ໃຫ້ຕົວຊີ້ບອກທີ່ໜ້າເຊື່ອຖືສຳລັບແມງກະເບື້ອ An ທີ່ເຈົ້າພາບ ແລະ ແມງກະເບື້ອທີ່ກິນເລືອດ. ໃນການຄົ້ນຫາຊັບພະຍາກອນສານອາຫານທີ່ມີທ່າແຮງນີ້, arabiensis ໄດ້ຄົ້ນພົບຄວາມສຳພັນທາງເຄມີທີ່ຢູ່ເບື້ອງຫຼັງຄວາມດຶງດູດທີ່ແຕກຕ່າງກັນທີ່ສັງເກດເຫັນ. ສ່ວນປະສົມກິ່ນສັງເຄາະຂອງສານປະກອບອິນຊີທີ່ລະເຫີຍໄດ້ (VOCs) ທີ່ລະບຸໃນນໍ້າຍ່ຽວທີ່ມີອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງໄດ້ຖືກປະເມີນຕື່ມອີກພາຍໃຕ້ສະພາບພາກສະໜາມ, ຂະຫຍາຍຜົນໄດ້ຮັບທີ່ໄດ້ຮັບພາຍໃຕ້ສະພາບຫ້ອງທົດລອງ ແລະ ສະແດງໃຫ້ເຫັນຜົນກະທົບຂອງກິ່ນປັດສະວະງົວຕໍ່ສະພາບທາງສະລີລະວິທະຍາທີ່ແຕກຕ່າງກັນ. ການດຶງດູດຍຸງ. ຜົນໄດ້ຮັບທີ່ໄດ້ຮັບຢືນຢັນວ່າແມງກະເບື້ອ An. arabiensis ໄດ້ມາ ແລະ ແຈກຢາຍສານປະກອບໄນໂຕຣເຈນທີ່ພົບໃນນໍ້າຍ່ຽວສັດກະດູກສັນຫຼັງເພື່ອມີອິດທິພົນຕໍ່ລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດ. ຜົນໄດ້ຮັບເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຖືກປຶກສາຫາລືໃນສະພາບການຂອງຜົນສະທ້ອນທາງລະບາດວິທະຍາທີ່ອາດເກີດຂຶ້ນ ແລະ ວິທີທີ່ພວກມັນສາມາດນຳໃຊ້ສຳລັບການເຝົ້າລະວັງ ແລະ ຄວບຄຸມພາຫະນະ.
ປາ Anopheles arabicans (ສາຍພັນ Dongola) ໄດ້ຖືກຮັກສາໄວ້ທີ່ອຸນຫະພູມ 25 ± 2 °C, 65 ± 5% RH ແລະວົງຈອນແສງສະຫວ່າງ:ມືດ 12:12 ຊົ່ວໂມງ. ຕົວອ່ອນໄດ້ຖືກລ້ຽງໃນຖາດພາດສະຕິກ (20 ຊມ × 18 ຊມ × 7 ຊມ) ທີ່ເຕັມໄປດ້ວຍນ້ຳກັ່ນ ແລະ ໃຫ້ອາຫານປາ Tetramin® (Tetra Werke, Melle, DE). ດັກແດ້ໄດ້ຖືກເກັບໃນຈອກ 30 ml (Nolato Hertila, Åstorp, SE) ແລະຫຼັງຈາກນັ້ນຍ້າຍໄປໃສ່ກະຊັງ Bugdorm (30 ຊມ × 30 ຊມ × 30 ຊມ; MegaView Science, Taichung, Taiwan) ເພື່ອໃຫ້ປາໂຕເຕັມໄວ. ໂຕເຕັມໄວໄດ້ຮັບສານລະລາຍນ້ຳຕານຊູໂຄສ 10% ຕາມຄວາມຕ້ອງການຈົນກວ່າ 4 ມື້ຫຼັງຈາກການງອກ (dpe), ເຊິ່ງໃນຈຸດນັ້ນ, ໂຕແມ່ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບໄດ້ຮັບອາຫານທັນທີກ່ອນການທົດລອງ, ຫຼື ໄດ້ຮັບອາຫານທີ່ອຶດຫິວຄ້າງຄືນດ້ວຍນ້ຳກັ່ນກ່ອນການທົດລອງ, ດັ່ງທີ່ໄດ້ອະທິບາຍໄວ້ຂ້າງລຸ່ມນີ້. ໂຕແມ່ທີ່ໃຊ້ສຳລັບການທົດລອງທໍ່ບິນໄດ້ຖືກອົດອາຫານພຽງແຕ່ 4-6 ຊົ່ວໂມງດ້ວຍນ້ຳ ແລະ libitum. ເພື່ອກະກຽມຍຸງດູດເລືອດສຳລັບການວິເຄາະທາງຊີວະວິທະຍາຕໍ່ມາ, ຍຸງ dpe ເພດແມ່ 4 ໂຕໄດ້ຮັບເລືອດແກະທີ່ຫຼຸດໄຂມັນ (Håtunalab, Bro, SE) ໂດຍໃຊ້ລະບົບການໃຫ້ອາຫານແບບເຍື່ອຫຸ້ມ (Hemotek Discovery Workshops, Accrington, UK). ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ຍຸງເພດແມ່ທີ່ແອອັດເຕັມທີ່ໄດ້ຖືກຍ້າຍໄປໃສ່ກະຕ່າແຍກຕ່າງຫາກ ແລະ ໃຫ້ອາຫານໂດຍກົງ, ດັ່ງທີ່ໄດ້ອະທິບາຍໄວ້ຂ້າງລຸ່ມນີ້, ຫຼື 10% sucrose ad libitum ເປັນເວລາ 3 ມື້ກ່ອນການທົດລອງທີ່ໄດ້ອະທິບາຍໄວ້ຂ້າງລຸ່ມນີ້. ຍຸງເພດແມ່ຊະນິດສຸດທ້າຍໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ສໍາລັບການວິເຄາະທາງຊີວະວິທະຍາທໍ່ບິນ ແລະ ຍ້າຍໄປຫ້ອງທົດລອງ, ແລະຫຼັງຈາກນັ້ນໄດ້ດື່ມນໍ້າກັ່ນ ad libitum ເປັນເວລາ 4-6 ຊົ່ວໂມງກ່ອນການທົດລອງ.
ການທົດສອບການໃຫ້ອາຫານໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອວັດແທກປະລິມານການໃຊ້ນໍ້າຍ່ຽວ ແລະ ຢູເຣຍໃນແມ່ພັນ An.Arab ທີ່ເປັນຜູ້ໃຫຍ່. ແມ່ພັນທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ ແລະ ແມ່ພັນທີ່ກິນເລືອດໄດ້ຮັບອາຫານທີ່ມີນໍ້າຍ່ຽວງົວສົດ ແລະ ຍ່ຽວງົວທີ່ແກ່ແລ້ວ 1% ທີ່ລະລາຍ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍຕ່າງໆ, ແລະ ສອງກຸ່ມຄວບຄຸມ (ນໍ້າຕານຊູໂຄຣສ 10% ແລະ ນໍ້າ) ເປັນເວລາ 48 ຊົ່ວໂມງ. ນອກຈາກນັ້ນ, ສີປະສົມອາຫານ (1 ມກ ມລ-1 xylene cyanide FF; CAS 2650-17-1; Sigma-Aldrich, Stockholm, SE) ໄດ້ຖືກເພີ່ມເຂົ້າໃນອາຫານ ແລະ ສະໜອງໃນ matrix 4 × 4 ໃນທໍ່ microcentrifuge 250 µl (Axygen Scientific, Union City, CA, US; ຮູບທີ 1A) ຕື່ມໃຫ້ເຕັມຂອບ (~300 µl). ເພື່ອຫຼີກເວັ້ນການແຂ່ງຂັນລະຫວ່າງຍຸງ ແລະ ຜົນກະທົບທີ່ອາດເກີດຂຶ້ນຈາກສີຍ້ອມ, ໃຫ້ວາງຍຸງ 10 ໂຕໃນຈານ Petri ຂະໜາດໃຫຍ່ (ເສັ້ນຜ່າສູນກາງ 12 ຊມ ແລະ ສູງ 6 ຊມ; Semadeni, Ostermundigen, CH; ຮູບທີ 1A) ໃນຄວາມມືດສະນິດທີ່ອຸນຫະພູມ 25 ± 2 ຊມ °C ແລະ ຄວາມຊຸ່ມຊື່ນສຳພັດ 65 ± 5%. ເຫຼົ່ານີ້ ການທົດລອງໄດ້ຖືກເຮັດຊ້ຳອີກ 5 ຫາ 10 ເທື່ອ. ຫຼັງຈາກໄດ້ຮັບອາຫານແລ້ວ, ຍຸງໄດ້ຖືກວາງໄວ້ໃນອຸນຫະພູມ -20°C ຈົນກວ່າຈະມີການວິເຄາະຕື່ມອີກ.
ຊອກຫາປັດສະວະງົວ ແລະ ຢູເຣຍ ທີ່ດູດຊຶມໂດຍຍຸງເຈົ້າພາບ ແລະ ຍຸງແມ່ດູດເລືອດ Anopheles arabianus. ໃນການທົດລອງການໃຫ້ອາຫານ (A), ຍຸງແມ່ໄດ້ຮັບອາຫານທີ່ປະກອບດ້ວຍປັດສະວະງົວສົດ ແລະ ຍຸງທີ່ແກ່, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍ, ຊູໂຄຣສ (10%), ແລະ ນ້ຳກັ່ນ (H2O). ຍຸງແມ່ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ (B) ແລະ ຍຸງທີ່ກິນເລືອດ (C) ດູດຊຶມຊູໂຄຣສຫຼາຍກວ່າອາຫານອື່ນໆທີ່ທົດສອບ. ໃຫ້ສັງເກດວ່າຍຸງແມ່ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບດູດຊຶມປັດສະວະງົວ 72 ຊົ່ວໂມງໜ້ອຍກວ່າຍຸງແມ່ 168 ຊົ່ວໂມງ (B). ປະລິມານໄນໂຕຣເຈນທັງໝົດສະເລ່ຍ (± ຄ່າຜັນປ່ຽນມາດຕະຖານ) ຂອງປັດສະວະແມ່ນສະແດງຢູ່ໃນຮູບຊ້ອນ. ຍຸງແມ່ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ (D, F) ແລະ ຍຸງດູດເລືອດ (E, G) ກິນຢູເຣຍໃນລັກສະນະທີ່ຂຶ້ນກັບປະລິມານ. ປະລິມານສະເລ່ຍທີ່ສູດດົມເຂົ້າໄປ (D, E) ທີ່ມີຊື່ຕົວອັກສອນທີ່ແຕກຕ່າງກັນແມ່ນແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (ANOVA ທາງດຽວໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະ post hoc ຂອງ Tukey; p < 0.05). ແຖບຄວາມຜິດພາດສະແດງເຖິງຄວາມຜິດພາດມາດຕະຖານຂອງຄ່າສະເລ່ຍ (BE). ເສັ້ນປະຊື່ສະແດງເຖິງເສັ້ນການຖົດຖອຍ log-linear (F, ກ)
ເພື່ອປ່ອຍອາຫານທີ່ດູດຊຶມ, ຍຸງໄດ້ຖືກວາງລົງໃນທໍ່ microcentrifuge ຂະໜາດ 1.5 ml ທີ່ບັນຈຸນ້ຳກັ່ນ 230 µl ແລະເນື້ອເຍື່ອຖືກທຳລາຍໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງພົ່ນທີ່ໃຊ້ແລ້ວຖິ້ມ ແລະມໍເຕີໄຮ້ສາຍ (VWR International, Lund, SE), ຕາມດ້ວຍການປั่นແຍກທີ່ 10 krpm ເປັນເວລາ 10 ນາທີ. ນ້ຳໃຕ້ຜິວ (200 µl) ໄດ້ຖືກໂອນໄປຫາແຜ່ນໄມໂຄຣ 96 ຫຼຸມ (Sigma-Aldrich) ແລະ ການດູດຊຶມ (λ620) ໄດ້ຖືກກຳນົດໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງອ່ານແຜ່ນໄມໂຄຣທີ່ອີງໃສ່ເຄື່ອງວັດແທກແສງສະເປກໂຕຣໂຟໂຕມິເຕີ (SPECTROStar® Nano, BMG Labtech, Ortenberg, DE) nm). ອີກທາງເລືອກໜຶ່ງ, ຍຸງໄດ້ຖືກບົດໃນນ້ຳກັ່ນ 1 ml, ເຊິ່ງ 900 µl ໃນນັ້ນໄດ້ຖືກໂອນໄປຫາ cuvette ສຳລັບການວິເຄາະແສງສະເປກໂຕຣໂຟໂຕມິເຕີ (λ 620 nm; UV 1800, Shimadzu, Kista, SE). ເພື່ອວັດແທກປະລິມານການໄດ້ຮັບສານອາຫານ, ເສັ້ນໂຄ້ງມາດຕະຖານໄດ້ຖືກກະກຽມໂດຍການລະລາຍຕໍ່ເນື່ອງເພື່ອໃຫ້ໄດ້ 0.2 µl ເປັນ 2.4 µl ຂອງ 1 mg ml-1 xylene cyanide. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ຄວາມໜາແໜ້ນທາງແສງຂອງຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງສີຍ້ອມທີ່ຮູ້ຈັກໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອກໍານົດປະລິມານອາຫານທີ່ຍຸງແຕ່ລະໂຕກິນ.
ຂໍ້ມູນປະລິມານໄດ້ຖືກວິເຄາະໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະຄວາມແปรປ່ວນທາງດຽວ (ANOVA) ຕາມດ້ວຍການປຽບທຽບຄູ່ post hoc ຂອງ Tukey (JMP Pro, v14.0.0, SAS Institute Inc., Cary, NC, US, 1989–2007). ການວິເຄາະການຖົດຖອຍເສັ້ນຊື່ໄດ້ອະທິບາຍເຖິງການໄດ້ຮັບຢູເຣຍທີ່ຂຶ້ນກັບຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນ ແລະ ປຽບທຽບການຕອບສະໜອງລະຫວ່າງຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ ແລະ ຍຸງດູດເລືອດ (GraphPad Prism v8.0.0 ສຳລັບ Mac, GraphPad Software, San Diego, CA, US).
ຕົວຢ່າງປັດສະວະປະມານ 20 µl ຈາກແຕ່ລະກຸ່ມອາຍຸໄດ້ຖືກມັດດ້ວຍ Chromosorb® W/AW (10 mg 80/100 mesh, Sigma Aldrich) ແລະ ຫຸ້ມດ້ວຍແຄບຊູນກົ່ວ (8 mm × 5 mm). ແຄບຊູນໄດ້ຖືກໃສ່ເຂົ້າໄປໃນຫ້ອງເຜົາໄໝ້ຂອງເຄື່ອງວິເຄາະ CHNS/O (Flash 2000, Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, US) ເພື່ອກຳນົດປະລິມານໄນໂຕຣເຈນໃນປັດສະວະສົດ ແລະ ປັດສະວະທີ່ໝັກແລ້ວຕາມໂປໂຕຄອນຂອງຜູ້ຜະລິດ. ໄນໂຕຣເຈນທັງໝົດ (g N l-1) ໄດ້ຖືກວັດແທກໂດຍອີງໃສ່ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍທີ່ຮູ້ຈັກເຊິ່ງໃຊ້ເປັນມາດຕະຖານ.
ເພື່ອປະເມີນຜົນກະທົບຂອງອາຫານຕໍ່ການຢູ່ລອດຂອງແມ່ບ້ານ ແລະ ແມ່ທີ່ດູດເລືອດ, ຍຸງໄດ້ຖືກວາງໄວ້ໃນຖ້ວຍ Petri ຂະໜາດໃຫຍ່ (ເສັ້ນຜ່າສູນກາງ 12 ຊມ ແລະ ສູງ 6 ຊມ; Semadeni) ທີ່ມີຮູປົກຄຸມດ້ວຍຕາໜ່າງຢູ່ໃນຝາປິດ (ເສັ້ນຜ່າສູນກາງ 3 ຊມ) ພ້ອມດ້ວຍການລະບາຍອາກາດ ແລະ ການສະໜອງອາຫານ. ອາຫານໄດ້ຖືກສະໜອງໃຫ້ໂດຍກົງຫຼັງຈາກ 4 dpe ແລະ ປະກອບມີປັດສະວະງົວສົດ ແລະ ງົວທີ່ແກ່ແລ້ວທີ່ລະລາຍ 1%, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍ 4 ຢ່າງ, ແລະ ກຸ່ມຄວບຄຸມ 2 ຢ່າງ, ນ້ຳຕານຊູໂຄສ 10% ແລະ ນ້ຳ. ອາຫານແຕ່ລະຢ່າງໄດ້ຖືກສູບໃສ່ຜ້າອະນາໄມແຂ້ວ (DAB Dental AB, Upplands Väsby, SE) ໃສ່ເຂົ້າໄປໃນເຂັມສັກຢາ 5 ມລ (Thermo Fisher Scientific, Gothenburg, SE), ເອົາກະບອກສູບອອກ, ແລະ ວາງໄວ້ເທິງຖ້ວຍ Petri (ຮູບທີ 1).1A). ປ່ຽນອາຫານຂອງທ່ານທຸກໆມື້. ຮັກສາຫ້ອງທົດລອງຕາມທີ່ໄດ້ອະທິບາຍຂ້າງເທິງ. ຍຸງທີ່ລອດຊີວິດໄດ້ຖືກນັບສອງຄັ້ງຕໍ່ມື້, ໃນຂະນະທີ່ຍຸງທີ່ຕາຍແລ້ວຖືກຖິ້ມຈົນກວ່າຍຸງໂຕສຸດທ້າຍຈະຕາຍ (n = 40 ຕໍ່ການປິ່ນປົວ). ການຢູ່ລອດຂອງຍຸງທີ່ກິນອາຫານຕ່າງໆໄດ້ຖືກວິເຄາະທາງສະຖິຕິໂດຍໃຊ້ເສັ້ນໂຄ້ງການຢູ່ລອດຂອງ Kaplan-Meyer ແລະ ການທົດສອບລະດັບ log ເພື່ອປຽບທຽບການແຈກຢາຍການຢູ່ລອດລະຫວ່າງອາຫານ (ສະຖິຕິ IBM SPSS 24.0.0.0).
ໂຮງງານປັ້ນດິນເຜົາຍຸງແບບກຳນົດເອງໂດຍອີງໃສ່ Attisano et al.[17], ເຮັດດ້ວຍແຜ່ນ acrylic ໃສໜາ 5 ມມ (ກວ້າງ 10 ຊມ x ຍາວ 10 ຊມ x ສູງ 10 ຊມ) ໂດຍບໍ່ມີແຜງດ້ານໜ້າ ແລະ ດ້ານຫຼັງ (ຮູບທີ 3: ເທິງ). ຊຸດປະກອບໝູນທີ່ມີທໍ່ຕັ້ງທີ່ເຮັດດ້ວຍຖັນໂຄຣມາໂຕກຣາຟີກແກັສ (0.25 ມມ id; 7.5 ຊມ L) ທີ່ມີປາຍຕິດກາວໃສ່ເຂັມແມງໄມ້ທີ່ຫ້ອຍລະຫວ່າງແມ່ເຫຼັກ neodymium ຄູ່ໜຶ່ງຫ່າງກັນ 9 ຊມ. ທໍ່ນອນທີ່ເຮັດດ້ວຍວັດສະດຸດຽວກັນ (6.5 ຊມ L) ໄດ້ແຍກທໍ່ຕັ້ງອອກເປັນສອງສ່ວນເພື່ອສ້າງເປັນແຂນທີ່ຜູກມັດ ແລະ ແຂນທີ່ຖືແຜ່ນອະລູມິນຽມຂະໜາດນ້ອຍເປັນສັນຍານລົບກວນແສງ.
ຍຸງແມ່ທີ່ອົດອາຫານ 24 ຊົ່ວໂມງໄດ້ຮັບອາຫານຂ້າງເທິງນີ້ເປັນເວລາ 30 ນາທີກ່ອນທີ່ຈະຖືກຍັບຍັ້ງ. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ຍຸງແມ່ທີ່ກິນເຕັມທີ່ໄດ້ຖືກໃຫ້ຢາສະລົບແຕ່ລະໂຕໃສ່ນ້ຳກ້ອນເປັນເວລາ 2-3 ນາທີ ແລະ ຕິດເຂົ້າກັບເຂັມແມງໄມ້ດ້ວຍຂີ້ຜຶ້ງ (Joel Svenssons Vaxfabrik AB, Munka Ljungby, SE) ແລະ ຫຼັງຈາກນັ້ນຖືກມັດໄວ້ກັບແຂນຂອງທໍ່ນອນ. ໂຮງສີບິນ. ຮອບຕໍ່ການບິນໄດ້ຖືກບັນທຶກໂດຍເຄື່ອງບັນທຶກຂໍ້ມູນທີ່ສ້າງຂຶ້ນເອງ, ຈາກນັ້ນເກັບຮັກສາໄວ້ ແລະ ສະແດງໂດຍໃຊ້ຊອບແວ PC-Lab 2000™ (v4.01; Velleman, Gavere, BE). ໂຮງສີບິນໄດ້ຖືກວາງໄວ້ໃນຫ້ອງທີ່ຄວບຄຸມສະພາບອາກາດ (12 ຊົ່ວໂມງ:12 ຊົ່ວໂມງ, ສະຫວ່າງ: ມືດ, 25 ± 2 °C, 65 ± 5% RH).
ເພື່ອສະແດງຮູບແບບຂອງກິດຈະກຳການບິນ, ໄລຍະທາງທັງໝົດທີ່ບິນ (ມ) ແລະ ຈຳນວນກິດຈະກຳການບິນຕິດຕໍ່ກັນທັງໝົດໄດ້ຖືກຄິດໄລ່ຕໍ່ຊົ່ວໂມງໃນໄລຍະເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງ. ນອກຈາກນັ້ນ, ໄລຍະທາງສະເລ່ຍທີ່ບິນໂດຍຜູ້ຍິງແຕ່ລະຄົນໄດ້ຖືກປຽບທຽບໃນທົ່ວການປິ່ນປົວ ແລະ ວິເຄາະໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະແບບທາງດຽວ ແລະ ການວິເຄາະຫຼັງການທົດລອງຂອງ Tukey (JMP Pro, v14.0.0, SAS Institute Inc.), ບ່ອນທີ່ໄລຍະທາງສະເລ່ຍຖືກພິຈາລະນາເປັນຕົວແປທີ່ຂຶ້ນກັບ, ໃນຂະນະທີ່ການປິ່ນປົວເປັນປັດໄຈເອກະລາດ. ນອກຈາກນັ້ນ, ຈຳນວນຮອບສະເລ່ຍຖືກຄິດໄລ່ໃນການເພີ່ມຂຶ້ນເທື່ອລະ 10 ນາທີ.
ເພື່ອປະເມີນຜົນກະທົບຂອງອາຫານຕໍ່ປະສິດທິພາບການຈະເລີນພັນຂອງ An.arabiensis, ໄຂ່ແມ່ຫົກໂຕ (4 dpe) ໄດ້ຖືກຍ້າຍໂດຍກົງໄປຫາກະຊັງ Bugdorm (30 ຊມ × 30 ຊມ × 30 ຊມ) ຫຼັງຈາກເກັບເລືອດ ແລະ ຫຼັງຈາກນັ້ນໃຫ້ອາຫານທົດລອງເປັນເວລາ 48 ຊົ່ວໂມງຕາມທີ່ໄດ້ອະທິບາຍຂ້າງເທິງ. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ອາຫານໄດ້ຖືກເອົາອອກ ແລະ ຈອກວາງໄຂ່ (30 ມລ; Nolato Hertila) ທີ່ເຕັມໄປດ້ວຍນ້ຳກັ່ນ 20 ມລ ໄດ້ຖືກສະໜອງໃນມື້ທີສາມເປັນເວລາ 48 ຊົ່ວໂມງ, ປ່ຽນທຸກໆ 24 ຊົ່ວໂມງ. ເຮັດຊ້ຳແຕ່ລະການກິນອາຫານ 20-50 ເທື່ອ. ໄຂ່ໄດ້ຖືກນັບ ແລະ ບັນທຶກໄວ້ສຳລັບແຕ່ລະກະຊັງທົດລອງ. ຕົວຢ່າງຍ່ອຍຂອງໄຂ່ໄດ້ຖືກນຳໃຊ້ເພື່ອປະເມີນຂະໜາດສະເລ່ຍ ແລະ ການປ່ຽນແປງຄວາມຍາວຂອງໄຂ່ແຕ່ລະໂຕ (n ≥ 200 ຕໍ່ອາຫານ) ໂດຍໃຊ້ກ້ອງຈຸລະທັດ Dialux-20 (DM1000; Ernst Leitz Wetzlar, Wetzlar, DE) ທີ່ມີກ້ອງ Leica Camera (DFC) 320 R2; ບໍລິສັດ Leica Microsystems ຈຳກັດ, ເດນມາກ). ໄຂ່ທີ່ເຫຼືອໄດ້ຖືກເກັບຮັກສາໄວ້ໃນຫ້ອງທີ່ຄວບຄຸມອຸນຫະພູມພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂການລ້ຽງມາດຕະຖານເປັນເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງ, ແລະຕົວຢ່າງຍ່ອຍຂອງຕົວອ່ອນໄລຍະທຳອິດທີ່ຫາກໍ່ອອກມາໃໝ່ໆ (n ≥ 200 ຕໍ່ອາຫານ) ໄດ້ຖືກວັດແທກ, ດັ່ງທີ່ໄດ້ອະທິບາຍໄວ້ຂ້າງເທິງ. ຈຳນວນໄຂ່ ແລະ ຂະໜາດຂອງໄຂ່ ແລະ ຕົວອ່ອນໄດ້ຖືກປຽບທຽບລະຫວ່າງການປິ່ນປົວ ແລະ ການນຳໃຊ້ການວິເຄາະແບບທາງດຽວ ANOVA ແລະ ການວິເຄາະຫຼັງການທົດລອງຂອງ Tukey (JMP Pro, v14.0.0, SAS Institute Inc.).
ສານລະເຫີຍ Headspace ຈາກປັດສະວະງົວສົດ (1 ຊົ່ວໂມງຫຼັງການເກັບຕົວຢ່າງ), 24 ຊົ່ວໂມງ, 72 ຊົ່ວໂມງ ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງໄດ້ຖືກເກັບມາຈາກຕົວຢ່າງທີ່ເກັບມາຈາກງົວ Zebu, ເຊື້ອຊາດ Arsi. ເພື່ອຄວາມສະດວກ, ຕົວຢ່າງປັດສະວະໄດ້ຖືກເກັບໃນຕອນເຊົ້າໃນຂະນະທີ່ງົວຍັງຢູ່ໃນຄອກ. ຕົວຢ່າງປັດສະວະໄດ້ຖືກເກັບມາຈາກ 10 ໂຕ ແລະ 100-200 ມລ ຂອງແຕ່ລະຕົວຢ່າງໄດ້ຖືກໂອນໄປໃສ່ຖົງອົບໂພລີອາໄມ (Toppits Cofresco, Frischhalteprodukte GmbH and Co., Minden, DE) ໃນໂພລີອາໄມ 3 ລິດທີ່ມີຝາປິດ ໃນຖັງພາດສະຕິກໄວນິລຄລໍໄຣ. ສານລະເຫີຍ Headspace ຈາກຕົວຢ່າງປັດສະວະງົວແຕ່ລະຕົວຢ່າງໄດ້ຖືກເກັບໂດຍກົງ (ສົດ) ຫຼື ຫຼັງຈາກສຸກເຕັມທີ່ທີ່ອຸນຫະພູມຫ້ອງເປັນເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງ, 72 ຊົ່ວໂມງ ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງ, ໝາຍຄວາມວ່າຕົວຢ່າງປັດສະວະແຕ່ລະຕົວຢ່າງແມ່ນຕົວແທນຂອງແຕ່ລະກຸ່ມອາຍຸ.
ສຳລັບການເກັບກຳສານລະເຫີຍໃນຊ່ອງຫົວ, ລະບົບວົງຈອນປິດໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອໄຫຼວຽນກະແສອາຍແກັສທີ່ກັ່ນຕອງດ້ວຍຖ່ານກ໊າຊ (100 ml min-1) ຜ່ານຖົງໂພລີອາມິດໄປຫາຖັນດູດຊຶມເປັນເວລາ 2.5 ຊົ່ວໂມງໂດຍໃຊ້ປໍ້າສູນຍາກາດແບບກະບອກລົມ (KNF Neuberger, Freiburg, DE). ໃນຖານະເປັນຕົວຄວບຄຸມ, ການເກັບກຳສານລະເຫີຍໃນຊ່ອງຫົວໄດ້ຖືກປະຕິບັດຈາກຖົງໂພລີອາມິດທີ່ຫວ່າງເປົ່າ. ຖັນດູດຊຶມແມ່ນເຮັດດ້ວຍທໍ່ Teflon (5.5 ຊມ x 3 ມມ id) ທີ່ມີ Porapak Q 35 ມກ (50/80 mesh; Waters Associates, Milford, MA, US) ລະຫວ່າງປລັກຂົນແກ້ວ. ກ່ອນການນໍາໃຊ້, ຖັນໄດ້ຖືກລ້າງດ້ວຍ n-hexane ທີ່ກັ່ນແລ້ວ 1 ml (Merck, Darmstadt, DE) ແລະ pentane 1 ml (99.0% ບໍລິສຸດ solvent GC grade, Sigma Aldrich). ສານລະເຫີຍທີ່ດູດຊຶມໄດ້ຖືກລະລາຍດ້ວຍ pentane 400 μl. ການເກັບກຳສານລະເຫີຍໃນຊ່ອງຫົວໄດ້ຖືກລວມເຂົ້າກັນ ແລະ ຫຼັງຈາກນັ້ນເກັບຮັກສາໄວ້ທີ່ -20°C ຈົນກວ່າຈະນໍາໃຊ້ສໍາລັບການວິເຄາະຕື່ມອີກ.
ການຕອບສະໜອງດ້ານພຶດຕິກຳຂອງ An ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ ແລະ ກິນເລືອດ. ສານສະກັດທີ່ລະເຫີຍໄດ້ຈາກ Headspace ທີ່ເກັບມາຈາກປັດສະວະສົດ, ອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງ, 72 ຊົ່ວໂມງ, ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງ ໄດ້ຖືກວິເຄາະເພື່ອຫາສານສະກັດທີ່ລະເຫີຍໄດ້ຈາກຍຸງ Arabidopsis ໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງວັດແທກກິ່ນແບບຫຼອດແກ້ວຊື່ [18]. ການທົດລອງໄດ້ດຳເນີນໃນລະຫວ່າງ ZT 13-15, ໄລຍະເວລາສູງສຸດຂອງກິດຈະກຳການຊອກຫາເຮືອນຂອງ An. Arab [19]. ເຄື່ອງວັດແທກກິ່ນແບບຫຼອດແກ້ວ (80 ຊມ × 9.5 ຊມ id) ໄດ້ຖືກສ່ອງແສງດ້ວຍແສງສີແດງ 3 ± 1 lx ຈາກຂ້າງເທິງ. ກະແສລົມທີ່ກັ່ນຕອງ ແລະ ເພີ່ມຄວາມຊຸ່ມຊື່ນດ້ວຍຖ່ານ (25 ± 2 °C, ຄວາມຊຸ່ມຊື່ນສຳພັດ 65 ± 2%) ໄດ້ຜ່ານການທົດສອບທາງຊີວະພາບທີ່ 30 ຊມ s-1. ອາກາດຖືກຖ່າຍທອດຜ່ານຕາໜ່າງສະແຕນເລດຊຸດໜຶ່ງ, ສ້າງກະແສລົມແບບລຽບງ່າຍ ແລະ ໂຄງສ້າງຂົນທີ່ເປັນເອກະພາບ. ເຄື່ອງແຈກຈ່າຍຜ້າອະນາໄມແຂ້ວ (4 ຊມ × 1 ຊມ; L:D; DAB Dental AB), ແຂວນຈາກຂົດລວດ 5 ຊມ ຢູ່ປາຍລົມຂອງ ເຄື່ອງວັດແທກກິ່ນ, ໂດຍມີການປ່ຽນແປງຕົວກະຕຸ້ນທຸກໆ 5 ນາທີ. ສຳລັບການວິເຄາະ, 10 μl ຂອງສານສະກັດຈາກ headspace ແຕ່ລະຊະນິດ, ເຈືອຈາງ 1:10, ຖືກນຳໃຊ້ເປັນຕົວກະຕຸ້ນ. pentane ໃນປະລິມານເທົ່າກັນຖືກນຳໃຊ້ເປັນຕົວຄວບຄຸມ. ຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ ຫຼື ຍຸງດູດເລືອດແຕ່ລະໂຕຖືກວາງໄວ້ໃນກະຕ່າປ່ອຍຕົວແຕ່ລະໂຕ 2-3 ຊົ່ວໂມງກ່ອນການເລີ່ມຕົ້ນການທົດລອງ. ກະຕ່າປ່ອຍຕົວຖືກວາງໄວ້ທາງລຸ່ມຂອງເຄື່ອງວັດແທກກິ່ນ, ແລະ ຍຸງໄດ້ຖືກປ່ອຍໃຫ້ປັບຕົວເປັນເວລາ 1 ນາທີ, ແລະຫຼັງຈາກນັ້ນວາວຜີເສື້ອຂອງກະຕ່າໄດ້ຖືກເປີດເພື່ອປ່ອຍຕົວ. ຄວາມດຶງດູດຕໍ່ການປິ່ນປົວ ຫຼື ການຄວບຄຸມໄດ້ຖືກວິເຄາະເປັນສັດສ່ວນຂອງຍຸງທີ່ສຳຜັດກັບແຫຼ່ງທີ່ມາພາຍໃນ 5 ນາທີຫຼັງຈາກປ່ອຍຕົວ. ສານສະກັດຈາກ headspace ແຕ່ລະຊະນິດ ແລະ ການຄວບຄຸມໄດ້ຖືກເຮັດຊ້ຳຢ່າງໜ້ອຍ 30 ເທື່ອ, ແລະ ເພື່ອຫຼີກເວັ້ນຜົນກະທົບຂອງມື້ໃດໜຶ່ງ, ຈຳນວນການປິ່ນປົວ ແລະ ການຄວບຄຸມດຽວກັນໄດ້ຖືກທົດສອບໃນແຕ່ລະມື້ທົດລອງ. ຄຳຕອບຈາກເຈົ້າພາບ ແລະ ຜູ້ທີ່ໄດ້ຮັບເລືອດ ຄຳຕອບ. ຊຸດພາສາອາຣັບ ທຽບກັບ headspace ໄດ້ຖືກວິເຄາະໂດຍໃຊ້ການຖົດຖອຍໂລຈິດສະຕິກຕາມຕົວເລກ ຕິດຕາມດ້ວຍການປຽບທຽບຄູ່ສຳລັບອັດຕາສ່ວນຄີກ (JMP Pro, v14.0.0, ບໍລິສັດ SAS ສະຖາບັນ).
ການຕອບສະໜອງຕໍ່ການວາງໄຂ່ຂອງ An. ສານສະກັດ Headspace ຈາກປັດສະວະງົວສົດ ແລະ ງົວເຖົ້າໄດ້ຖືກວິເຄາະໃນຄອກ Bugdorm (30 ຊມ × 30 ຊມ × 30 ຊມ; MegaView Science). ຈອກພາດສະຕິກ (30 ມລ; Nolato Hertila) ທີ່ເຕັມໄປດ້ວຍນ້ຳກັ່ນ 20 ມລ ໄດ້ສະໜອງຊັ້ນວາງການວາງໄຂ່ ແລະ ຖືກວາງໄວ້ໃນມຸມກົງກັນຂ້າມຂອງຄອກ, ຫ່າງກັນ 24 ຊມ. ຈອກປິ່ນປົວໄດ້ຖືກປັບດ້ວຍສານສະກັດ headspace ແຕ່ລະອັນ 10 μl ໃນອັດຕາສ່ວນ 1:10. ປະລິມານ pentane ທີ່ເທົ່າທຽມກັນໄດ້ຖືກນຳໃຊ້ເພື່ອປັບຈອກຄວບຄຸມ. ຈອກປິ່ນປົວ ແລະ ຈອກຄວບຄຸມໄດ້ຖືກແລກປ່ຽນລະຫວ່າງແຕ່ລະການທົດລອງເພື່ອຄວບຄຸມສຳລັບຜົນກະທົບຂອງຕຳແໜ່ງ. ແມ່ໄກ່ທີ່ກິນເລືອດສິບໂຕໄດ້ຖືກປ່ອຍເຂົ້າໄປໃນຄອກທົດລອງທີ່ ZT 9-11 ແລະ ໄຂ່ໃນຈອກໄດ້ຖືກນັບ 24 ຊົ່ວໂມງຕໍ່ມາ. ສູດສຳລັບການຄິດໄລ່ດັດຊະນີການວາງໄຂ່ແມ່ນ: (ຈຳນວນໄຂ່ທີ່ວາງໃນຈອກປິ່ນປົວ - ຈຳນວນໄຂ່ທີ່ວາງໃນຈອກຄວບຄຸມ)/(ຈຳນວນໄຂ່ທັງໝົດທີ່ວາງ). ການປິ່ນປົວແຕ່ລະຄັ້ງໄດ້ຖືກເຮັດຊ້ຳ 8 ຄັ້ງ.
ການວິເຄາະຮູບແບບການກວດຈັບດ້ວຍກ໊າຊໂຄຣມາໂຕກຣາຟີ ແລະ ການກວດຈັບຮູບແບບເສົາອາກາດເອເລັກຕຣອນ (GC-EAD) ຂອງ An.arabiensis ເພດແມ່ໄດ້ຖືກປະຕິບັດຕາມທີ່ໄດ້ອະທິບາຍໄວ້ກ່ອນໜ້ານີ້ [20]. ໂດຍຫຍໍ້, ສານສະກັດທີ່ລະເຫີຍໄດ້ຈາກ headspace ສົດໆໄດ້ຖືກແຍກອອກໂດຍໃຊ້ Agilent Technologies 6890 GC (Santa Clara, CA, US) ທີ່ມີຖັນ HP-5 (30 ມ × 0.25 ມມ id, ຄວາມໜາຂອງຟິມ 0.25 μm, Agilent Technologies). ແລະນໍ້າຍ່ຽວທີ່ແກ່ແລ້ວ. ໄຮໂດຣເຈນຖືກນໍາໃຊ້ເປັນໄລຍະເຄື່ອນທີ່ທີ່ມີອັດຕາການໄຫຼເສັ້ນຊື່ສະເລ່ຍ 45 cm s-1. ແຕ່ລະຕົວຢ່າງ (2 μl) ໄດ້ຖືກສັກເປັນເວລາ 30 ວິນາທີໃນໂໝດບໍ່ແຍກດ້ວຍອຸນຫະພູມເຂົ້າ 225 °C. ອຸນຫະພູມເຕົາອົບ GC ໄດ້ຖືກຕັ້ງໂປຣແກຣມຈາກ 35 °C (ຄ້າງໄວ້ 3 ນາທີ) ຫາ 300 °C (ຄ້າງໄວ້ 10 ນາທີ) ທີ່ 10 °C min-1. ໃນເຄື່ອງແຍກນໍ້າເສຍ GC, ໄນໂຕຣເຈນ 4 psi ໄດ້ຖືກເພີ່ມ ແລະ ແບ່ງອອກ 1:1 ໃນ Gerstel 3D/2 low dead volume cross (Gerstel, Mülheim, DE) ລະຫວ່າງເຄື່ອງກວດຈັບ flame ionization ແລະ EAD. ທໍ່ນໍ້າເສຍ GC ສໍາລັບ EAD ໄດ້ຖືກສົ່ງຜ່ານສາຍໂອນ Gerstel ODP-2, ເຊິ່ງຕິດຕາມອຸນຫະພູມເຕົາອົບ GC ບວກກັບ 5 °C, ເຂົ້າໄປໃນທໍ່ແກ້ວ (10 ຊມ × 8 ມມ), ບ່ອນທີ່ມັນຖືກປະສົມກັບອາກາດທີ່ມີການກັ່ນຕອງຄາບອນ ແລະ ມີຄວາມຊຸ່ມຊື່ນ (1.5 l min−1). ເສົາອາກາດໄດ້ຖືກວາງໄວ້. 0.5 ຊມ ຈາກທາງອອກຂອງທໍ່. ຍຸງແຕ່ລະໂຕມີຕົວຢ່າງໜຶ່ງໂຕ, ແລະ ສຳລັບຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ, ຢ່າງໜ້ອຍສາມຕົວຢ່າງໄດ້ຖືກປະຕິບັດໃນຕົວຢ່າງປັດສະວະຂອງແຕ່ລະອາຍຸ.
ການກຳນົດສານປະກອບຊີວະພາບໃນການເກັບກຳຂໍ້ມູນ headspace ຂອງປັດສະວະງົວສົດ ແລະ ງົວແກ່ໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງວັດແທກມວນສານ GC ແລະ mass spectrometer (GC-MS; 6890 GC ແລະ 5975 MS; Agilent Technologies) ລວມກັນເພື່ອກະຕຸ້ນການຕອບສະໜອງຂອງ antenna ໃນການວິເຄາະ GC-EAD, ເຊິ່ງເຮັດວຽກໃນຮູບແບບການໄອອອນໄນເຊຊັນຜົນກະທົບຈາກເອເລັກຕຣອນທີ່ 70 eV. GC ໄດ້ຖືກຕິດຕັ້ງດ້ວຍຖັນ capillary fused silica ທີ່ເຄືອບດ້ວຍ HP-5MS UI (ເສັ້ນຜ່າສູນກາງພາຍໃນ 60 ມ × 0.25 ມມ, ຄວາມໜາຂອງຟິມ 0.25 μm) ໂດຍໃຊ້ helium ເປັນໄລຍະເຄື່ອນທີ່ທີ່ມີອັດຕາການໄຫຼເສັ້ນຊື່ສະເລ່ຍ 35 cm s-1. ຕົວຢ່າງ 2 μl ໄດ້ຖືກສັກໂດຍໃຊ້ການຕັ້ງຄ່າເຄື່ອງສີດ ແລະ ອຸນຫະພູມເຕົາອົບດຽວກັນກັບການວິເຄາະ GC-EAD. ສານປະກອບໄດ້ຖືກລະບຸໂດຍອີງໃສ່ເວລາການເກັບຮັກສາຂອງມັນ (ດັດຊະນີ Kovát) ແລະ mass spectra ເມື່ອທຽບກັບຫ້ອງສະໝຸດທີ່ກຳນົດເອງ ແລະ ຫ້ອງສະໝຸດ NIST14 (Agilent). ສານປະກອບທີ່ໄດ້ລະບຸໄດ້ຖືກຢືນຢັນໂດຍການສັກມາດຕະຖານທີ່ແທ້ຈິງ (ເອກະສານເພີ່ມເຕີມ 1: ຕາຕະລາງ S2). ສຳລັບການວັດປະລິມານ, heptyl acetate (10 ng, ຄວາມບໍລິສຸດທາງເຄມີ 99.8%, Aldrich) ໄດ້ຖືກສັກເຂົ້າເປັນມາດຕະຖານພາຍນອກ.
ການປະເມີນປະສິດທິພາບຂອງສ່ວນປະສົມກິ່ນສັງເຄາະທີ່ປະກອບດ້ວຍສານປະກອບຊີວະພາບທີ່ລະບຸໄວ້ໃນປັດສະວະສົດ ແລະ ຍຸງທີ່ດູດເລືອດເພື່ອດຶງດູດ Ans.arabiensis ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ ແລະ ດູດເລືອດ, ໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງວັດແທກກິ່ນ ແລະ ໂປໂຕຄອນດຽວກັນກັບຂ້າງເທິງ. ສ່ວນປະສົມສັງເຄາະໄດ້ຮຽນແບບສ່ວນປະກອບ ແລະ ອັດຕາສ່ວນຂອງສານປະກອບໃນສານສະກັດທີ່ລະເຫີຍໄດ້ຂອງປັດສະວະສົດ, 24 ຊົ່ວໂມງ, 48 ຊົ່ວໂມງ, 72 ຊົ່ວໂມງ, ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງ (ຮູບທີ 5D-G; ໄຟລ໌ເພີ່ມເຕີມ 1: ຕາຕະລາງ S2). ສຳລັບການວິເຄາະ, ໃຊ້ 10 μl ຂອງສ່ວນປະສົມສັງເຄາະທັງໝົດທີ່ລະລາຍ 1:100, ໂດຍມີອັດຕາການປ່ອຍໂດຍລວມຕັ້ງແຕ່ປະມານ 140-2400 ng h-1, ສຳລັບການປະເມີນຄວາມດຶງດູດໃຈຕໍ່ຍຸງເຈົ້າພາບ ແລະ ຍຸງດູດເລືອດ. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ການທົດສອບແມ່ນປະຕິບັດກັບສ່ວນປະສົມທີ່ສົມບູນ, ເຊິ່ງສ່ວນປະສົມທີ່ຫັກອອກຂອງສານປະກອບດ່ຽວຂອງສ່ວນປະສົມທີ່ສົມບູນຖືກກຳຈັດອອກ. ການຕອບສະໜອງ Seek ຈາກເຈົ້າພາບ ແລະ ຍຸງທີ່ດູດເລືອດ Ans. ສ່ວນປະສົມອາຣັບ ທຽບກັບ ສັງເຄາະ ແລະ ສ່ວນປະສົມທີ່ຫັກອອກໄດ້ຖືກວິເຄາະໂດຍໃຊ້ການຖົດຖອຍໂລຈິດສະຕິກຕາມລຳດັບ ຕາມດ້ວຍການປຽບທຽບຄູ່ສຳລັບຄີກ ອັດຕາສ່ວນ (JMP Pro, v14.0.0, SAS Institute Inc.).
ເພື່ອປະເມີນວ່າປັດສະວະງົວສາມາດເປັນຕົວຊີ້ບອກບ່ອນຢູ່ອາໄສຂອງຍຸງໄຂ້ມາເລເຣຍໄດ້ຫຼືບໍ່, ປັດສະວະງົວສົດ ແລະ ຍ່ຽວງົວທີ່ເກັບມາໄດ້ຕາມທີ່ໄດ້ອະທິບາຍຂ້າງເທິງ, ແລະ ນ້ຳໄດ້ຖືກວາງໄວ້ໃນຖັງຂະໜາດ 3 ລິດ (100 ມລ) ທີ່ປະສົມເປັນຕາໜ່າງ ແລະ ວາງໄວ້ໃນກັບດັກເຫຍື່ອຂອງຍຸງ. (ລຸ້ນ BG-HDT; BioGents, Regensburg, DE). ກັບດັກສິບອັນຖືກວາງໄວ້ຫ່າງກັນ 50 ແມັດໃນທົ່ງຫຍ້າ, ຫ່າງຈາກຊຸມຊົນບ້ານ 400 ແມັດ (Silay, Ethiopia, 5°53´24´´N, 37°29´24´´E) ແລະ ບໍ່ມີງົວ, ໃນພື້ນທີ່ປັບປຸງພັນຖາວອນ ແລະ ບ້ານຕ່າງໆ. ກັບດັກຫ້າອັນໄດ້ຖືກໃຫ້ຄວາມຮ້ອນເພື່ອຈຳລອງການມີຢູ່ຂອງຍຸງ, ໃນຂະນະທີ່ກັບດັກຫ້າອັນຖືກປະໄວ້ໂດຍບໍ່ໃຫ້ຄວາມຮ້ອນ. ແຕ່ລະສະຖານທີ່ປິ່ນປົວຈະຖືກໝູນວຽນທຸກໆຄືນເປັນເວລາທັງໝົດຫ້າຄືນ. ຈຳນວນຍຸງທີ່ຖືກຈັບໃນກັບດັກທີ່ຖືກລໍ້ດ້ວຍປັດສະວະທີ່ມີອາຍຸແຕກຕ່າງກັນໄດ້ຖືກປຽບທຽບໂດຍໃຊ້ການຖົດຖອຍໂລຈິດສະຕິກດ້ວຍການແຈກຢາຍເບຕ້າໄບໂນມຽວ (JMP Pro, v14.0.0, SAS Institute Inc.).
ໃນບ້ານທີ່ມີພະຍາດໄຂ້ຍຸງລະບາດໃກ້ກັບເມືອງ Maki, ພາກພື້ນ Oromia, ປະເທດເອທິໂອເປຍ (8° 11′ 08″ N, 38° 81′ 70″ E; ຮູບທີ 6A). ການສຶກສາໄດ້ດຳເນີນລະຫວ່າງກາງເດືອນສິງຫາ ແລະ ກາງເດືອນກັນຍາ ກ່ອນການສີດພົ່ນຢາຂ້າແມງໄມ້ພາຍໃນປະຈຳປີ, ພ້ອມກັບລະດູຝົນທີ່ຍາວນານ. ມີເຮືອນຄູ່ຫ້າຫຼັງ (ຫ່າງກັນ 20–50 ແມັດ) ຕັ້ງຢູ່ຊານເມືອງຂອງບ້ານໄດ້ຖືກຄັດເລືອກມາເພື່ອການສຶກສາ (ຮູບທີ 6A). ເງື່ອນໄຂທີ່ໃຊ້ເພື່ອເລືອກເຮືອນແມ່ນ: ບໍ່ອະນຸຍາດໃຫ້ລ້ຽງສັດໃນເຮືອນ, ບໍ່ອະນຸຍາດໃຫ້ປຸງແຕ່ງອາຫານພາຍໃນເຮືອນ (ໃຊ້ຟືນ ຫຼື ຖ່ານ) (ຢ່າງໜ້ອຍໃນຊ່ວງທົດລອງ), ແລະ ເຮືອນທີ່ມີຜູ້ອາໄສຢູ່ສູງສຸດສອງຄົນ, ນອນໃນຢາຂ້າແມງໄມ້ທີ່ບໍ່ມີຢາຂ້າແມງໄມ້. ພາຍໃຕ້ມຸ້ງກັນຍຸງທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວ. ການອະນຸມັດດ້ານຈັນຍາບັນໄດ້ຮັບການອະນຸມັດຈາກຄະນະກຳມະການທົບທວນຈັນຍາບັນການຄົ້ນຄວ້າສະຖາບັນ (IRB/022/2016) ຂອງຄະນະວິທະຍາສາດທຳມະຊາດ (CNS-IRB), ມະຫາວິທະຍາໄລ Addis Ababa, ຕາມແນວທາງທີ່ໄດ້ກຳນົດໄວ້ໂດຍຖະແຫຼງການຂອງສະມາຄົມແພດໂລກຂອງ Helsinki. ການຍິນຍອມຈາກຫົວໜ້າຄອບຄົວແຕ່ລະຄົນໄດ້ຮັບດ້ວຍການຊ່ວຍເຫຼືອຈາກພະນັກງານສົ່ງເສີມສຸຂະພາບ. ຂະບວນການທັງໝົດໄດ້ຮັບການຮັບຮອງຈາກອົງການປົກຄອງທ້ອງຖິ່ນໃນລະດັບເມືອງ ແລະ ຫວອດ ('kebele'). ການອອກແບບການທົດລອງໄດ້ປະຕິບັດຕາມການອອກແບບຮູບສີ່ຫຼ່ຽມມົນລາແຕັງ 2 × 2, ເຊິ່ງສ່ວນປະສົມສັງເຄາະ ແລະ ຕົວຄວບຄຸມໄດ້ຖືກມອບໝາຍໃຫ້ເຮືອນຄູ່ໃນຄືນທຳອິດ ແລະ ສະຫຼັບກັນລະຫວ່າງເຮືອນໃນຄືນທົດລອງຕໍ່ໄປ. ຂະບວນການນີ້ໄດ້ຖືກເຮັດຊ້ຳອີກສິບເທື່ອ. ນອກຈາກນັ້ນ, ເພື່ອປະເມີນກິດຈະກຳຂອງຍຸງໃນເຮືອນທີ່ເລືອກ, ກັບດັກຂອງ CDC ໄດ້ຖືກກຳນົດໃຫ້ແລ່ນຫ້າຄືນຕິດຕໍ່ກັນໃນຕອນເລີ່ມຕົ້ນ, ກາງ ແລະ ທ້າຍຂອງການທົດລອງພາກສະໜາມໃນເວລາດຽວກັນຂອງມື້.
ສ່ວນປະສົມສັງເຄາະທີ່ມີສານປະກອບຊີວະພາບຫົກຊະນິດໄດ້ຖືກລະລາຍໃນ heptane (97.0% ຊັ້ນ GC ຂອງຕົວລະລາຍ, Sigma Aldrich) ແລະປ່ອຍອອກມາທີ່ 140 ng h-1 ໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງແຈກຈ່າຍໄສ້ຕະໄຄ້ຝ້າຍ [20]. ເຄື່ອງແຈກຈ່າຍໄສ້ຕະໄຄ້ຊ່ວຍໃຫ້ສານປະກອບທັງໝົດຖືກປ່ອຍອອກມາໃນອັດຕາສ່ວນທີ່ຄົງທີ່ຕະຫຼອດການທົດລອງ 12 ຊົ່ວໂມງ. Heptane ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນຕົວຄວບຄຸມ. ຂວດໄດ້ຖືກແຂວນຢູ່ຂ້າງຈຸດເຂົ້າຂອງດັກແສງຂອງສູນຄວບຄຸມແລະປ້ອງກັນພະຍາດ (CDC) (ບໍລິສັດ John W. Hock, Gainesville, FL, ສະຫະລັດ; ຮູບທີ 6A). ກັບດັກໄດ້ຖືກແຂວນສູງ 0.8 – 1 ແມັດຈາກພື້ນດິນ, ໃກ້ກັບຕີນຕຽງ, ແລະອາສາສະໝັກນອນຢູ່ໃຕ້ມຸ້ງທີ່ບໍ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວແລະຜ່າຕັດລະຫວ່າງ 18:00 ແລະ 06:30. ຍຸງທີ່ຖືກຈັບໂດຍເພດແລະສະຖານະພາບທາງສະລີລະວິທະຍາ (ບໍ່ໄດ້ກິນອາຫານ, ກິນ, ຖືພາເຄິ່ງໜຶ່ງ, ແລະຖືພາ [21] ໄດ້ຖືກກວດໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະລະບົບຕ່ອງໂສ້ໂພລີເມີເຣສ (PCR) ເພື່ອກໍານົດຊະນິດພັນທີ່ຖືກກໍານົດທາງດ້ານຮູບຮ່າງເປັນ A. gambiae sl. ສະມາຊິກຂອງສະລັບສັບຊ້ອນ [23]. ໃນການສຶກສາພາກສະໜາມ, ການດັກຈັບແບບກັບດັກຂອງເຮືອນທີ່ຈັບຄູ່ໄດ້ຖືກວິເຄາະໂດຍໃຊ້ຮູບແບບຄວາມເໝາະສົມທາງດ້ານໂລຈິດສະຕິກ, ບ່ອນທີ່ແຮງດຶງດູດແມ່ນຕົວແປທີ່ຂຶ້ນກັບ ແລະ ການປະຕິບັດ (ສ່ວນປະສົມສັງເຄາະ vs ການຄວບຄຸມ) ແມ່ນຜົນກະທົບຄົງທີ່ (JMP® 14.0. 0. SAS Institute Inc.). ໃນທີ່ນີ້, ພວກເຮົາລາຍງານຄ່າ χ2 ແລະ ຄ່າ p ຈາກການທົດສອບອັດຕາສ່ວນຄວາມໜ້າຈະເປັນໄປໄດ້.
ປະເມີນວ່າມັນປອດໄພຫຼືບໍ່. arabiensis ສາມາດໄດ້ຮັບນໍ້າຍ່ຽວ, ແຫຼ່ງໄນໂຕຣເຈນຫຼັກຂອງມັນ, ຢູເຣຍ, ໂດຍການໃຫ້ອາຫານໂດຍກົງ, ພາຍໃນ 48 ຊົ່ວໂມງຫຼັງຈາກການໃຫ້ອາຫານເປັນເວລາ 4 ມື້ຫຼັງຈາກການທົດລອງການໃຫ້ອາຫານແມ່ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ ແລະ ການໃຫ້ເລືອດ (dpe). ທັງແມ່ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ ແລະ ແມ່ທີ່ດູດເລືອດໄດ້ດູດຊຶມນໍ້າຕານຊູໂຄຣສຫຼາຍກ່ວາອາຫານ ຫຼື ນໍ້າອື່ນໆ (F(5,426) = 20.15, p < 0.0001 ແລະ F(5,299) = 56.00, p < 0.0001, ຕາມລໍາດັບ; ຮູບທີ 1B,C). ນອກຈາກນັ້ນ, ແມ່ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບກິນອາຫານໃນນໍ້າຍ່ຽວໜ້ອຍລົງໃນເວລາ 72 ຊົ່ວໂມງເມື່ອທຽບກັບນໍ້າຍ່ຽວໃນເວລາ 168 ຊົ່ວໂມງ (ຮູບທີ 1B). ເມື່ອສະເໜີອາຫານທີ່ມີຢູເຣຍ, ແມ່ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບໄດ້ດູດຊຶມນໍ້າຕານຢູເຣຍໃນປະລິມານຫຼາຍກວ່າຢ່າງຫຼວງຫຼາຍທີ່ 2.69 mM ເມື່ອທຽບກັບຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນ ແລະ ນໍ້າອື່ນໆທັງໝົດ, ໃນຂະນະທີ່ບໍ່ສາມາດແຍກອອກຈາກນໍ້າຕານຊູໂຄຣສ 10% (F(10,813) = 15.72, p < 0.0001; ຮູບທີ 1D). ນີ້ແມ່ນກົງກັນຂ້າມກັບການຕອບສະໜອງຂອງເພດຍິງທີ່ກິນເລືອດ, ເຊິ່ງປົກກະຕິແລ້ວຈະດູດຊຶມອາຫານທີ່ມີຢູເຣຍຫຼາຍກວ່ານໍ້າຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ, ເຖິງແມ່ນວ່າຈະໜ້ອຍກວ່າ 10% ຂອງນໍ້າຕານຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (F(10,557) = 78.35, p < 0.0001; ຮູບທີ 1).1E). ນອກຈາກນັ້ນ, ເມື່ອປຽບທຽບລະຫວ່າງສອງສະພາບທາງສະລີລະວິທະຍາ, ເພດຍິງທີ່ໄດ້ຮັບການໃຫ້ເລືອດດູດຊຶມຢູເຣຍຫຼາຍກວ່າເພດຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບໃນຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຕໍ່າສຸດ, ແລະເພດຍິງເຫຼົ່ານີ້ດູດຊຶມຢູເຣຍໃນປະລິມານທີ່ຄ້າຍຄືກັນໃນຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນສູງກວ່າ (F(1,953)= 78.82, p < 0.0001; ຮູບທີ 1F, G). ໃນຂະນະທີ່ການໄດ້ຮັບຈາກອາຫານທີ່ມີຢູເຣຍເບິ່ງຄືວ່າມີຄ່າທີ່ດີທີ່ສຸດ (ຮູບທີ 1D,E), ເພດຍິງໃນສະພາບທາງສະລີລະວິທະຍາທັງສອງສາມາດປັບປະລິມານຢູເຣຍທີ່ດູດຊຶມໄດ້ໃນທຸກລະດັບຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍໃນແບບ log-linear (ຮູບທີ 1F,G). ). ໃນທຳນອງດຽວກັນ, ຍຸງເບິ່ງຄືວ່າຈະຄວບຄຸມການດູດຊຶມໄນໂຕຣເຈນຂອງພວກມັນໂດຍການຄວບຄຸມປະລິມານນໍ້າຍ່ຽວທີ່ດູດຊຶມ, ຍ້ອນວ່າປະລິມານໄນໂຕຣເຈນໃນນໍ້າຍ່ຽວສະທ້ອນໃຫ້ເຫັນໃນປະລິມານທີ່ດູດຊຶມ (ຮູບທີ 1B, C ແລະ B insets).
ເພື່ອປະເມີນຜົນກະທົບຂອງນໍ້າຍ່ຽວ ແລະ ຢູເຣຍ ຕໍ່ການຢູ່ລອດຂອງຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ ແລະ ຍຸງດູດເລືອດ, ແມ່ມານໄດ້ຮັບນໍ້າຍ່ຽວທັງສີ່ອາຍຸ (ສົດ, 24 ຊົ່ວໂມງ, 72 ຊົ່ວໂມງ, ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງຫຼັງຈາກວາງໄຂ່) ແລະ ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍຫຼາກຫຼາຍຊະນິດ, ພ້ອມທັງນໍ້າກັ່ນ ແລະ ນໍ້າຕານຊູໂຄຣສ 10% ເປັນຕົວຄວບຄຸມ (ຮູບທີ 2A). ການວິເຄາະການຢູ່ລອດນີ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າອາຫານມີຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ການຢູ່ລອດໂດຍລວມໃນແມ່ມານທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ (ນໍ້າຍ່ຽວ: χ2 = 108.5, df = 5, p < 0.0001; ຢູເຣຍ: χ2 = 122.8, df = 5, p < 0.0001; ຮູບທີ 2B, C) ແລະ ແມ່ມານທີ່ກິນເລືອດ (ນໍ້າຍ່ຽວ: χ2 = 93.0, df = 5, p < 0.0001; ຢູເຣຍ: χ2 = 137.9, df = 5, p < 0.0001; ຮູບທີ 2D,E). ໃນການທົດລອງທັງໝົດ, ເພດຍິງທີ່ກິນອາຫານທີ່ມີນໍ້າຍ່ຽວ, ຢູເຣຍ, ແລະນໍ້າມີອັດຕາການລອດຊີວິດຕໍ່າກວ່າຢ່າງຫຼວງຫຼາຍເມື່ອທຽບກັບເພດຍິງທີ່ກິນອາຫານທີ່ມີນໍ້າຕານຊູໂຄສ (ຮູບທີ 2B-E). ເພດຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບທີ່ກິນອາຫານທີ່ມີນໍ້າຍ່ຽວສົດ ແລະ ນໍ້າຍ່ຽວເກົ່າສະແດງໃຫ້ເຫັນອັດຕາການລອດຊີວິດທີ່ແຕກຕ່າງກັນ, ໂດຍຜູ້ທີ່ກິນອາຫານທີ່ມີນໍ້າຍ່ຽວເກົ່າ 72 ຊົ່ວໂມງ (p = 0.016) ມີຄວາມເປັນໄປໄດ້ໃນການລອດຊີວິດຕໍ່າສຸດ (ຮູບທີ 2B). ຍິ່ງໄປກວ່ານັ້ນ, ເພດຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບທີ່ກິນອາຫານທີ່ມີຢູເຣຍ 135 mM ລອດຊີວິດໄດ້ດົນກວ່າກຸ່ມຄວບຄຸມນໍ້າ (p < 0.04) (ຮູບທີ 2C). ເມື່ອປຽບທຽບກັບນໍ້າ, ແມ່ຍິງທີ່ກິນອາຫານທີ່ມີນໍ້າຍ່ຽວສົດ ແລະ ນໍ້າຍ່ຽວ 24 ຊົ່ວໂມງລອດຊີວິດໄດ້ດົນກວ່າ (p = 0.001 ແລະ p = 0.012, ຕາມລໍາດັບ; ຮູບທີ 2D), ໃນຂະນະທີ່ແມ່ຍິງທີ່ກິນອາຫານທີ່ມີນໍ້າຍ່ຽວ 72 ຊົ່ວໂມງລອດຊີວິດໄດ້ດົນກວ່າຜູ້ທີ່ກິນອາຫານທີ່ມີນໍ້າຍ່ຽວສົດສັ້ນ ແລະ ນໍ້າຍ່ຽວເກົ່າ 24 ຊົ່ວໂມງ (p < 0.0001 ແລະ p = 0.013, ຕາມລໍາດັບ; ຮູບທີ 2D). ເມື່ອກິນອາຫານທີ່ມີຢູເຣຍ 135 mM, ເພດຍິງທີ່ກິນອາຫານທີ່ມີເລືອດລອດຊີວິດໄດ້ດົນກວ່າຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນອື່ນໆທັງໝົດຂອງຢູເຣຍ ແລະ ນໍ້າ. (p < 0.013; ຮູບທີ 2E).
ການຢູ່ລອດຂອງຍຸງ Anopheles arabinis ເພດແມ່ທີ່ດູດເລືອດ ແລະ ກິນອາຫານດ້ວຍປັດສະວະງົວ ແລະ ຢູເຣຍ. ໃນການວິເຄາະທາງຊີວະວິທະຍາ (A), ຍຸງເພດແມ່ໄດ້ຮັບອາຫານທີ່ປະກອບດ້ວຍປັດສະວະງົວສົດ ແລະ ຍ່ຽວງົວທີ່ບົ່ມແລ້ວ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍ, ຊູໂຄຣສ (10%) ແລະ ນ້ຳກັ່ນ (H2O). ການຢູ່ລອດຂອງຍຸງຊອກຫາເຈົ້າພາບ (B, C) ແລະ ຍຸງດູດເລືອດ (D, E) ໄດ້ຖືກບັນທຶກໄວ້ທຸກໆ 12 ຊົ່ວໂມງ ຈົນກວ່າຍຸງເພດແມ່ທັງໝົດທີ່ກິນປັດສະວະ (B, D) ແລະ ຢູເຣຍ (C, E), ແລະ ກຸ່ມຄວບຄຸມ, ຊູໂຄຣສ ແລະ ນ້ຳ, ຈະຕາຍ.
ໄລຍະທາງທັງໝົດ ແລະ ຈຳນວນຮອບທີ່ກຳນົດໃນການທົດສອບເຄື່ອງບິນໃນໄລຍະເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງແຕກຕ່າງກັນລະຫວ່າງຍຸງຊອກຫາເຈົ້າພາບ ແລະ ຍຸງດູດເລືອດ, ເຊິ່ງສະແດງໃຫ້ເຫັນກິດຈະກຳການບິນໜ້ອຍກວ່າໂດຍລວມ (ຮູບທີ 3). ຍຸງຊອກຫາເຈົ້າພາບທີ່ໃຫ້ປັດສະວະສົດ ແລະ ຍຸງທີ່ອາຍຸແລ້ວ ຫຼື ນ້ຳຕານຊູໂຄຣສ ແລະ ນ້ຳສະແດງໃຫ້ເຫັນຮູບແບບການບິນທີ່ແຕກຕ່າງກັນ (ຮູບທີ 3), ໂດຍແມ່ທີ່ກິນປັດສະວະສົດຈະມີການເຄື່ອນໄຫວຫຼາຍຂຶ້ນໃນຕອນເຊົ້າ, ໃນຂະນະທີ່ຍຸງທີ່ມີອາຍຸ 24 ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງທີ່ກິນປັດສະວະມີຮູບແບບການບິນທີ່ແຕກຕ່າງກັນ ແລະ ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນອອກກຳລັງກາຍໃນເວລາກາງເວັນ. ຍຸງແມ່ທີ່ໃຫ້ນ້ຳຕານຊູໂຄຣສ ຫຼື ປັດສະວະ 72 ຊົ່ວໂມງສະແດງໃຫ້ເຫັນກິດຈະກຳຕະຫຼອດໄລຍະເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງ, ໃນຂະນະທີ່ແມ່ທີ່ໃຫ້ນ້ຳມີການເຄື່ອນໄຫວຫຼາຍຂຶ້ນໃນຊ່ວງກາງເວັນ. ຍຸງທີ່ກິນນ້ຳຕານຊູໂຄຣສມີລະດັບກິດຈະກຳສູງສຸດໃນຕອນກາງຄືນ ແລະ ຕອນເຊົ້າ, ໃນຂະນະທີ່ຍຸງທີ່ກິນປັດສະວະອາຍຸ 72 ຊົ່ວໂມງມີກິດຈະກຳຫຼຸດລົງຢ່າງຕໍ່ເນື່ອງໃນໄລຍະ 24 ຊົ່ວໂມງ (ຮູບທີ 3).
ປະສິດທິພາບການບິນຂອງຍຸງ Anopheles arabinis ເພດແມ່ທີ່ດູດເລືອດ ແລະ ລ່າສັດ ເຊິ່ງກິນປັດສະວະງົວ ແລະ ຢູເຣຍ. ໃນການທົດສອບການບິນຂອງຍຸງ, ຍຸງເພດແມ່ທີ່ກິນປັດສະວະງົວສົດ ແລະ ຍ່ຽວງົວທີ່ແກ່ແລ້ວ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍ, ຊູໂຄຣສ (10%), ແລະ ນ້ຳກັ່ນ (ນ້ຳ) ໄດ້ຖືກຜູກມັດໄວ້ກັບແຂນທີ່ໝຸນໄດ້ຢ່າງເສລີ (ຂ້າງເທິງ). ສຳລັບຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ (ຊ້າຍ) ແລະ ຍຸງທີ່ດູດເລືອດ (ຂວາ), ໄລຍະທາງທັງໝົດ ແລະ ຈຳນວນການບິນຕໍ່ຊົ່ວໂມງສຳລັບແຕ່ລະອາຫານໃນໄລຍະເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງໄດ້ຖືກບັນທຶກໄວ້ (ເຂັ້ມ: ສີເທົາ; ສີອ່ອນ: ສີຂາວ). ໄລຍະທາງສະເລ່ຍ ແລະ ຈຳນວນການບິນສະເລ່ຍແມ່ນສະແດງຢູ່ເບື້ອງຂວາຂອງກຣາຟກິດຈະກຳ circadian. ແຖບຄວາມຜິດພາດສະແດງເຖິງຄວາມຜິດພາດມາດຕະຖານຂອງຄ່າສະເລ່ຍ. ການວິເຄາະທາງສະຖິຕິເບິ່ງຂໍ້ຄວາມ.
ໂດຍທົ່ວໄປ, ກິດຈະກຳການບິນໂດຍລວມຂອງຍຸງເພດຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບປະຕິບັດຕາມຮູບແບບທີ່ຄ້າຍຄືກັນກັບໄລຍະທາງການບິນໃນໄລຍະເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງ. ໄລຍະທາງການບິນສະເລ່ຍໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຈາກອາຫານທີ່ກິນເຂົ້າໄປ (F(5, 138) = 28.27, p < 0.0001), ແລະຍຸງເພດຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບໄດ້ກິນນໍ້າຍ່ຽວ 72 ຊົ່ວໂມງບິນໄດ້ໄລຍະທາງໄກກວ່າຢ່າງຫຼວງຫຼາຍເມື່ອທຽບກັບອາຫານອື່ນໆທັງໝົດ (p < 0.0001), ແລະຍຸງທີ່ກິນນໍ້າຕານຈະບິນໄດ້ດົນກວ່າຍຸງສົດ (p = 0.022) ແລະຍຸງທີ່ມີອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງທີ່ກິນນໍ້າຍ່ຽວ (p = 0.022). ກົງກັນຂ້າມກັບຮູບແບບກິດຈະກຳການບິນທີ່ໄດ້ອະທິບາຍໂດຍອາຫານນໍ້າຍ່ຽວ, ຍຸງເພດຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບທີ່ກິນຢູເຣຍສະແດງໃຫ້ເຫັນກິດຈະກຳການບິນທີ່ຕໍ່ເນື່ອງໃນໄລຍະເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງ, ໂດຍສູງສຸດໃນຊ່ວງເຄິ່ງທີ່ສອງຂອງໄລຍະມືດ (ຮູບທີ 3). ເຖິງແມ່ນວ່າຮູບແບບກິດຈະກຳຈະຄ້າຍຄືກັນ, ແຕ່ຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບທີ່ກິນຢູເຣຍໄດ້ເພີ່ມໄລຍະທາງການບິນສະເລ່ຍຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຂຶ້ນກັບຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນທີ່ດູດຊຶມ (F(5, 138) = 1310.91, p < 0.0001). ແມ່ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບທີ່ກິນອາຫານທີ່ມີຢູເຣຍໃນຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນໃດໜຶ່ງບິນໄດ້ດົນກວ່າແມ່ທີ່ກິນອາຫານທີ່ມີນ້ຳ ຫຼື ນ້ຳຕານຊູໂຄຣສ (p < 0.03).
ກິດຈະກຳການບິນໂດຍລວມຂອງຍຸງດູດເລືອດແມ່ນຄົງທີ່ ແລະ ຍືນຍົງເປັນເວລາຫຼາຍກວ່າ 24 ຊົ່ວໂມງໃນທຸກໆອາຫານ, ໂດຍມີກິດຈະກຳທາງນໍ້າຍ່ຽວເພີ່ມຂຶ້ນໃນຊ່ວງເຄິ່ງທີ່ສອງຂອງໄລຍະເວລາມືດສຳລັບຍຸງເພດແມ່ທີ່ກິນນໍ້າ ເຊັ່ນດຽວກັນກັບໃນຍຸງເພດແມ່ທີ່ກິນນໍ້າສົດ ແລະ ອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງ (ຮູບທີ 3). ໃນຂະນະທີ່ອາຫານທາງນໍ້າຍ່ຽວມີຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ໄລຍະການບິນສະເລ່ຍໃນຍຸງເພດແມ່ທີ່ກິນເລືອດ (F(5, 138) = 4.83, p = 0.0004), ອາຫານຢູເຣຍບໍ່ໄດ້ (F(5, 138) = 1.36, p = 0.24) ກັບອາຫານທາງນໍ້າຍ່ຽວອື່ນໆ ແລະ ອາຫານຄວບຄຸມ (ສົດ, p = 0.0091; 72 ຊົ່ວໂມງ, p = 0.0022; 168 ຊົ່ວໂມງ, p = 0.001; ນໍ້າຕານຊູໂຄຣສ, p = 0.0017; dH2O, p = 0.036).
ຜົນກະທົບຂອງການໃຫ້ນໍ້າຍ່ຽວ ແລະ ຢູເຣຍ ຕໍ່ຕົວກໍານົດການສືບພັນໄດ້ຖືກປະເມີນໃນການວິເຄາະທາງຊີວະວິທະຍາການວາງໄຂ່ (ຮູບທີ 4A) ແລະ ໄດ້ຖືກສືບສວນຕາມຈໍານວນໄຂ່ທີ່ວາງໂດຍຕົວເມຍແຕ່ລະຄົນ, ຂະໜາດໄຂ່, ແລະ ຕົວອ່ອນໄລຍະທຳອິດທີ່ຫາກໍ່ຟັກອອກມາໃໝ່. ຈໍານວນໄຂ່ທີ່ວາງ. ຕົວເມຍອາຣັບທີ່ກິນນໍ້າຍ່ຽວແຕກຕ່າງກັນໄປຕາມອາຫານ (F(5,222) = 4.38, p = 0.0008; ຮູບທີ 4B). ຕົວເມຍທີ່ກິນນໍ້າຍ່ຽວ 24 ຊົ່ວໂມງ, ເມັດເລືອດອອກໄຂ່ຫຼາຍກວ່າຕົວເມຍທີ່ກິນນໍ້າຍ່ຽວອື່ນໆຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ ແລະ ຄ້າຍຄືກັບຕົວເມຍທີ່ກິນນໍ້າຕານຊູໂຄຣສ (ຮູບທີ 4B). ເຊັ່ນດຽວກັນ, ຂະໜາດຂອງໄຂ່ທີ່ວາງໂດຍຕົວເມຍທີ່ກິນນໍ້າຍ່ຽວແຕກຕ່າງກັນໄປຕາມອາຫານ (F(5, 209) = 12.85, p < 0.0001), ໂດຍຕົວເມຍທີ່ກິນນໍ້າຍ່ຽວ 24 ຊົ່ວໂມງ ແລະ ຕົວເມຍທີ່ກິນນໍ້າຕານຈະວາງໄຂ່ໃຫຍ່ກວ່າຕົວເມຍທີ່ກິນນໍ້າຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ, ໃນຂະນະທີ່ໄຂ່ຂອງຕົວເມຍທີ່ກິນນໍ້າຍ່ຽວ 168 ຊົ່ວໂມງມີຂະໜາດນ້ອຍກວ່າຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (ຮູບທີ 4C). ນອກຈາກນັ້ນ, ອາຫານໃນນໍ້າຍ່ຽວມີຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ຂະໜາດຂອງຕົວອ່ອນ (F(5, 187) = 7.86, p < 0.0001), ໂດຍມີຕົວອ່ອນຂະໜາດໃຫຍ່ກວ່າຢ່າງຫຼວງຫຼາຍທີ່ເກີດຈາກໄຂ່ທີ່ວາງໂດຍຕົວອ່ອນທີ່ກິນນໍ້າຍ່ຽວອາຍຸ 24 ແລະ 72 ຊົ່ວໂມງ ກ່ວາໄຂ່ທີ່ວາງຈາກຕົວອ່ອນ. ຕົວອ່ອນທີ່ກິນນໍ້າ ແລະ ຕົວອ່ອນທີ່ກິນນໍ້າຍ່ຽວອາຍຸ 168 ຊົ່ວໂມງ (ຮູບທີ 4D).
ປະສິດທິພາບການຈະເລີນພັນຂອງຍຸງ Anopheles arabinis ເພດແມ່ທີ່ກິນຍ່ຽວງົວ ແລະ ຢູເຣຍ. ຍຸງເພດແມ່ທີ່ກິນເລືອດໄດ້ຮັບອາຫານທີ່ປະກອບດ້ວຍຍ່ຽວງົວສົດ ແລະ ຍ່ຽວງົວທີ່ແກ່ແລ້ວ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍ, ຊູໂຄຣສ (10%), ແລະ ນ້ຳກັ່ນ (ນ້ຳ) ເປັນເວລາ 48 ຊົ່ວໂມງກ່ອນທີ່ຈະເອົາໄປທົດລອງທາງຊີວະພາບ ແລະ ໄດ້ຮັບສານອາຫານສຳລັບວາງໄຂ່ 48 ຊົ່ວໂມງ (A). ຈຳນວນໄຂ່ (B, E), ຂະໜາດໄຂ່ (C, F) ແລະ ຂະໜາດຕົວອ່ອນ (D, G) ໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຈາກອາຫານທີ່ໃຫ້ (ຍ່ຽວງົວ: BD; ຢູເຣຍ: EG). ຄ່າສະເລ່ຍສຳລັບແຕ່ລະພາລາມິເຕີທີ່ວັດແທກໂດຍໃຊ້ຊື່ຕົວອັກສອນທີ່ແຕກຕ່າງກັນແມ່ນແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (ANOVA ທາງດຽວໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະ post hoc ຂອງ Tukey; p < 0.05). ແຖບຄວາມຜິດພາດສະແດງເຖິງຄວາມຜິດພາດມາດຕະຖານຂອງຄ່າສະເລ່ຍ
ໃນຖານະເປັນສ່ວນປະກອບໄນໂຕຣເຈນທີ່ສຳຄັນຂອງນໍ້າຍ່ຽວ, ຢູເຣຍ, ເມື່ອໃຫ້ເປັນອາຫານແກ່ແມ່ທີ່ກິນເລືອດ, ມີຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ຕົວກໍານົດການສືບພັນໃນທຸກໆການສຶກສາ. ຈຳນວນໄຂ່ທີ່ວາງໂດຍແມ່ທີ່ກິນຢູເຣຍ, ຫຼັງຈາກກິນເລືອດ, ຂຶ້ນກັບຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍ (F(11, 360) = 4.69; p < 0.0001), ແມ່ທີ່ກິນຢູເຣຍທີ່ມີຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນລະຫວ່າງ 134 µM ແລະ 1.34 mM ວາງໄຂ່ຫຼາຍກວ່າ (ຮູບທີ 4E). ແມ່ທີ່ກິນຢູເຣຍທີ່ມີຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນ 134 µM ຫຼືສູງກວ່າວາງໄຂ່ໃຫຍ່ກວ່າແມ່ທີ່ກິນນໍ້າ (F(10, 4245) = 36.7; p < 0.0001; ຮູບທີ 4F), ແລະຂະໜາດຂອງຕົວອ່ອນ, ເຖິງແມ່ນວ່າໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຈາກຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍທີ່ຄ້າຍຄືກັນໃນແມ່ (F(10, 3305) = 37.9; p < 0.0001) ແມ່ນແຕກຕ່າງກັນຫຼາຍກວ່າ (ຮູບທີ 4G).
ຄວາມດຶງດູດໂດຍລວມຕໍ່ສານສະກັດທີ່ລະເຫີຍໄດ້ຈາກນໍ້າຍ່ຽວງົວທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ. ເຊື້ອແບັກທີເຣຍ arabiensis ທີ່ຖືກປະເມີນໃນເຄື່ອງວັດແທກກິ່ນຂອງຫຼອດແກ້ວ (ຮູບທີ 5A) ໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຈາກອາຍຸຂອງນໍ້າຍ່ຽວ (χ2 = 15.9, df = 4, p = 0.0032; ຮູບທີ 5B). ການວິເຄາະຫຼັງການທົດລອງສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າກິ່ນນໍ້າຍ່ຽວເກົ່າໃນເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງເຮັດໃຫ້ເກີດລະດັບຄວາມດຶງດູດທີ່ສູງຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍເມື່ອທຽບກັບການປິ່ນປົວອື່ນໆທັງໝົດ (72 ຊົ່ວໂມງ: p = 0.0060, 168 ຊົ່ວໂມງ: p = 0.012, pentane: p = 0.00070), ຍົກເວັ້ນກິ່ນຂອງນໍ້າຍ່ຽວສົດ (p = 0.13; ຮູບທີ 5B). ເຖິງແມ່ນວ່າຄວາມດຶງດູດໂດຍລວມຂອງຍຸງດູດເລືອດຕໍ່ກິ່ນນໍ້າຍ່ຽວບໍ່ແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (χ2 = 8.78, df = 4, p = 0.067; ຮູບທີ 5C), ແຕ່ພົບວ່າແມ່ເຫຼົ່ານີ້ມີຄວາມດຶງດູດຫຼາຍກວ່າຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ກັບສານສະກັດທີ່ລະເຫີຍໄດ້ຈາກນໍ້າຍ່ຽວທີ່ມີອາຍຸ 72 ຊົ່ວໂມງເມື່ອທຽບກັບກຸ່ມຄວບຄຸມ (p = 0.0066; ຮູບທີ 5C).
ການຕອບສະໜອງທາງດ້ານພຶດຕິກຳຕໍ່ກິ່ນປັດສະວະງົວທຳມະຊາດ ແລະ ສັງເຄາະໃນການຄົ້ນຫາຍຸງ Anopheles arabianus ທີ່ເປັນເຈົ້າພາບ ແລະ ຍຸງທີ່ກິນເລືອດ. ແຜນວາດຂອງເຄື່ອງວັດແທກກິ່ນປາກແກ້ວ (A). ການດຶງດູດສານສະກັດທີ່ລະເຫີຍໄດ້ຈາກຍຸງສົດ ແລະ ຍຸງທີ່ເຖົ້າແກ່ໄປຫາຍຸງເຈົ້າພາບ (B) ແລະ ຍຸງດູດເລືອດ (C). ຊອກຫາປະຕິກິລິຍາໜວດຂອງຍຸງ Lord An. ສານສະກັດຈາກ Headspace ທີ່ແຍກອອກຈາກປັດສະວະງົວສົດ (D), 24 ຊົ່ວໂມງ (E), 72 ຊົ່ວໂມງ (F), ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງ (G) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນ. ຮ່ອງຮອຍການກວດຈັບສາຍອາກາດອີເລັກຕຣອນ (EAD) ສະແດງໃຫ້ເຫັນການປ່ຽນແປງແຮງດັນໃນການຕອບສະໜອງຕໍ່ສານປະກອບຊີວະພາບໃນ headspace ທີ່ອອກມາຈາກ chromatograph ອາຍແກັສ ແລະ ກວດພົບໂດຍເຄື່ອງກວດຈັບໄອອອນໄລເຊຊັນແປວໄຟ (FID). ແຖບຂະໜາດສະແດງເຖິງຄວາມກວ້າງຂອງການຕອບສະໜອງ (mV) ທຽບກັບເວລາຮັກສາໄວ້ (s). ຄຸນສົມບັດ ແລະ ອັດຕາການປ່ອຍ (µg h-1) ຂອງສານປະກອບທີ່ມີການເຄື່ອນໄຫວທາງຊີວະພາບໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນ. ເຄື່ອງໝາຍດາວດຽວ (*) ຊີ້ບອກເຖິງການຕອບສະໜອງຄວາມກວ້າງຕ່ຳທີ່ສອດຄ່ອງກັນ. ເຄື່ອງໝາຍດາວຄູ່ (**) ຊີ້ບອກເຖິງການຕອບສະໜອງທີ່ບໍ່ສາມາດຜະລິດຄືນໄດ້. ຊອກຫາເຈົ້າພາບ (H) ແລະ ສັດດູດເລືອດ (I) An.arabiensis ມີຄວາມດຶງດູດໃຈທີ່ແຕກຕ່າງກັນຕໍ່ກັບກິ່ນຍ່ຽວງົວສົດ ແລະ ຍ່ຽວງົວທີ່ແກ່. ສັດສ່ວນສະເລ່ຍຂອງຍຸງທີ່ດຶງດູດຊື່ຕົວອັກສອນທີ່ແຕກຕ່າງກັນແມ່ນແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຈາກກັນແລະກັນ (ANOVA ທາງດຽວໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະ post hoc ຂອງ Tukey; p < 0.05). ແຖບຄວາມຜິດພາດສະແດງເຖິງຄວາມຜິດພາດມາດຕະຖານຂອງຂະໜາດ
ປາ Ann.arabiensis ເພດແມ່, 72 ຊົ່ວໂມງ ແລະ 120 ຊົ່ວໂມງ ຫຼັງຈາກກິນເລືອດ, ໃນລະຫວ່າງການວາງໄຂ່, ບໍ່ມັກສານສະກັດຈາກນ້ຳຍ່ຽວງົວທີ່ລະເຫີຍໄດ້ຈາກປັດສະວະງົວສົດ ແລະ ຍ່ຽວງົວທີ່ແກ່ ເມື່ອທຽບກັບກຸ່ມຄວບຄຸມເພນເທນ (χ2 = 3.07, p > 0.05; ໄຟລ໌ເພີ່ມເຕີມ 1: ຮູບ S1).
ສຳລັບ Ann.arabiensis ເພດຍິງ, ການວິເຄາະ GC-EAD ແລະ GC-MS ໄດ້ລະບຸສານປະກອບທາງຊີວະພາບແປດ, ຫົກ, ສາມ ແລະ ສາມຊະນິດ (ຮູບທີ 5D-G). ເຖິງແມ່ນວ່າຄວາມແຕກຕ່າງໃນຈຳນວນສານປະກອບທີ່ເຮັດໃຫ້ເກີດການຕອບສະໜອງທາງໄຟຟ້າສະລີລະວິທະຍາໄດ້ຖືກສັງເກດເຫັນ, ແຕ່ສານປະກອບເຫຼົ່ານີ້ສ່ວນໃຫຍ່ມີຢູ່ໃນສານສະກັດທີ່ລະເຫີຍໄດ້ແຕ່ລະຊະນິດທີ່ເກັບມາຈາກປັດສະວະສົດ ແລະ ຍ່ຽວທີ່ແກ່. ດັ່ງນັ້ນ, ສຳລັບສານສະກັດແຕ່ລະຊະນິດ, ມີພຽງແຕ່ສານປະກອບທີ່ຜະລິດການຕອບສະໜອງທາງສະລີລະວິທະຍາຈາກໜວດເພດຍິງທີ່ຢູ່ເໜືອຂອບເຂດທີ່ກຳນົດເທົ່ານັ້ນທີ່ຖືກລວມເຂົ້າໃນການວິເຄາະຕື່ມອີກ.
ອັດຕາການປ່ອຍສານປະກອບຊີວະພາບທີ່ລະເຫີຍໄດ້ທັງໝົດໃນການເກັບກຳ headspace ໄດ້ເພີ່ມຂຶ້ນຈາກ 29 µg h-1 ໃນນໍ້າຍ່ຽວສົດເປັນ 242 µg h-1 ໃນນໍ້າຍ່ຽວທີ່ມີອາຍຸ 168 ຊົ່ວໂມງ, ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນຍ້ອນ p-cresol ແລະ m-formaldehyde. ການເພີ່ມຂຶ້ນຂອງ Phenol ເຊັ່ນດຽວກັນກັບ phenol. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ອັດຕາການປ່ອຍສານປະກອບອື່ນໆ, ເຊັ່ນ 2-cyclohexen-1-one ແລະ decanal, ຫຼຸດລົງຕາມອາຍຸຂອງນໍ້າຍ່ຽວທີ່ເພີ່ມຂຶ້ນ, ເຊິ່ງກ່ຽວຂ້ອງກັບການຫຼຸດລົງທີ່ສັງເກດເຫັນໃນຄວາມເຂັ້ມຂອງສັນຍານ (ຄວາມອຸດົມສົມບູນ) ໃນ chromatogram (ຮູບທີ 5D)-G ແຜງດ້ານຊ້າຍ) ແລະ ການຕອບສະໜອງທາງສະລີລະວິທະຍາຕໍ່ສານປະກອບເຫຼົ່ານີ້ (ຮູບທີ 5D-G ແຜງດ້ານຂວາ).
ໂດຍລວມແລ້ວ, ສ່ວນປະສົມສັງເຄາະມີອັດຕາສ່ວນທຳມະຊາດທີ່ຄ້າຍຄືກັນຂອງສານປະກອບຊີວະພາບທີ່ພົບໃນສານສະກັດທີ່ລະເຫີຍໄດ້ຂອງຊ່ອງນໍ້າຍ່ຽວສົດ ແລະ ເກົ່າ (ຮູບທີ 5D–G) ແລະ ເບິ່ງຄືວ່າບໍ່ໄດ້ເຮັດໃຫ້ເກີດຄວາມດຶງດູດໃຈຢ່າງຫຼວງຫຼາຍໃນການຄົ້ນຫາເຈົ້າພາບ (χ2 = 8.15, df = 4, p = 0.083; ຮູບທີ 5H) ຫຼື ຍຸງດູດເລືອດ (χ2 = 4.91, df = 4, p = 0.30; ຮູບທີ 5I). ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການປຽບທຽບຄູ່ post hoc ລະຫວ່າງການປິ່ນປົວສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບມີຄວາມດຶງດູດໃຈຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ກັບສ່ວນປະສົມສັງເຄາະຂອງນໍ້າຍ່ຽວທີ່ມີອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງເມື່ອທຽບກັບກຸ່ມຄວບຄຸມ pentane (p = 0.0086; ຮູບທີ 5H).
ເພື່ອປະເມີນບົດບາດຂອງສ່ວນປະກອບສ່ວນບຸກຄົນໃນສ່ວນປະສົມສັງເຄາະຂອງນໍ້າຍ່ຽວທີ່ມີອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງ, ສ່ວນປະສົມລົບຫົກຢ່າງໄດ້ຖືກປະເມີນທຽບກັບສ່ວນປະສົມທີ່ສົມບູນໃນການທົດສອບທໍ່ Y, ເຊິ່ງສານປະກອບສ່ວນບຸກຄົນໄດ້ຖືກກຳຈັດອອກ. ສຳລັບຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ, ການຫັກສານປະກອບສ່ວນບຸກຄົນອອກຈາກສ່ວນປະສົມທີ່ສົມບູນມີຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ການຕອບສະໜອງທາງພຶດຕິກຳ (χ2 = 19.63, df = 6, p = 0.0032; ໄຟລ໌ເພີ່ມເຕີມ 1: ຮູບ S2A), ສ່ວນປະສົມລົບທັງໝົດມີຄວາມດຶງດູດຫຼາຍກວ່າຂະໜາດນ້ອຍກວ່າປະສົມເຕັມ. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ການກຳຈັດສານປະກອບສ່ວນບຸກຄົນອອກຈາກສ່ວນປະສົມສັງເຄາະເຕັມບໍ່ໄດ້ສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ການຕອບສະໜອງທາງພຶດຕິກຳຂອງຍຸງດູດເລືອດ (χ2 = 11.38, df = 6, p = 0.077), ຍົກເວັ້ນ decanal, ເຊິ່ງເຮັດໃຫ້ລະດັບຄວາມດຶງດູດຕ່ຳກວ່າເມື່ອທຽບກັບສ່ວນປະສົມທີ່ສົມບູນ (p = 0.022; ໄຟລ໌ເພີ່ມເຕີມ 1: ຮູບ S2B).
ໃນບ້ານທີ່ມີພະຍາດໄຂ້ຍຸງລະບາດໃນປະເທດເອທິໂອເປຍ, ປະສິດທິພາບຂອງສ່ວນປະສົມສັງເຄາະຂອງປັດສະວະງົວ 24 ຊົ່ວໂມງໃນການດຶງດູດຍຸງພາຍໃຕ້ສະພາບທົ່ງນາໄດ້ຖືກປະເມີນເປັນເວລາສິບຄືນ (ຮູບທີ 6A). ມີຍຸງທັງໝົດ 4,861 ໂຕຖືກຈັບ ແລະ ລະບຸໄດ້, ໃນນັ້ນ 45.7% ແມ່ນ Anthropus.gambiae sl, 18.9% ແມ່ນ Anopheles pharoensis ແລະ 35.4% ແມ່ນ Culex spp. (ໄຟລ໌ເພີ່ມເຕີມ 1: ຕາຕະລາງ S1). Anopheles arabinis ແມ່ນສະມາຊິກດຽວຂອງສະລັບສັບຊ້ອນຊະນິດ An.Gambian ທີ່ລະບຸໂດຍການວິເຄາະ PCR. ໂດຍສະເລ່ຍແລ້ວ, ຍຸງ 320 ໂຕຖືກຈັບຕໍ່ຄືນ, ໃນໄລຍະເວລານັ້ນກັບດັກທີ່ມີເຫຍື່ອປະສົມສັງເຄາະຈັບຍຸງໄດ້ຫຼາຍກ່ວາກັບດັກຄູ່ທີ່ບໍ່ມີສ່ວນປະສົມ (χ2(0, 3196) = 170.0, p < 0.0001). ກັບດັກທີ່ບໍ່ມີເຫຍື່ອໄດ້ຖືກຕັ້ງໄວ້ໃນແຕ່ລະຄືນຄວບຄຸມທັງຫ້າຄືນໃນຕອນເລີ່ມຕົ້ນ, ກາງ, ແລະ ທ້າຍຂອງການທົດລອງ. ຈຳນວນຍຸງທີ່ຄ້າຍຄືກັນຖືກຈັບໃນແຕ່ລະຄູ່ຂອງກັບດັກ, ຊີ້ບອກວ່າ ບໍ່ມີອະຄະຕິລະຫວ່າງເຮືອນ (χ2(0, 1665) = 9 × 10-13, p > 0.05) ແລະບໍ່ມີປະຊາກອນຫຼຸດລົງໃນໄລຍະການສຶກສາ. ເມື່ອປຽບທຽບກັບກັບດັກຄວບຄຸມ, ຈຳນວນຍຸງທີ່ຖືກຈັບໃນກັບດັກທີ່ມີສ່ວນປະສົມສັງເຄາະໄດ້ເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ: ການຊອກຫາເຈົ້າພາບ (χ2(0, 2107) = 138.7, p < 0.0001), ການກິນເລືອດໃນໄລຍະມໍ່ໆມານີ້ (χ2(0, 650) = 32.2, p < 0.0001) ແລະ ການຖືພາ (χ2(0, 228) = 6.27, p = 0.0123; ໄຟລ໌ເພີ່ມເຕີມ 1: ຕາຕະລາງ S1). ສິ່ງນີ້ຍັງສະທ້ອນໃຫ້ເຫັນໃນຈຳນວນຍຸງທັງໝົດທີ່ຖືກຈັບໄດ້: ການຊອກຫາເຈົ້າພາບ > ດູດເລືອດ > ຖືພາ > ຖືພາເຄິ່ງໜຶ່ງ > ເພດຜູ້.
ການປະເມີນປະສິດທິພາບຂອງສ່ວນປະສົມກິ່ນປັດສະວະງົວສັງເຄາະ 24 ຊົ່ວໂມງ. ການທົດລອງພາກສະໜາມໄດ້ດຳເນີນຢູ່ພາກໃຕ້-ກາງຂອງເອທິໂອເປຍ (ແຜນທີ່), ໃກ້ກັບເມືອງ Maki (ໃສ່), ໂດຍໃຊ້ກັບດັກແສງຂອງສູນຄວບຄຸມ ແລະ ປ້ອງກັນພະຍາດ (CDC) (ຂວາ) ໃນເຮືອນທີ່ຈັບຄູ່ກັນ, ດ້ວຍການອອກແບບຮູບສີ່ຫຼ່ຽມມົນລາຕິນ (ຮູບພາບທາງອາກາດ) (A). ກັບດັກແສງ CDC ສັງເຄາະດ້ວຍເຫຍື່ອກິ່ນດຶງດູດ ແລະ ຈັບຍຸງ Anopheles arabesques ເພດແມ່ (B), ແຕ່ບໍ່ແມ່ນຍຸງ Anopheles farroes (C), ໃນລັກສະນະທີ່ແຕກຕ່າງກັນ, ຜົນກະທົບທີ່ຂຶ້ນກັບສະພາບທາງສະລີລະວິທະຍາ. ນອກຈາກນັ້ນ, ກັບດັກເຫຼົ່ານີ້ຈັບຍຸງ Culex ທີ່ເປັນເຈົ້າພາບໄດ້ເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ. (D) ເມື່ອທຽບກັບກຸ່ມຄວບຄຸມ. ແຖບທາງຊ້າຍສະແດງເຖິງດັດຊະນີການຄັດເລືອກສະເລ່ຍຂອງຍຸງທີ່ຖືກຈັບໃນຄູ່ຂອງເຫຍື່ອກິ່ນ (ສີຂຽວ) ແລະ ກັບດັກຄວບຄຸມ (ເປີດ) (N = 10), ໃນຂະນະທີ່ແຖບທາງຂວາສະແດງເຖິງດັດຊະນີການຄັດເລືອກສະເລ່ຍໃນຄູ່ຂອງກັບດັກຄວບຄຸມ (ເປີດ; N = 5). ເຄື່ອງໝາຍດາວສະແດງເຖິງລະດັບຄວາມສຳຄັນທາງສະຖິຕິ (*p = 0.01 ແລະ ***p < 0.0001)
ທັງສາມຊະນິດຖືກຈັບໄດ້ໃນກັບດັກທີ່ມີສ່ວນປະສົມສັງເຄາະແຕກຕ່າງກັນ. ການຊອກຫາເຈົ້າພາບ (χ2(1, 1345) = 71.7, p < 0.0001), ການກິນເລືອດ (χ2(1, 517) = 16.7, p < 0.0001) ແລະ ການຖືພາ (χ2(1, 180) = 6.11, p = 0.0134) a.arabiensis ຖືກກັກໄວ້ໃນກັບດັກ ແລະ ປ່ອຍສ່ວນປະສົມສັງເຄາະອອກມາ (ຮູບທີ 6B), ໃນຂະນະທີ່ປະລິມານຂອງ An ບໍ່ແຕກຕ່າງກັນ. Pharoensis ໃນສະພາບທາງສະລີລະວິທະຍາທີ່ແຕກຕ່າງກັນໄດ້ຖືກພົບເຫັນ (ຮູບທີ 6C). ສຳລັບ Culex, ມີພຽງແຕ່ການເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍໃນຈຳນວນຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບທີ່ພົບເຫັນໃນກັບດັກທີ່ຖືກລໍ້ດ້ວຍສ່ວນປະສົມສັງເຄາະ (χ2(1,1319) = 12.6, p = 0.0004; ຮູບທີ 6D), ເມື່ອທຽບກັບກັບດັກຄວບຄຸມ.
ກັບດັກເຫຍື່ອທີ່ຕັ້ງຢູ່ນອກບ່ອນຕັ້ງຖິ່ນຖານທີ່ມີທ່າແຮງລະຫວ່າງສະຖານທີ່ປັບປຸງພັນ ແລະ ຊຸມຊົນຊົນນະບົດໃນປະເທດເອທິໂອເປຍ ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອປະເມີນວ່າຍຸງໄຂ້ຍຸງໃຊ້ກິ່ນຍ່ຽວງົວເປັນຕົວຊີ້ບອກທີ່ຢູ່ອາໄສຂອງຍຸງຫຼືບໍ່. ໃນເວລາທີ່ບໍ່ມີຕົວຊີ້ບອກຂອງຍຸງ, ຄວາມຮ້ອນ, ແລະ ມີ ຫຼື ບໍ່ມີກິ່ນຍ່ຽວງົວ, ບໍ່ມີຍຸງໃດຖືກຈັບ (ໄຟລ໌ເພີ່ມເຕີມ 1: ຮູບ S3). ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ໃນທີ່ມີອຸນຫະພູມສູງ ແລະ ກິ່ນຍ່ຽວງົວ, ຍຸງໄຂ້ຍຸງເພດແມ່ໄດ້ຖືກດຶງດູດ ແລະ ຖືກຈັບ, ເຖິງແມ່ນວ່າຈະມີຈຳນວນໜ້ອຍ, ໂດຍບໍ່ຂຶ້ນກັບອາຍຸຂອງປັດສະວະ (χ2(5, 25) = 2.29, p = 0.13; ໄຟລ໌ເພີ່ມເຕີມ 1: ຮູບ S3). ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ການຄວບຄຸມນ້ຳບໍ່ໄດ້ຈັບຍຸງໄຂ້ຍຸງໃນອຸນຫະພູມສູງ (ໄຟລ໌ເພີ່ມເຕີມ 1: ຮູບ S3).
ຍຸງໄຂ້ມາເລເຣຍໄດ້ຮັບ ແລະ ແຈກຢາຍສານປະກອບທີ່ມີໄນໂຕຣເຈນໂດຍຜ່ານການໃຫ້ອາຫານຊົດເຊີຍໃນປັດສະວະງົວ (ເຊັ່ນ: ໜອງນ້ຳ) ເພື່ອເສີມຂະຫຍາຍລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດ, ຄ້າຍຄືກັບແມງໄມ້ອື່ນໆ [2, 4, 24, 25, 26]. ປັດສະວະງົວແມ່ນຊັບພະຍາກອນທົດແທນທີ່ຫາໄດ້ງ່າຍທີ່ກ່ຽວຂ້ອງຢ່າງໃກ້ຊິດກັບສະຖານທີ່ພັກຜ່ອນຂອງພາຫະນະໄຂ້ມາເລເຣຍ, ເຊັ່ນ: ຄອກງົວ ແລະ ພືດພັນສູງໃກ້ກັບບ້ານຊົນນະບົດ ແລະ ສະຖານທີ່ວາງໄຂ່. ຍຸງເພດແມ່ຊອກຫາຊັບພະຍາກອນນີ້ໂດຍການດົມກິ່ນ ແລະ ສາມາດຄວບຄຸມການດູດຊຶມສານປະກອບໄນໂຕຣເຈນໃນປັດສະວະ, ລວມທັງຢູເຣຍ, ສ່ວນປະກອບໄນໂຕຣເຈນທີ່ສຳຄັນໃນປັດສະວະ [15, 16]. ອີງຕາມສະພາບທາງສະລີລະວິທະຍາຂອງຍຸງເພດແມ່, ສານອາຫານໃນປັດສະວະຈະຖືກຈັດສັນເພື່ອເສີມຂະຫຍາຍກິດຈະກຳການບິນ ແລະ ການຢູ່ລອດຂອງຍຸງເພດແມ່ທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ, ເຊັ່ນດຽວກັນກັບການຢູ່ລອດ ແລະ ລັກສະນະການສືບພັນຂອງຄົນທີ່ກິນເລືອດໃນລະຫວ່າງວົງຈອນ gonadotropic ທຳອິດ. ດັ່ງນັ້ນ, ການປະສົມປັດສະວະມີບົດບາດສຳຄັນທາງໂພຊະນາການສຳລັບພາຫະນະໄຂ້ມາເລເຣຍທີ່ຖືກປິດຄືກັບຜູ້ໃຫຍ່ທີ່ຂາດສານອາຫານ [8], ຍ້ອນວ່າມັນໃຫ້ຄວາມສາມາດໃນການໄດ້ຮັບສານປະກອບໄນໂຕຣເຈນທີ່ສຳຄັນໂດຍການເຂົ້າຮ່ວມໃນການໃຫ້ອາຫານທີ່ມີຄວາມສ່ຽງຕ່ຳ. ການຄົ້ນພົບນີ້ມີຜົນສະທ້ອນທາງລະບາດວິທະຍາທີ່ສຳຄັນ, ຍ້ອນວ່າເພດແມ່ ເພີ່ມອາຍຸຍືນສະເລ່ຍ, ກິດຈະກຳ ແລະ ຜົນຜະລິດການຈະເລີນພັນຂອງພວກມັນ, ເຊິ່ງທັງໝົດນີ້ມີຜົນກະທົບຕໍ່ຄວາມສາມາດຂອງເວັກເຕີ. ຍິ່ງໄປກວ່ານັ້ນ, ພຶດຕິກຳນີ້ອາດເປັນເປົ້າໝາຍຂອງໂຄງການຄຸ້ມຄອງເວັກເຕີໃນອະນາຄົດ.